路 瑤,郝卉杰,賀 欣,張目涵,趙美華,馬 娜,馮百歲
(鄭州大學(xué)第二附屬醫(yī)院消化內(nèi)科, 炎癥性腸病中心, 吳階平醫(yī)學(xué)基金會(huì), 炎癥性腸病聯(lián)盟河南省炎癥性腸病中心, 河南 鄭州 450014)
炎癥性腸病(inflammatory bowel disease,IBD)是一組以腹痛、腹瀉及黏液膿血便等為主要臨床表現(xiàn)的慢性炎性疾病,其病因尚不明確?,F(xiàn)有的研究表明IBD與腸黏膜屏障破壞以及異常免疫應(yīng)答相關(guān)[1]。目前研究表明腸道炎癥的發(fā)生與腸道內(nèi)菌群的作用密不可分[2]。正常人腸道內(nèi)即存在大量的抗原物質(zhì), 包括正常定植菌群、某些致病菌和細(xì)菌毒素等[3],這些抗原物質(zhì)可誘導(dǎo)腸黏膜產(chǎn)生大量炎癥細(xì)胞,同時(shí)導(dǎo)致免疫功能紊亂,從而在IBD的發(fā)生發(fā)展過(guò)程中發(fā)揮作用[4]。 細(xì)菌鞭毛蛋白CBir1可與Toll樣受體5(Toll-like receptor 5,TLR5)等受體結(jié)合,激發(fā)相應(yīng)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,從而參與腸道慢性炎癥反應(yīng)[5]。肥大細(xì)胞是黏膜免疫的重要組成部分,目前研究發(fā)現(xiàn)在IBD患者的腸黏膜中活化的肥大細(xì)胞增多。激活的肥大細(xì)胞發(fā)生脫顆粒作用,可分泌出肥大細(xì)胞類(lèi)胰蛋白酶(mast cell tryptase,MCT)及組胺等細(xì)胞因子進(jìn)一步促進(jìn)炎癥反應(yīng)發(fā)生[6-7]。細(xì)菌脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)能夠直接損傷細(xì)胞,當(dāng)其與卵清蛋白(ovalbumin,OVA)結(jié)合后可促進(jìn)炎癥反應(yīng)[8]。酮替芬(ketotifen)是一種常見(jiàn)的抗過(guò)敏藥物,其能夠穩(wěn)定肥大細(xì)胞細(xì)胞膜,從而減少炎癥物質(zhì)的釋放。人類(lèi)IBD的炎癥反應(yīng)過(guò)程尚不明確,通過(guò)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)可模擬該疾病發(fā)病過(guò)程。本實(shí)驗(yàn)采用2,4,6-三硝基苯磺酸(2,4,6-trinitobenzenesulfonic acid,TNBS)誘導(dǎo)建立小鼠慢性結(jié)腸炎模型,并對(duì)各組小鼠采取相應(yīng)的干預(yù)措施。實(shí)驗(yàn)中采用免疫組織化學(xué)以及ELISA方法來(lái)檢測(cè)各組腸黏膜組織及血清中CBir1、TLR5、組胺及MCT的表達(dá),分析疾病進(jìn)程中上述指標(biāo)含量的變化,并結(jié)合分析CBir1的含量與上述肥大細(xì)胞脫顆粒相關(guān)指標(biāo)之間的相關(guān)性,分析兩者在TNBS誘導(dǎo)小鼠結(jié)腸炎中的作用,為臨床IBD的研究和疾病的治療提供新的思路。
