袁 瀛 肖 列
(1. 陜西省水土保持勘測(cè)規(guī)劃研究所,陜西 西安 710004;2. 西安理工大學(xué)省部共建西北旱區(qū)生態(tài)水利國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 陜西 西安 710048)
土壤團(tuán)聚體是土壤結(jié)構(gòu)的基本單元,影響著土壤孔隙性、抗侵蝕能力和營(yíng)養(yǎng)元素循環(huán),是土壤水、肥保持和供給功能的重要基礎(chǔ)[1-2]。土壤團(tuán)聚體的形成和周轉(zhuǎn)過(guò)程是土壤顆粒在多種團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)共同作用下的影響結(jié)果[3-5]。深入研究土壤團(tuán)聚體穩(wěn)定性與不同團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)之間的內(nèi)在聯(lián)系,對(duì)于揭示團(tuán)聚體的形成過(guò)程和促進(jìn)退化生態(tài)系統(tǒng)的恢復(fù)具有重要的指導(dǎo)意義[3,6-7]。
土壤團(tuán)聚體的形成和土壤有機(jī)碳 (SOC) 的積累有很大的關(guān)系,SOC的積累促進(jìn)團(tuán)聚體的形成,而土壤團(tuán)聚體反過(guò)來(lái)又能保護(hù)SOC[8-10],減弱微生物的分解礦化作用,因此,SOC是土壤團(tuán)聚體形成的重要膠結(jié)物質(zhì)。近年來(lái),大量研究證實(shí),菌根真菌分泌的球囊霉素相關(guān)土壤蛋白 (GRSP) 與土壤團(tuán)聚體的穩(wěn)定性有顯著關(guān)系,是土壤團(tuán)聚體形成的重要膠結(jié)物質(zhì)[5,11]。同時(shí),土壤團(tuán)聚體穩(wěn)定性與SOC和GRSP含量均有顯著的正相關(guān)關(guān)系[3,6,12]。但是,對(duì)于不同類(lèi)型團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)對(duì)土壤團(tuán)聚體穩(wěn)定性相對(duì)貢獻(xiàn)大小研究還鮮見(jiàn)報(bào)道。
黃土丘陵區(qū)地處干旱半干旱區(qū),生態(tài)環(huán)境脆弱,由于人類(lèi)不合理的土地利用,生態(tài)環(huán)境顯著惡化,水土流失嚴(yán)重。為改善該區(qū)生態(tài)環(huán)境,促進(jìn)生態(tài)系統(tǒng)良性循環(huán),我國(guó)政府實(shí)施了大面積的退耕還林還草工程,其中,坡耕地退耕撂荒自然演替是生態(tài)恢復(fù)的一種重要舉措[13]。目前,針對(duì)退耕地植被自然演替過(guò)程中土壤物理、化學(xué)及微生物學(xué)特征的響應(yīng)規(guī)律進(jìn)行了大量的研究[12,14-15],但是對(duì)于植被自然演替過(guò)程中土壤團(tuán)聚體恢復(fù)機(jī)理研究還很少涉及。因此,本研究以黃土丘陵區(qū)坡耕地退耕植被自然演替序列為研究對(duì)象,系統(tǒng)分析退耕植被演替過(guò)程中土壤團(tuán)聚體穩(wěn)定性和團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)變化規(guī)律及其內(nèi)在聯(lián)系,探究不同種類(lèi)團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)與團(tuán)聚體穩(wěn)定性的協(xié)同響應(yīng)關(guān)系,以期為黃土丘陵區(qū)的植被恢復(fù)和生態(tài)建設(shè)提供參考。
