朱根鳳,余同露,2,蔡棟梁,2,葉曉娟,2,閔太善,2,陳浩明,2,盧大儒,2
(1.復(fù)旦大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,上海 200438; 2.復(fù)旦大學(xué) 現(xiàn)代人類學(xué)教育部重點實驗室,上海 200438)
乳腺癌嚴(yán)重威脅著女性健康,全世界每年新發(fā)病例高達(dá)150萬人,近年來,其發(fā)病率逐年上升[1],在我國大城市已居女性惡性腫瘤發(fā)病率之首.乳腺癌細(xì)胞的惡性增殖和轉(zhuǎn)移是患者死亡的主要原因[2],揭示其分子機制迫在眉睫.
1996年Claret等報導(dǎo)Jab1可與c-Jun的N端結(jié)合,將其名為Jab1(Jun activation domain-binding protein 1),隨后發(fā)現(xiàn)其是COP9信號體(COP9 Signalosome Complexes, CSN)的第5個亞單位,因而Jab1又被稱為CSN5[3-4].Jab1在動物、植物和真菌中序列高度保守,表明Jab1具有重要的功能[5-6].
Jab1基因定位于人類8號染色體上,Jab1蛋白由334個氨基酸分子組成.它不僅存在于COP9信號體中,而且作為單體也與很多重要功能的蛋白相互作用,如介導(dǎo)P53從細(xì)胞核中轉(zhuǎn)運到細(xì)胞質(zhì)中并降解,在多種腫瘤組織中檢測到Jab1過量表達(dá),促進(jìn)細(xì)胞增殖[7-9].此外,Jab1能激活Jun家族中c-Jun和JunD,增強AP-1活性,與細(xì)胞癌變相關(guān)[10-12].研究表明Jab1在乳腺癌、肝癌、肺癌和胰腺癌等多種腫瘤組織中特異性高表達(dá),且這種高表達(dá)與腫瘤的發(fā)生相關(guān)[13-15],但目前對Jab1調(diào)控的分子機制有待進(jìn)一步揭示.
研究表明,THBS1(Thrombospondins1)蛋白是細(xì)胞膜表面鈣結(jié)合糖蛋白,屬于血小板反應(yīng)蛋白家族[16-17].它參與腫瘤新血管生成、腫瘤轉(zhuǎn)移,以及細(xì)胞粘附、遷移、增殖、凋亡等重要過程[18-19],其編碼基因THBS1是潛在的抑癌基因,在胃癌、大腸腺癌等多種腫瘤中發(fā)生基因啟動子CpG島的異常甲基化而失活,并且THBS1基因甲基化與腫瘤的發(fā)生發(fā)展緊密相關(guān).
MCF7是常見的低浸潤性乳腺癌細(xì)胞代表,探索Jab1干擾對其生物學(xué)特性的影響,揭示相關(guān)的分子機制,對于深入了解低浸潤性乳腺癌的發(fā)生機制有重要意義.因此本研究在乳腺癌細(xì)胞MCF-7中建立Jab1的干擾表達(dá)系統(tǒng),研究Jab1基因?qū)θ橄侔┘?xì)胞增殖、細(xì)胞遷移和細(xì)胞周期的影響,初步揭示Jab1可通過甲基化介導(dǎo)調(diào)控THBS1的表達(dá),為進(jìn)一步的分子機制研究打下基礎(chǔ).
人乳腺癌細(xì)胞MCF-7、293T細(xì)胞為本室保存;TRIzol、Lipofectamine 2000試劑購自Invitrogen公司;實時定量PCR試劑購自Toyobo公司;HRP標(biāo)記的Western blot二抗購自碧云天公司;體外侵襲實驗試劑盒購自Cell Biolabs公司;Jab1抗體購自于Thermo公司,THBS1和β-actin抗體購自Cell signaling公司;細(xì)胞培養(yǎng)試劑均購自Gibco公司.
293T、MCF-7培養(yǎng)使用高糖DMEM培養(yǎng)基,添加10% FBS以及1%的青霉素-鏈霉素雙抗,37℃培養(yǎng)于CO2培養(yǎng)箱.