健康雄性6~8周齡SPF級(jí)BALB/c小鼠72只,體重18~22 g,購(gòu)自河南省動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物質(zhì)量合格證許可證號(hào)為SCXK(豫)2010—0002。LPS、TNBS、OVA、富馬酸酮替芬購(gòu)自Sigma;小鼠類(lèi)胰蛋白酶、組胺以及抗CBir1抗體ELISA試劑盒購(gòu)自R&D;過(guò)氧化物酶標(biāo)記的鏈霉卵白素染色試劑盒及DAB顯色試劑盒購(gòu)自博奧森生物技術(shù)有限公司;兔抗小鼠CBir1抗體和TLR5抗體購(gòu)自UCL;兔抗小鼠類(lèi)胰蛋白酶β2抗體購(gòu)自福州邁新生物科技公司。
2.1實(shí)驗(yàn)分組和處理 實(shí)驗(yàn)小鼠共分為6組,每組各12只,隨機(jī)分為:(1)正常對(duì)照(normal control)組:無(wú)特殊處理,正常飼養(yǎng); (2)生理鹽水(saline)組:禁食不禁水24 h,實(shí)驗(yàn)第1、8和15天給予生理鹽水(100 μL)灌腸,實(shí)驗(yàn)后正常飲食;(3)50%乙醇(50% alcohol)組:第1、8和15天給予50%乙醇(100 μL)灌腸;(4)50%乙醇+TNBS (50% alcohol+TNBS)組:第1、8和15天分別給予由2.0 mg TNBS、2.5 mg TNBS和3.0 mg TNBS加50%乙醇配置成的100 μL溶液灌腸; (5) 50%乙醇+TNBS+酮替芬(50% alcohol+TNBS+ketotifen)組:用生理鹽水加酮替芬0.5 mg配成100 μL溶液,給予該組小鼠腹腔注射,30 min后灌腸,TNBS劑量及灌腸方法同(4)組; (6) 50%乙醇+TNBS+LPS+OVA組:取OVA 20 μg和LPS 10 μg溶于100 μL 生理鹽水中,于第7天給予該組小鼠腹腔注射,第9、12及15天重復(fù)上述過(guò)程,后將OVA 50 μg溶于100 μL生理鹽水配成溶液,于第18、19、20和21天按每只100 μL的劑量行腹腔注射,TNBS劑量和灌腸方法同(4)組。實(shí)驗(yàn)第22天處死小鼠,收集血液并離心20 min(2 000~3 000 r/min)后取上清儲(chǔ)存至-20 ℃;取小鼠結(jié)腸組織,4%甲醛固定,石蠟包埋并凍存,待后續(xù)實(shí)驗(yàn)使用。
2.2病理評(píng)分 根據(jù)Irving等[9]提出的疾病活動(dòng)指數(shù)評(píng)分(disease activity index,DAI)標(biāo)準(zhǔn)對(duì)各組小鼠一般情況進(jìn)行評(píng)估并取各組平均值為DAI分值。組織學(xué)損傷評(píng)分(histological index,HI):取小鼠結(jié)腸組織的石蠟切片,根據(jù)Ewaschuk等[10]的標(biāo)準(zhǔn)對(duì)小鼠結(jié)腸進(jìn)行HI評(píng)估,讀片及評(píng)分采用雙盲法,結(jié)果取均值。
2.3免疫組化法檢測(cè)結(jié)腸組織內(nèi)CBir1、TLR5和MCT的表達(dá) 取小鼠結(jié)腸組織石蠟切片,并通過(guò)免疫組化的方法檢測(cè)各組組織內(nèi)TLR5、 CBir1及MCT含量,并采用定性標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行判定。具體實(shí)驗(yàn)方法為:石蠟切片水化→抗原修復(fù)→3% H2O2孵育→血清封閉→加I抗過(guò)夜→復(fù)溫→加II抗→加辣根酶標(biāo)記鏈霉卵白素→避光滴加DAB顯色劑→自來(lái)水沖洗終止顯色→蘇木素復(fù)染→70%鹽酸乙醇分化→脫水→樹(shù)膠封片。