研究區(qū)位于陜西省綏德縣的王茂溝流域 (東經(jīng)110°20′26″~110°22′46″,北緯37°34′13″~37°36′03″),流域面積5.97 km2。流域內(nèi)地質(zhì)構(gòu)造比較簡(jiǎn)單,表層多被質(zhì)地均勻、組織疏松的黃綿土所覆蓋,厚度20~30 m。該區(qū)屬暖溫帶大陸性季風(fēng)氣候,多年平均氣溫10.2 ℃,多年平均降水量513 mm,60%的降水集中在7—9月,且多以暴雨形式出現(xiàn)。該區(qū)生態(tài)環(huán)境脆弱,人為活動(dòng)造成嚴(yán)重的水土流失,生態(tài)環(huán)境顯著惡化。自1953年開(kāi)始,該區(qū)開(kāi)始進(jìn)行生態(tài)恢復(fù)建設(shè),尤其是1999年,國(guó)家實(shí)施退耕還林還草工程,大量坡耕地轉(zhuǎn)變?yōu)榱值亍⒉莸鼗蛘咄烁袒倪M(jìn)行植被自然恢復(fù)。目前,該區(qū)植被主要類(lèi)型為茵陳蒿 (Artemisiacapillaris)、鐵桿蒿 (Artemisiasacrorum)、白羊草 (Bothriochloaischaemum)、油松 (Pinustabulaeformis) 林和蘋(píng)果 (Maluspumila) 樹(shù)等。
以往研究結(jié)果表明,該區(qū)退耕撂荒植被自然演替序列為茵陳蒿-鐵桿蒿-白羊草[16]。本研究選擇該區(qū)植被自然演替序列中的這3種典型草本植被群落為研究對(duì)象,探究退耕植被自然演替過(guò)程中團(tuán)聚體穩(wěn)定性與團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)的協(xié)同響應(yīng)關(guān)系。2016年8月,選取海拔、坡度、坡向基本一致的3種典型草本植被群落樣地各3個(gè)作為研究對(duì)象,樣地基本情況信息見(jiàn)表1。
表1 樣地基本情況Table 1 Description of the sampling plots
在每個(gè)樣地內(nèi)設(shè)置3個(gè)1 m × 1 m的樣方,調(diào)查植被群落組成及蓋度等。在每個(gè)樣地內(nèi)按 “S” 型多點(diǎn)采樣,采集0~20 cm土層原狀土樣品,混合密封于硬質(zhì)保鮮盒中。將采集的土壤樣品盡快運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室中,運(yùn)輸過(guò)程中避免劇烈震動(dòng)。在實(shí)驗(yàn)室中,將原狀土樣品按其自然結(jié)構(gòu)層理輕輕剝開(kāi)成直徑10 mm左右的土塊,去除植物根系、枯落物等,風(fēng)干后采用濕篩法將風(fēng)干土壤依次過(guò)5、2、0.25 mm篩,分別收集 >5 mm、2~5 mm、0.25~2 mm和 <0.25 mm粒級(jí)的團(tuán)聚體樣品,在60 ℃烘箱中烘干至恒質(zhì)量,然后稱(chēng)量,計(jì)算不同粒級(jí)水穩(wěn)性團(tuán)聚體的百分含量。將不同粒級(jí)的團(tuán)聚體分別過(guò)0.149 mm和1 mm篩,用于土壤有機(jī)碳和球囊霉素相關(guān)土壤蛋白含量的測(cè)定。
SOC含量采用有機(jī)碳分析儀 (multi N/C 3100,耶拿,德國(guó)) 測(cè)定。GRSP的提取和測(cè)定采用改進(jìn)的考馬斯亮藍(lán)法[17]。易提取性球囊霉素相關(guān)土壤蛋白 (EE-GRSP) 的提?。悍Q(chēng)取1.000 g過(guò)篩土樣,加入8 mL檸檬酸鈉提取劑 (20 mmol/L,pH=7.0),搖勻后在高壓滅菌鍋中121 ℃下提取30 min,在15 000 r/min下離心10 min,收集上清液,置于4 ℃下保存??偳蚰颐顾叵嚓P(guān)土壤蛋白 (T-GRSP) 的提取:稱(chēng)取1.000 g過(guò)篩土樣,加入8 mL檸檬酸鈉提取劑 (50 mmol/L,pH=8.0),搖勻后在高壓滅菌鍋中121 ℃下提取1 h,在15 000 r/min下離心10 min,收集上清液,每個(gè)樣品重復(fù)提取幾次,直至離心管內(nèi)上清液不再有紅棕色。將收集的上清液置于4 ℃冰箱中保存。GRSP的測(cè)定:吸取0.5 mL上清液,加入5 mL考馬斯亮藍(lán)G-250染色劑,加蓋、搖勻,顯色10 min后,于595 nm波長(zhǎng)下比色。用牛血清蛋白作為標(biāo)準(zhǔn)液,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,以1.000 g土樣中蛋白質(zhì)的毫克數(shù)表示GRSP含量。