干擾Jab1表達(dá)的慢病毒shRNA,Jab1sh2: 5’-GCACTGAAACCCGAGTAAATG-3’,Jab1sh5: 5’-GCTTGAGCTGTTGTGGAATAA-3’;干擾Luciferase基因的對照組慢病毒shRNA序列,shLuc: 5’-CGTACGCGGAATACTTCGA-3’.
慢病毒包裝時,取生長狀態(tài)好的293T細(xì)胞,在10cm細(xì)胞培養(yǎng)皿中,以40μL的Lipofectamine 2000介導(dǎo),轉(zhuǎn)入表達(dá)shRNA的慢病毒載體質(zhì)粒7.5μg,以及3種輔助質(zhì)粒PLP1、PLP2和VSVG各2.5μg,12h后換液,60h后收集病毒上清,2000r/min離心10min,上清用0.45μm濾器過濾并分裝后凍存于-80℃冰箱;感染時,取適量慢病毒,與懸浮的乳腺癌細(xì)胞混勻,添加4μg/mL的polybrene溶液.
慢病毒感染的細(xì)胞棄去培養(yǎng)基后使用PBS(137mmol/L NaCl,2.7mmol/L KCl,10mmol/L Na2HPO4,2mmol/L KH2PO4)將培養(yǎng)基洗干凈,加入TRIzol裂解,將細(xì)胞冰上放置10min,加入三氯甲烷震蕩15s,冷凍離心取上層,加入等量異丙醇充分混勻后離心,沉淀用75%乙醇洗滌,離心,棄上清,晾干,加入適量DEPC處理的水溶解,保存于-80℃冰箱.
定量PCR在ABI公司7900HT定量PCR儀上進(jìn)行,結(jié)果由配套的SDS 2.4軟件進(jìn)行分析,GAPDH基因作為內(nèi)參,實驗進(jìn)行3組重復(fù);THBS1上游引物: CGGCCTCCCCTATGCTATCA;THBS1下游引物: GGTAACTGAGTTCTGACAGTGAC.
經(jīng)過慢病毒感染的細(xì)胞棄去培養(yǎng)基后用PBS將培養(yǎng)基洗干凈后,RIPA裂解液將細(xì)胞至于冰上裂解1h,冷凍離心取上清,Bradford法定量后將各蛋白裂解液用RIPA裂解液調(diào)整至統(tǒng)一濃度,加入適量蛋白上樣緩沖液,煮沸10min,取20μL進(jìn)行SDS-PAGE電泳,電泳結(jié)束后300mA恒流轉(zhuǎn)膜2h至PVDF膜,5%脫脂奶粉封閉1h,TBST洗3次,加入一抗(按1∶1000稀釋)孵育2h,TBST洗3次,再加相應(yīng)二抗(1∶1000稀釋)室溫孵育1h,加入顯色底物,顯影儀拍照.
用Dojindo公司的CCK-8試劑盒,按照操作說明進(jìn)行細(xì)胞增殖實驗的測定.將乳腺癌細(xì)胞消化后制成單細(xì)胞懸液,計數(shù)后,配成每毫升2×104個細(xì)胞后,每孔鋪100μL細(xì)胞,細(xì)胞培養(yǎng)一定時間后,加入CCK-8試劑顯色,溫育后酶標(biāo)儀450nm測OD值.
接種乳腺癌細(xì)胞MCF-7于六孔板培養(yǎng)板中,形成致密單層后,用Tip頭貼著直尺在六孔板中輕輕劃痕,PBS洗去細(xì)胞碎片,再加入無血清培養(yǎng)基.選擇不同時間點,顯微鏡觀測細(xì)胞遷移情況,照相.
消化細(xì)胞,1000r/min 5min離心收集細(xì)胞,PBS洗2次.加適量PBS重懸(小于500μL),加5mL -20℃預(yù)冷的70%乙醇,固定30min.離心,棄上清,PBS懸浮,再離心,棄上清.加400μL含25μg/mL碘化丙啶和1μg/mL RNase A的染色液室溫避光染色30min后,上機檢測細(xì)胞周期,用ModFit軟件分析結(jié)果.
本研究中數(shù)值用“均值+標(biāo)準(zhǔn)差”表示,所有實驗重復(fù)3次以上,組間通過SPSS軟件的t-檢驗進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析.