具體判定標(biāo)準(zhǔn)為:(1)陽(yáng)性細(xì)胞≤5%計(jì)為0分,6%~25%計(jì)為l分,26%~50%計(jì)為2分,51%~75%計(jì)為3分,>75%計(jì)為4分;(2)陽(yáng)性強(qiáng)度:無(wú)色計(jì)為0分,淡黃色計(jì)為1分,黃色計(jì)為2分,棕黃色計(jì)為3分;將(1)和(2)兩者積分相乘,0分視為陰性(-),1~4分視為弱陽(yáng)性(+),5~8分視為陽(yáng)性(++),9~12分視為強(qiáng)陽(yáng)性(+++)。上述結(jié)果均為在高倍鏡(×400)下觀察得出,每個(gè)標(biāo)本觀察5個(gè)不重復(fù)視野,結(jié)果取平均值。
2.4血清抗-CBir1抗體、MCT和組胺的ELISA檢測(cè) 采用ELISA檢測(cè)各組小鼠血清中MCT、抗-CBir1抗體及組胺的含量。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)物吸光度(A)值及對(duì)應(yīng)的濃度,得出標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)回歸方程式。將測(cè)得的各組的A值,代入方程式中,得各組樣品的實(shí)際濃度。
數(shù)據(jù)經(jīng)SPSS 21.0 統(tǒng)計(jì)軟件處理。對(duì)稱(chēng)分布計(jì)量數(shù)據(jù)采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)進(jìn)行描述。正態(tài)分布計(jì)量數(shù)據(jù)采用Levene檢驗(yàn)法檢驗(yàn)方差齊性,并采用單因素方差分析(one-way ANOVA),方差分析有意義者采用SNK-q法進(jìn)行兩兩比較。非正態(tài)分布計(jì)量數(shù)據(jù)采用Bonferroni法進(jìn)行兩兩比較。定性資料的兩兩比較采用秩和檢驗(yàn)。變量間相關(guān)性描述采用Pearson積矩相關(guān)系數(shù)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
分別記錄各組小鼠實(shí)驗(yàn)開(kāi)始后一般情況變化,正常對(duì)照組小鼠的飲食及飲水均正常,精神狀態(tài)未見(jiàn)明顯異常,體重增加,無(wú)死亡;生理鹽水組10%~15%小鼠稀便,其余同正常對(duì)照組;50%乙醇組實(shí)驗(yàn)開(kāi)始后約20%的小鼠飲食量減少、排稀便,約10%的小鼠出現(xiàn)潛血+~++,體重減輕,1周后逐漸恢復(fù)體重,死亡率為0;50%乙醇+TNBS組實(shí)驗(yàn)開(kāi)始后出現(xiàn)食量減少、排軟便或稀便,大便潛血+~+++,精神萎靡、體重下降,且第3周達(dá)癥狀高峰,灌腸開(kāi)始后第1、2周出現(xiàn)動(dòng)物死亡現(xiàn)象,死亡率16.67%;50%乙醇+TNBS+酮替芬組小鼠實(shí)驗(yàn)開(kāi)始后癥狀較50%乙醇+TNBS組輕,第8天體重恢復(fù)90%左右,小鼠死亡率8.33%;50%乙醇+TNBS+LPS+OVA組動(dòng)物上述癥狀嚴(yán)重,體重下降較為明顯,死亡率25%。小鼠體重下降情況及DAI評(píng)分比較見(jiàn)圖1。
Figure 1. The results of body weight loss and DAI score in each group of mice. Mean±SD.n=12.*P<0.05vsnormal control group;#P<0.05vs50% alcohol+TNBS group.