采用團(tuán)聚體平均質(zhì)量直徑 (MWD) 作為團(tuán)聚體穩(wěn)定性指標(biāo)[4],計(jì)算公式如下:
(1)
式中:Wi為不同粒級(jí)土壤團(tuán)聚體占團(tuán)聚體總量的比例;Xi為不同粒級(jí)土壤團(tuán)聚體的平均直徑 (mm)。
采用單因素方差分析 (one-way ANOVA) 和Duncan法比較植被演替過(guò)程中不同粒級(jí)水穩(wěn)性團(tuán)聚體百分含量、MWD、膠結(jié)物質(zhì)含量的差異,采用Pearson相關(guān)分析檢驗(yàn)不同團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)之間以及團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)和MWD的相關(guān)性,采用Origin 9.0軟件繪圖。
由圖1可知,不同退耕演替階段土壤團(tuán)聚體均以 >5 mm、0.25~2 mm和 <0.25 mm粒級(jí)團(tuán)聚體為主。隨著退耕演替進(jìn)行,>5 mm團(tuán)聚體含量顯著增加 (P< 0.05),0.25~2 mm團(tuán)聚體含量顯著減少 (P< 0.05),而2~5 mm和 <0.25 mm團(tuán)聚體含量無(wú)顯著變化。不同演替階段團(tuán)聚體MWD發(fā)生了顯著變化,隨著退耕演替進(jìn)行,團(tuán)聚體MWD顯著增大 (P< 0.05),表明團(tuán)聚體穩(wěn)定性增強(qiáng)。
圖1土壤團(tuán)聚體分布和團(tuán)聚體平均質(zhì)量直徑
Fig.1 Soil aggregate distribution and MWD
不同演替階段團(tuán)聚體SOC含量如圖2所示??梢钥闯?,隨退耕演替的進(jìn)行,不同粒級(jí)團(tuán)聚體SOC含量均呈增加趨勢(shì),但只有 >5 mm粒徑團(tuán)聚體SOC含量的增加達(dá)到顯著水平 (P< 0.05)。
隨著退耕演替的進(jìn)行,不同粒徑團(tuán)聚體EE-GRSP和T-GRSP含量均呈增加趨勢(shì),但只有2~5 mm團(tuán)聚體EE-GRSP含量增加達(dá)到顯著水平 (P< 0.05)。各粒級(jí)水穩(wěn)性團(tuán)聚體T-GRSP含量隨退耕植被演替均呈顯著增加趨勢(shì) (P< 0.05)。
不同種類(lèi)團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)之間的相關(guān)性見(jiàn)圖3。
圖2團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)分布
Fig.2 Soil aggregate binding agents distribution
圖3不同團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)的相關(guān)性
Fig.3 Correlations among different aggregate binding agents
由圖3可知,>5 mm、2~5 mm和 <0.25 mm團(tuán)聚體SOC和EE-GRSP含量均呈顯著正相關(guān) (R2=0.420,P< 0.05;R2=0.608,P< 0.05;R2=0.433,P< 0.05)。>5 mm團(tuán)聚體SOC和T-GRSP含量呈顯著正相關(guān) (R2=0.537,P< 0.05),0.25~2 mm和 <0.25 mm團(tuán)聚體SOC和T-GRSP含量均呈極顯著正相關(guān) (R2=0.683,P< 0.01;R2=0.634,P< 0.01)。各粒級(jí)土壤團(tuán)聚體EE-GRSP和T-GRSP均呈極顯著正相關(guān) (P< 0.01)。
團(tuán)聚體穩(wěn)定性與團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)之間的相關(guān)性見(jiàn)圖4。