用制備的Jab1基因的shRNA干擾慢病毒(Jab1sh2和Jab1sh5)和對照慢病毒(shLuc)分別感染MCF-7細(xì)胞,192h后熒光顯微鏡觀察慢病毒介導(dǎo)的shRNA干擾表達(dá)情況,并抽提相應(yīng)細(xì)胞總蛋白質(zhì),進(jìn)行Western blot分析,檢測細(xì)胞內(nèi)Jab1基因的表達(dá)水平,結(jié)果如圖1所示,可見光視野和熒光視野的對比結(jié)果表明(圖1(a)),高于90%的MCF-7細(xì)胞表達(dá)GFP熒光基因,說明shLuc、Jab1sh2和Jab1sh5慢病毒對MCF-7細(xì)胞的感染率高.
圖1(b)的Western blot檢測結(jié)果表明,在蛋白質(zhì)水平上Jab1基因的shRNA慢病毒干擾細(xì)胞組中的Jab1蛋白的表達(dá)量顯著低于對照組.綜合圖1的結(jié)果表明,慢病毒介導(dǎo)的shRNA干擾使得MCF-7細(xì)胞中Jab1基因的表達(dá)顯著下調(diào),乳腺癌細(xì)胞MCF-7中Jab1表達(dá)干擾系統(tǒng)構(gòu)建成功.
圖1 MCF-7細(xì)胞中慢病毒介導(dǎo)的Jab1 RNAi的檢測Fig.1 Detection of Jab1 RNAi by Lentivirus-mediated shRNA in MCF-7 cells(a) 對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染后,顯微鏡拍攝的可見光和熒光照片,左邊為可見光照片,右邊為熒光照片;(b) Western blot檢測對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染后細(xì)胞中Jab1蛋白的表達(dá)水平,β-Actin基因為內(nèi)參.
用Jab1基因的shRNA干擾慢病毒(Jab1sh2和Jab1sh5)和對照慢病毒(shLuc)分別感染MCF-7細(xì)胞,CCK8細(xì)胞增殖檢測試劑盒檢測在Jab1基因的表達(dá)受到干擾后細(xì)胞增殖能力的變化,結(jié)果如圖2所示.可見Jab1sh2以及Jab1sh5慢病毒感染的兩組MCF-7實驗組細(xì)胞中的Jab1表達(dá)被干擾之后,細(xì)胞在450nm處的平均吸光值顯著低于對照慢病毒shLuc感染細(xì)胞的平均吸光值,由對照組的0.659分別下降至兩組實驗組的0.444以及0.401,統(tǒng)計分析表明,兩組實驗組和對照組相比差異極顯著(P<0.01).這表明MCF-7細(xì)胞中Jab1基因的表達(dá)干擾使得細(xì)胞的增殖能力顯著下降,即Jab1對于MCF-7的細(xì)胞增殖能力具有重要作用.
圖2 Jab1 RNAi對MCF-7細(xì)胞增殖的影響Fig.2 Effect of Jab1 RNAi on the proliferation of MCF-7 cells450nm處的平均吸光值(n=5)代表細(xì)胞相對的增殖能力,**: P<0.01.
圖3 Jab1 RNAi對MCF-7細(xì)胞周期的影響Fig.3 Effect of Jab1 RNAi on the MCF-7 cell cycle將Jab1干擾表達(dá)實驗組和shLuc對照組MCF-7細(xì)胞PI避光染色后,用流式細(xì)胞儀測定細(xì)胞周期和sub G1期比例.
圖4 Jab1 RNAi對MCF-7細(xì)胞遷移能力的影響Fig.4 Effects of Jab1 RNAi on migration ability of MCF-7 cells對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染的細(xì)胞在劃痕0h、24h和48h觀察劃痕愈合情況.
流式細(xì)胞儀測定Jab1干擾表達(dá)實驗組和shLuc對照組MCF-7細(xì)胞的細(xì)胞周期和sub G1期比例,結(jié)果如圖3所示,測定的Jab1干擾表達(dá)實驗組Jab1sh2組和Jab1sh5組的sub G1期比例相較于shLuc對照組分別增加13.0%和15.2%,統(tǒng)計分析表明,兩者差異極顯著(P<0.01).這表明乳腺癌中干擾Jab1的表達(dá)會增加細(xì)胞凋亡的比例.