圖1各組小鼠體重下降情況及DAI評(píng)分結(jié)果的比較
用放大鏡對(duì)各組小鼠的腸道組織進(jìn)行初步觀察,正常對(duì)照組、生理鹽水組及50%乙醇組腸黏膜較平滑、未見(jiàn)明顯充血腫脹及明顯淋巴濾泡增生;各模型組腸黏膜見(jiàn)顆粒狀突起,部分結(jié)腸見(jiàn)扭曲變形、充血及少量黏膜糜爛。
光鏡下組織切片可見(jiàn):正常對(duì)照組和生理鹽水組小鼠腸黏膜上皮細(xì)胞連續(xù),腺體結(jié)構(gòu)清晰,排列規(guī)則,未見(jiàn)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn);50%乙醇組腸黏膜上皮細(xì)胞連續(xù), 黏膜層見(jiàn)少量淋巴細(xì)胞浸潤(rùn),腺體結(jié)構(gòu)無(wú)明顯破壞;50%乙醇+TNBS組腸黏膜欠完整,腸上皮細(xì)胞破碎,杯狀細(xì)胞數(shù)量減少,淋巴濾泡數(shù)量增多,固有層炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),病變較嚴(yán)重區(qū)域,可見(jiàn)腸上皮小片狀壞死,黏膜下層及固有肌層均見(jiàn)小血管增生;50%乙醇+TNBS+酮替芬組腸黏膜缺乏完整性,腸上皮細(xì)胞破裂,杯狀細(xì)胞減少,黏膜層存在淋巴細(xì)胞浸潤(rùn),肌層亦可見(jiàn)少量炎癥細(xì)胞;50%乙醇+TNBS+LPS+OVA組小鼠組織損傷程度較50%乙醇+TNBS組嚴(yán)重,炎癥侵犯全層,大量腺體結(jié)構(gòu)消失,部分見(jiàn)固有層增厚。各組小鼠結(jié)腸黏膜進(jìn)行HI評(píng)分并比較見(jiàn)圖2。
Figure 2. The results of HI soore in each group of mice. Mean±SD.n=12.*P<0.05vsnormal control group;#P<0.05vs50% alcohol+TNBS group.
圖2小鼠腸黏膜組織HI評(píng)分比較
免疫組化結(jié)果顯示CBir1在結(jié)腸組織分布于腸上皮細(xì)胞膜,而MCT及TLR5分布于結(jié)腸組織腸上皮細(xì)胞質(zhì)中。根據(jù)陽(yáng)性細(xì)胞百分比及染色程度判定結(jié)果,可見(jiàn)各組結(jié)腸組織的染色程度明顯不同,其中,50%乙醇+TNBS組中CBir1、MCT和TLR5較正常對(duì)照組陽(yáng)性數(shù)增多(P<0.05),加入酮替芬后CBir1和TLR5陽(yáng)性數(shù)較50%乙醇+TNBS組減少,加入LPS和OVA后,CBir1和MCT陽(yáng)性數(shù)較50%乙醇+TNBS組增多(P<0.05),見(jiàn)圖3、表1~3。
采用Bonferroni法進(jìn)行兩兩比較,ELISA結(jié)果提示50%乙醇+TNBS模型組中血清MCT、抗-CBir1及組胺的水平明顯高于正常對(duì)照組(P<0.05);將正常對(duì)照組與生理鹽水組和50%乙醇組比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性,因而排除了機(jī)械損傷及單獨(dú)乙醇的作用對(duì)本實(shí)驗(yàn)影響,說(shuō)明50%乙醇導(dǎo)致的慢性炎癥與灌腸所致腸黏膜機(jī)械損傷無(wú)關(guān)。與50% alcohol+TNBS組相比,50% alcohol+TNBS+ketotifen組血清抗-CBir1、MCT和組胺水平明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,提示酮替芬對(duì)TNBS誘導(dǎo)的小鼠結(jié)腸炎具有治療作用;50% alcohol+TNBS+LPS+OVA組與50% alcohol+TNBS組相比,上述指標(biāo)濃度增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,說(shuō)明LPS和OVA可加重結(jié)腸炎的程度,見(jiàn)圖4。
根據(jù)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分別繪制血清中上述3個(gè)指標(biāo)的散點(diǎn)圖,結(jié)果呈線(xiàn)性趨勢(shì),表明血清中抗-CBir1的濃度與MCT及組胺的濃度相關(guān)聯(lián);觀察各組資料均服從正態(tài)分布,且各觀察值間相互獨(dú)立,可采用Pearson積矩相關(guān)系數(shù)來(lái)描述血清抗-CBir1濃度與上述兩指標(biāo)之間的關(guān)系。結(jié)果分別得出血清抗-CBir1與組胺濃度相關(guān)系數(shù)r=0.751(P<0.01);血清抗-CBir1與MCT濃度相關(guān)系數(shù)r=0.648 (P<0.01)。根據(jù)統(tǒng)計(jì)結(jié)果可得出血清中抗-CBir1與MCT的濃度呈正相關(guān)關(guān)系,小鼠血清中抗-CBir1與組胺的濃度亦呈正相關(guān),見(jiàn)圖5。