圖4團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)含量與平均質(zhì)量直徑的相關(guān)性
Fig.4 Correlations between aggregate binding agents and MWD
從圖4可以看出,>5 mm團(tuán)聚體SOC和MWD呈極顯著正相關(guān) (R2=0.658,P< 0.01)。2~5 mm團(tuán)聚體EE-GRSP和MWD呈顯著正相關(guān) (R2=0.545,P< 0.05)。2~5 mm團(tuán)聚體T-GRSP與MWD呈極顯著正相關(guān) (R2=0.839,P< 0.01),0.25~2 mm和 <0.25 mm團(tuán)聚體T-GRSP與MWD呈顯著正相關(guān) (R2=0.428,P< 0.05;R2=0.389,P< 0.05)。
土壤團(tuán)聚體是土壤結(jié)構(gòu)的基本組成單元,與土壤的物理、化學(xué)及生物學(xué)性質(zhì)顯著相關(guān),其含量和粒徑的分布影響著土壤養(yǎng)分的固持和周轉(zhuǎn)[18-19]。植被恢復(fù)是改善土壤結(jié)構(gòu),促進(jìn)土壤團(tuán)聚體形成的重要措施[2,12]。本研究中,坡耕地退耕植被演替顯著提高了>5 mm粒徑土壤團(tuán)聚體,降低了0.25~2 mm粒徑土壤團(tuán)聚體,提高了團(tuán)聚體MWD,顯著改善了土壤結(jié)構(gòu)。
土壤團(tuán)聚體的形成和穩(wěn)定主要是通過(guò)土壤中的各種膠結(jié)物質(zhì)的膠結(jié)作用實(shí)現(xiàn)的。土壤有機(jī)質(zhì)是土壤具有結(jié)構(gòu)和生物學(xué)性質(zhì)的基本物質(zhì),它既是生命活動(dòng)的條件,也是生命活動(dòng)的產(chǎn)物[20]。大量研究表明,土壤有機(jī)碳是土壤團(tuán)聚體形成的重要膠結(jié)物質(zhì)[21-22]。本研究結(jié)果表明,隨著退耕植被演替,不同粒徑團(tuán)聚體有機(jī)碳含量均呈增加趨勢(shì),而不同粒徑團(tuán)聚體有機(jī)碳含量無(wú)顯著差異。安韶山等[23]研究發(fā)現(xiàn)黃土丘陵區(qū)植被恢復(fù)過(guò)程中0.25~0.5 mm和0.5~1 mm團(tuán)聚體有機(jī)碳含量最高,>1 mm團(tuán)聚體有機(jī)碳含量隨粒級(jí)增大呈減小趨勢(shì)。這可能是由不同研究中植被類(lèi)型、土壤特性以及團(tuán)聚體分級(jí)方法不同等造成的。
球囊霉素相關(guān)土壤蛋白是叢枝菌根真菌分泌的一種糖蛋白。研究表明,GRSP比其他碳水化合物的黏附能力強(qiáng)3~10倍,被稱(chēng)為超級(jí)膠水[17],它能夠?qū)⒓?xì)小的土壤顆粒粘結(jié)成較大的土壤團(tuán)粒結(jié)構(gòu),促進(jìn)土壤穩(wěn)定性的提高[24],是土壤團(tuán)聚體形成的重要膠結(jié)物質(zhì)。退耕植被恢復(fù)顯著改善了土壤微生物群落結(jié)構(gòu),提高了菌根真菌生物量,從而促進(jìn)了土壤中GRSP的積累。本研究結(jié)果表明,退耕植被恢復(fù)后期,尤其是白羊草階段,EE-GRSP含量和T-GRSP含量均顯著提高。以往研究表明,黃土丘陵區(qū)退耕植被演替過(guò)程中,土壤真菌生物量顯著增大[13]。與茵陳蒿和鐵桿蒿群落相比,白羊草是多年生草本植被群落,且根系生物量大,更有利于與菌根真菌形成共生體,促進(jìn)GRSP的分泌和積累。