IBD是一種以腹痛、腹瀉及黏液膿血便等為主要臨床表現(xiàn)的慢性非特異性腸道炎癥性疾病,其目前的發(fā)病機(jī)制尚不明確[11]。50%乙醇+TNBS誘導(dǎo)的鼠結(jié)腸炎模型是目前廣泛應(yīng)用于IBD研究的動(dòng)物模型[12]。乙醇對(duì)腸道黏膜屏障有破壞作用,破壞后的腸黏膜暴露出角蛋白可與TNBS結(jié)合形成完全抗原,并通過(guò)核轉(zhuǎn)錄因子κB(nuclear factor-κB,NF-κB)等途徑激發(fā)免疫反應(yīng)[13]。
細(xì)菌的鞭毛是細(xì)菌主要的運(yùn)動(dòng)器官,主要作用包括侵襲、黏附及分泌毒力因子等。細(xì)菌鞭毛蛋白對(duì)細(xì)菌鞭毛的黏附能力、定植以及破壞腸黏膜屏障有重要作用[14]。CBir1是細(xì)菌鞭毛蛋白中的一種,具有許多鞭毛蛋白的共性。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),非模型組小鼠的腸黏膜組織及血清中可檢測(cè)到少量的CBir1和抗-CBir1,明顯低于TNBS誘導(dǎo)模型組,表明CBir1參與了小鼠TNBS誘導(dǎo)結(jié)腸炎的發(fā)病過(guò)程。
Figure 3. The expression of CBir1 (A), TLR5 (B) and MCT (C) in mouse colonic epithelial tissue (×400).
圖3小鼠結(jié)腸組織中CBir1、TLR5和MCT的表達(dá)
TLRs是一類(lèi)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路受體,主要在先天性免疫應(yīng)答中發(fā)揮作用[15]。目前研究表明細(xì)菌鞭毛蛋白可以識(shí)別TLR5,觸發(fā)機(jī)體免疫系統(tǒng)[16],兩者結(jié)合后,可激活骨髓樣分化因子88(myeloid differentiation factor 88,MyD88)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,從而促進(jìn)NF-κB的激活及釋放[17]。激活的NF-κB促進(jìn)細(xì)胞因子的轉(zhuǎn)錄基因上調(diào),使腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素(interleukine,IL)-1β和IL-8等前炎癥細(xì)胞因子產(chǎn)生增加,從而參與機(jī)體的先天性免疫應(yīng)答及炎癥反應(yīng)[18]。上述兩者結(jié)合后,亦可促使細(xì)胞的caspase-8及Fas相關(guān)死亡域蛋白表達(dá)上調(diào),促進(jìn)細(xì)胞凋亡的發(fā)生[19]。本實(shí)驗(yàn)表明,TNBS誘導(dǎo)模型組小鼠的腸黏膜組織中TLR5的表達(dá)量,明顯高于非模型組。表明TLR5參與了小鼠TNBS誘導(dǎo)結(jié)腸炎的發(fā)病過(guò)程。
表1CBir1免疫組化結(jié)果
Table 1. Immunohistochemical expression of CBir1 in colonic epithelial tissue of mice in each group (n=12)
Group-++++++Normol control11100Saline1002050% alcohol912050% alcohol+TNBS320750% alcohol+TNBS+ketotifen632150% alcohol+TNBS+LPS+OVA00111
表2TLR5免疫組化結(jié)果
Table 2. Immunohistochemical expression of TLR5 in colonic epithelial tissue of mice in each group (n=12)
Group-++++++Normol control10200Saline1021050% alcohol921050% alcohol+TNBS311750% alcohol+TNBS+ketotifen614150% alcohol+TNBS+LPS+OVA00012
表3MCT免疫組化結(jié)果
Table 3. Immunohistochemical expression of MCT in colonic epithelial tissue of mice in each group (n=12)
Group-++++++Normol control10200Saline1011050% alcohol930050% alcohol+TNBS401750% alcohol+TNBS+ketotifen523250% alcohol+TNBS+LPS+OVA00111
Figure 4. Comparison of serum MCT, histamine and anti-CBir1 concentrations in each group. Mean±SD.n=6.*P<0.05vsnormal control group;#P<0.05vs50% alcohol+TNBS group.
圖4各組實(shí)驗(yàn)小鼠血清中的MCT、組胺及抗-CBir1濃度比較
Figure 5. The scatter diagram showed the relationship between anti-CBir1 and MCT or histamine levels in each group.
圖5血清抗-CBir1與MCT和組胺濃度關(guān)系的散點(diǎn)圖
腸道免疫相關(guān)疾病發(fā)生時(shí),肥大細(xì)胞的數(shù)量增加,同時(shí)肥大細(xì)胞脫顆粒釋放的介質(zhì),如組胺、MCT、IL-5和TNF增加[20]。肥大細(xì)胞中含有大量的組胺,當(dāng)肥大細(xì)胞被激活時(shí),可釋放組胺促進(jìn)炎癥反應(yīng)發(fā)生。組胺受體HR1和HR2激活后,可通過(guò)影響血管、平滑肌及上皮細(xì)胞的功能,參與炎癥反應(yīng);同時(shí),組胺是一種高效的促類(lèi)胰蛋白酶釋放刺激劑。MCT能夠促進(jìn)炎癥反應(yīng)發(fā)生,其釋放及儲(chǔ)存均有高度的選擇性。因此,MCT是評(píng)估肥大細(xì)胞激活以及脫顆粒的標(biāo)志之一。MCT具有刺激外周血T細(xì)胞、單核細(xì)胞活化,并誘導(dǎo)其釋放IL-6及TNF-α等眾多細(xì)胞因子的作用,從而加重炎癥反應(yīng)。同時(shí)肥大細(xì)胞釋放的MCT可反作用于肥大細(xì)胞,促使更多肥大細(xì)胞的激活,形成 “瀑布”效應(yīng)[21]。本實(shí)驗(yàn)表明,TNBS誘導(dǎo)模型組小鼠的腸黏膜組織中MCT及血清中組胺的表達(dá)量,明顯高于非模型組。表明TNBS誘導(dǎo)結(jié)腸炎小鼠的發(fā)病過(guò)程中存在肥大細(xì)胞激活。已有研究表明肥大細(xì)胞表達(dá)TLR5,而TLR5可識(shí)別CBir1并啟動(dòng)炎癥反應(yīng)[22]。因此我們推測(cè)CBir1可通過(guò)與TLR5結(jié)合而激活肥大細(xì)胞。
LPS是構(gòu)成G-厭氧菌細(xì)胞壁的主要成分。研究表明其可與LPS結(jié)合蛋白結(jié)合形成復(fù)合體,并作用于細(xì)胞膜上相應(yīng)的受體,例如Toll樣受體。通過(guò)上述途徑將信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)至胞內(nèi),誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞及肥大細(xì)胞內(nèi)各種細(xì)胞因子的合成及釋放,如IL-10和IL-15等。LPS通過(guò)上述途徑可參與腸道的炎癥反應(yīng)[23-24]。OVA常與LPS使用于誘導(dǎo)腸黏膜的免疫反應(yīng),主要通過(guò)Toll樣受體等信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過(guò)程來(lái)促進(jìn)炎癥反應(yīng)的發(fā)生[25-26]。本實(shí)驗(yàn)中50%乙醇+TNBS+LPS+OVA組小鼠的DAI評(píng)分、HI評(píng)分均較50%乙醇+TNBS組明顯升高,因此可見(jiàn)炎癥反應(yīng)加重。
酮替芬能促進(jìn)肥大細(xì)胞細(xì)胞膜穩(wěn)定的維持,因而減少過(guò)敏活性介質(zhì)的釋放。同時(shí)對(duì)H1受體具有較強(qiáng)的拮抗作用,因此具有抗組胺作用[27]。從本實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析顯示50%乙醇+TNBS+酮替芬組小鼠的各項(xiàng)評(píng)估指標(biāo)均較50%乙醇+TNBS組明顯降低,充分表明了酮替芬具有抑制小鼠TNBS結(jié)腸炎的作用。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果示50%乙醇+TNBS組、50%乙醇+TNBS+酮替芬組和50%乙醇+TNBS+LPS+OVA組疾病嚴(yán)重程度的差異存在統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,且加入LPS+OVA組炎癥最重,而TNBS模型組結(jié)腸組織中CBir1、TLR5及MCT的表達(dá)均與疾病的嚴(yán)重程度趨勢(shì)一致,嚴(yán)重程度越深,表達(dá)越高。同時(shí)TNBS模型組血清中抗-CBir1、組胺及MCT的表達(dá),亦與疾病的嚴(yán)重程度趨勢(shì)一致。