大量研究表明,團(tuán)聚體穩(wěn)定性與土壤有機(jī)碳、球囊霉素相關(guān)土壤蛋白含量等團(tuán)聚體膠結(jié)物質(zhì)顯著相關(guān)[25-26]。在這些膠結(jié)物質(zhì)中,SOC是促進(jìn)團(tuán)聚體穩(wěn)定性提高的最重要的膠結(jié)物質(zhì)[25]。本研究發(fā)現(xiàn),退耕植被演替過(guò)程中團(tuán)聚體MWD與大團(tuán)聚體SOC含量顯著相關(guān),與T-GRSP含量相關(guān)性高于EE-GRSP。這主要是由于不同GRSP庫(kù)在土壤中的存留時(shí)間不一樣[27]。與T-GRSP相比,EE-GRSP是新近沉積的蛋白質(zhì),是土壤團(tuán)聚體形成的臨時(shí)性膠結(jié)物質(zhì)[28]。退耕植被演替過(guò)程中團(tuán)聚體穩(wěn)定性的改善主要取決于T-GRSP含量的提高。黃土丘陵區(qū)退耕植被恢復(fù)過(guò)程中,SOC和GRSP含量的提高協(xié)同改善了土壤團(tuán)聚體穩(wěn)定性。
[1] Brevik E C, Cerdà A, Mataix-Solera J, et al. The interdisciplinary nature ofSOIL[J]. Soil, 2015, 1(1): 117-129.
[2] Tang F K, Cui M, Lu Q, et al. Effects of vegetation restoration on the aggregate stability and distribution of aggregate-associated organic carbon in a typical karst gorge region[J]. Solid Earth, 2016, 7(1): 141-151.
[3] Spohn M, Giani L. Water-stable aggregates, glomalin-related soil protein, and carbohydrates in a chronosequence of sandy hydromorphic soils[J]. Soil Biology and Biochemistry, 2010, 42(9): 1505-1511.
[4] Xie H T, Li J W, Zhang B, et al. Long-term manure amendments reduced soil aggregate stability via redistribution of the glomalin-related soil protein in macroaggregates[J]. Scientific Reports, 2015, 5: 14687.
[5] 景航, 史君怡, 王國(guó)梁, 等. 皆伐油松林不同恢復(fù)措施下團(tuán)聚體與球囊霉素分布特征[J]. 中國(guó)環(huán)境科學(xué), 2017, 37(8): 3056-3063.
[6] Spohn M, Giani L. Impacts of land use change on soil aggregation and aggregate stabilizing compounds as dependent on time[J]. Soil Biology and Biochemistry, 2011, 43(5): 1081-1088.
[7] 鐘思遠(yuǎn), 張靜, 褚國(guó)偉, 等. 沿海侵蝕臺(tái)地不同恢復(fù)階段土壤團(tuán)聚體組成及其與叢枝菌根真菌的關(guān)系[J]. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報(bào), 2017, 26(2): 219-226.
[8] 梁愛(ài)珍, 張曉平, 申艷, 等. 東北黑土水穩(wěn)性團(tuán)聚體及其結(jié)合碳分布特征[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào), 2008, 19(5): 1052-1057.
[9] 劉中良, 宇萬(wàn)太. 土壤團(tuán)聚體中有機(jī)碳研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2011, 19(2): 447-455.
[10] 李景, 吳會(huì)軍, 武雪萍, 等. 15年保護(hù)性耕作對(duì)黃土坡耕地區(qū)土壤及團(tuán)聚體固碳效應(yīng)的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2015, 48(23): 4690-4697.