采用Pearson積矩相關(guān)系數(shù)分析得,血清抗-CBir1與MCT濃度呈正相關(guān),血清中組胺的濃度與抗-CBir1的濃度亦呈正相關(guān),說(shuō)明CBir1的表達(dá)量可能與肥大細(xì)胞脫顆粒作用相關(guān)。結(jié)合相關(guān)研究報(bào)道與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果,推測(cè)CBir1參與肥大細(xì)胞的激活過(guò)程可能也和TLR5相關(guān)。
綜上所述,通過(guò)TNBS誘導(dǎo)小鼠結(jié)腸炎,可以模擬動(dòng)物IBD模型。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)不同的干預(yù)措施,模擬不同程度的炎癥反應(yīng),即LPS+OVA可加重炎癥過(guò)程,酮替芬作為肥大細(xì)胞穩(wěn)定劑,可一定程度減輕炎癥的發(fā)生。隨著干預(yù)的措施變化,各組小鼠的DAI、HI評(píng)分、MCT、CBirl、TLR5及組胺亦呈現(xiàn)出不同程度的表達(dá)。CBir1的表達(dá)量與肥大細(xì)胞脫顆粒作用呈正相關(guān)。
[參 考 文 獻(xiàn)]
[1] Biasi F, Leonarduzzi G, Oteiza PI, et al. Inflammatory bowel disease: mechanisms, redox considerations, and therapeutic targets[J]. Antioxid Redox Signal, 2013, 19(14):1711-1741.
[2] 李旺林, 曹 杰, 肖煥擎, 等. 大腸埃希氏菌在葡聚糖硫酸鈉誘導(dǎo)的結(jié)腸炎恢復(fù)中的作用[J]. 中國(guó)病理生理雜志, 2012, 28(1):163-167.
[3] Berthold-Pluta A, Pluta A, Garbowska M. The effect of selected factors on the survival of Bacillus cereus in the human gastrointestinal tract[J]. Microb Pathog, 2015, 82:7-14.
[4] Maukonen J, Kolho KL, Paasela M, et al. Altered fecal microbiota in paediatric inflammatory bowel disease[J]. J Crohns Colitis, 2015, 9(12):1088-1095.
[5] Peloquin JM, Nguyen DD. The microbiota and inflammatory bowel disease: insights from animal models[J]. Anaerobe, 2013, 24(12):102-106.
[6] Afrin LB, Khoruts A. Mast cell activation disease and microbiotic interactions[J]. Clinl Ther, 2015, 37(5):941-953.
[7] Rychter J, Ortega O, Berdun S, et al. Mast cell degranulation inhibits motor patterns of human ileum and sigmoid coloninvitro: relevance for postoperative ileus[J]. Neurogastroenterol Motil, 2015, 27(8):1098-1109.
[8] Schülke S, Flaczyk A, Vogel L, et al. MPLA shows attenuated pro-inflammatory properties and diminished capacity to activate mast cells in comparison with LPS[J]. Allergy, 2015, 70(10):1259-1268.
[9] Irving PM, Gibson PR. Infections and IBD[J]. Nat Clin Pract Gastroenterol Hepatol, 2008, 5(1):18-27.
[10] Ewaschuk JB, Tejpar QZ, Soo I, et al. The role of antibiotic and probiotic therapies in current and future management of inflammatory bowel disease[J]. Curr Gastroenterol Rep, 2006, 8(6):486-498.