[11] Wu Q S, Cao M Q, Zou Y N, et al. Direct and indirect effects of glomalin, mycorrhizal hyphae, and roots on aggregate stability in rhizosphere of trifoliate orange[J]. Scientific Reports, 2014, 4: 5823.
[12] Zhang C, Liu G B, Song Z L, et al. Natural succession on abandoned cropland effectively decreases the soil erodibility and improves the fungal diversity[J]. Ecological Applications, 2017, 27(7): 2142-2154.
[13] Xiao L, Liu G B, Xue S, et al. Soil microbial community composition during natural recovery in the loess Plateau, China[J]. Journal of Integrative Agriculture, 2013, 12(10): 1872-1883.
[14] 嚴(yán)方晨, 焦菊英, 曹斌挺, 等. 黃土丘陵溝壑區(qū)撂荒地不同演替階段植物群落的土壤抗蝕性: 以坊塌流域?yàn)槔齕J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào), 2016, 27(1): 64-72.
[15] He S X, Liang Z S, Han R L, et al. Soil carbon dynamics during grass restoration on abandoned sloping cropland in the hilly area of the Loess Plateau, China[J]. Catena, 2016, 137: 679-685.
[16] 常恩浩, 李鵬, 張鐵鋼, 等. 旱季雨季對(duì)黃土丘陵退耕區(qū)植被根系分布及水分利用的影響[J]. 農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào), 2016, 32(24): 129-138.
[17] Wright S F, Upadhyaya A, Buyer J S. Comparison of N-linked oligosaccharides of glomalin from arbuscular mycorrhizal fungi and soils by capillary electrophoresis[J]. Soil Biology and Biochemistry, 1998, 30(13): 1853-1857.
[18] Udom B E, Ogunwole J O. Soil organic carbon, nitrogen, and phosphorus distribution in stable aggregates of an Ultisol under contrasting land use and management history[J]. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 2015, 178(3): 460-467.
[19] 劉曉利, 何園球, 李成亮, 等. 不同利用方式旱地紅壤水穩(wěn)性團(tuán)聚體及其碳、氮、磷分布特征[J]. 土壤學(xué)報(bào), 2009, 46(2): 255-262.
[20] 程曼, 朱秋蓮, 劉雷, 等. 寧南山區(qū)植被恢復(fù)對(duì)土壤團(tuán)聚體水穩(wěn)定及有機(jī)碳粒徑分布的影響[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2013, 33(9): 2835-2844.
[21] Six J, Bossuyt H, Degryze S, et al. A history of research on the link between (micro) aggregates, soil biota, and soil organic matter dynamics[J]. Soil and Tillage Research, 2004, 79(1): 7-31.
[22] Bronick C J, Lal R. Soil structure and management: a review[J]. Geoderma, 2005, 124(1): 3-22.
[23] 安韶山, 張玄, 張揚(yáng), 等. 黃土丘陵區(qū)植被恢復(fù)中不同粒級(jí)土壤團(tuán)聚體有機(jī)碳分布特征[J]. 水土保持學(xué)報(bào), 2007, 21(6): 109-113.
[24] Rillig M C, Mummey D L. Mycorrhizas and soil structure[J]. New Phytologist, 2006, 171(1): 41-53.
[25] Six J, Feller C, Denef K, et al. Soil organic matter, biota and aggregation in temperate and tropical soils-Effects of no-tillage[J]. Agronomie, 2002, 22(7): 755-775.
[26] Curaqueo G, Barea J M, Acevedo E, et al. Effects of different tillage system on arbuscular mycorrhizal fungal propagules and physical properties in a Mediterranean agroecosystem in central Chile[J]. Soil and Tillage Research, 2011, 113(1): 11-18.
[27] Rillig M C. Arbuscular mycorrhizae, glomalin, and soil aggregation[J]. Canadian Journal of Soil Science, 2004, 84(4): 355-363.
[28] Rillig M C, Wright S F, Eviner V T. The role of arbuscular mycorrhizal fungi and glomalin in soil aggregation: comparing effects of five plant species[J]. Plant and Soil, 2002, 238(2): 325-333.