[11] Siegmund B, Atreya R, Bokemeyer B, et al. Biosimilars in inflammatory bowel disease[J]. Clin Gastroenterol Hepatol, 2016, 14(12):1685-1696.
[12] Bramhall M, Flórezvargas O, Stevens R, et al. Quality of methods reporting in animal models of colitis[J]. Inflamm Bowel Dis, 2015, 21(6):1248-1259.
[13] Soubh AA, Abdallah DM, El-Abhar HS. Geraniol ameliorates TNBS-induced colitis: Involvement of Wnt/β-catenin, p38MAPK, NFκB, and PPARγ signaling pathways[J]. Life Sci, 2015, 136:142-150.
[14] Alexander KL, Targan SR, Elson CO 3rd. Microbiota activation and regulation of innate and adaptive immunity[J]. Immunol Rev, 2014, 260(1):206-220.
[15] Yu S, Gao N. Compartmentalizing intestinal epithelial cell Toll-like receptors for immune surveillance[J]. Cell Mol Life Sci, 2015, 72(17):3343-3353.
[16] Leifer CA, Mcconkey C, Li S, et al. Linking genetic variation in human Toll-like receptor 5 genes to the gut microbiome's potential to cause inflammation[J]. Immunol Lett, 2014, 162(2):3-9.
[17] Brand?o I, H?rmann N, J?ckel S, et al. TLR5 expression in the small intestine depends on the adaptors MyD88 and TRIF, but is independent of the enteric microbiota[J]. Gut Microbes, 2015, 6(3):202-206.
[18] Campanholo VM, Silva RM, Silva TD, et al. Oral concentrated grape juice suppresses expression of NF-κB, TNF-α and iNOS in experimentally induced colorectal carcinogenesis in Wistar rats[J]. Asian Pac J Cancer Prev, 2015, 16(3):947-952.
[19] Murdoch TB, Xu W, Stempak JM, et al. Pattern recognition receptor and autophagy gene variants are associated with development of antimicrobial antibodies in Crohn's disease[J]. Inflamm Bowel Dis, 2012, 18(9):1743-1748.
[20] Maciorkowska E, DziecioJ, Kemona A. Evaluation of selected cytokines and mononuclear cell infiltration in gastric mucosa of children with food allergy[J]. Med Sci Monit, 2000, 6(3):567-572.
[21] Nakano S, Mishiro T, Takahara S, et al. Distinct expression of mast cell tryptase and protease activated receptor-2 in synovia of rheumatoid arthritis and osteoarthritis[J]. Clin Rheumatol, 2007, 26(8):1284-1292.
[22] Demaude J, Salvadorcartier C, Fioramonti J. Phenotypic changes in colonocytes following acute stress or activation of mast cells in mice: implications for delayed epithelial barrier dysfunction[J]. Gut, 2006, 55(5):655-661.
[23] Wyns H, Plessers E, De BP, et al.Invivoporcine lipopolysaccharide inflammation models to study immunomodulation of drugs[J]. Vet Immunol Immunopathol, 2015, 166(3-4):58-69.
[24] Jiang J, Shi D, Zhou XQ, et al. Vitamin D inhibits lipopolysaccharide-induced inflammatory response potentially through the Toll-like receptor 4 signalling pathway in the intestine and enterocytes of juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian)[J]. Br J Nutr, 2015, 114(10):1560-1568.
[25] Zhang S, Liu Y. Therapeutic effects of mucosal tolerance on experimental colitis in rats[J]. Eur J Gastroenterol Hepatol, 2009, 21(10):1145-1152.
[26] Im JP, Ye BD, Kim JM, et al. Rectal administration of lipopolysaccharide and ovalbumin ameliorates acute murine colitis[J]. Dig Dis Sci, 2011, 56(8):2292-2298.
[27] Anoush M, Mohammad Khani MR. Evaluating the anti-nociceptive and anti-inflammatory effects of ketotifen and fexofenadine in rats[J]. Adv Pharm Bull, 2015, 5(2):217-222.