本研究用細(xì)胞劃痕愈合情況測定細(xì)胞的遷移能力,在劃痕后0h、24h和48h 3個時間點進(jìn)行觀察拍照,結(jié)果如圖4所示,shLuc對照組細(xì)胞劃痕48h后已基本愈合,而Jab1干擾表達(dá)實驗組(Jab1sh2和Jab1sh5)則還留有明顯的劃痕口未能合攏,表明干擾Jab1的表達(dá)降低了MCF-7細(xì)胞的遷移速率,Jab1基因決定了細(xì)胞的遷移能力.
本室前期的基因芯片研究表明,在MDA231細(xì)胞中干擾Jab1的表達(dá),導(dǎo)致細(xì)胞中THBS1 mRNA水平下調(diào).在MCF-7細(xì)胞中是否有類似情況,本研究做進(jìn)一步揭示.
提取對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染后MCF-7細(xì)胞的總RNA,RT-PCR檢測表明,與對照組相比,Jab1表達(dá)干擾組中THBS1 mRNA的表達(dá)水平大大降低,如圖5(a)所示,統(tǒng)計分析表明,Jab1表達(dá)干擾組和對照組的表達(dá)水平差異極顯著(P<0.01).
提取對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染后MCF-7細(xì)胞的總蛋白,Western blot檢測Jab1和THBS1的表達(dá),結(jié)果如圖5(b)所示,隨著細(xì)胞內(nèi)Jab1蛋白表達(dá)的下降,THBS1蛋白表達(dá)的水平明顯下調(diào).
圖5 Jab1 RNAi對MCF-7細(xì)胞中THBS1蛋白表達(dá)的影響Fig.5 Effect of Jab1 RNAi on the expression of THBS1 protein in MCF-7 cells(a) RT-PCR檢測對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染后細(xì)胞中THBS1 mRNA的表達(dá)水平;(b) Western blot檢測對照慢病毒和Jab1基因的shRNA干擾慢病毒感染后細(xì)胞中Jab1和THBS1蛋白的表達(dá)水平(DMSO為空白組,5-Aza-dC為添加甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑組),β-Actin為內(nèi)參.
為進(jìn)一步研究Jab1是否會影響THBS1基因的DNA甲基化,本研究使用甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC分別處理Jab1干擾表達(dá)實驗組和shLuc對照組,提取總蛋白Western blot檢測.如圖5(b)所示,5-Aza-dC處理Jab1干擾表達(dá)實驗組和shLuc對照組后,THBS1的表達(dá)水平相對于未加5-Aza-dC(DMSO組)發(fā)生了上調(diào),甲基化轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC能增加Jab1干擾組的THBS1表達(dá)水平,幾乎與對照組持平.說明Jab1基因調(diào)控THBS1的表達(dá)受甲基化水平的影響.
目前的研究表明,Jab1不僅作為COP9信號復(fù)合體的成員扮演著重要角色,而且作為單體,它調(diào)控了細(xì)胞內(nèi)多種關(guān)鍵蛋白,在細(xì)胞周期調(diào)控、細(xì)胞信號傳遞等過程中發(fā)揮了重要功能,它在乳腺癌、肝癌和胃癌等多種腫瘤中表達(dá)上調(diào),與腫瘤的發(fā)生發(fā)展有緊密相關(guān)[1,20],但是,Jab1在乳腺癌細(xì)胞中的分子機制還有待深入的揭示.
本室前期的研究表明,在乳腺癌MDA-231細(xì)胞中,Jab1基因調(diào)控Nov基因和FraI基因的表達(dá)[21-22],為Jab1分子機制研究打下了基礎(chǔ).因MDA231為高侵染的乳腺癌細(xì)胞,因此本研究選擇低侵染的乳腺癌細(xì)胞MCF-7,試圖從另外一個角度闡明Jab1的調(diào)控機制.本研究首先建立了MCF-7細(xì)胞中Jab1的干擾表達(dá)系統(tǒng),實現(xiàn)了對細(xì)胞中Jab1基因表達(dá)的高效干擾.CCK8細(xì)胞增殖實驗發(fā)現(xiàn)Jab1的表達(dá)干擾使得MCF-7細(xì)胞的增殖能力發(fā)生了顯著的下降,劃痕實驗證實Jab1的表達(dá)干擾能顯著抑制細(xì)胞的遷移,流式細(xì)胞儀分析表明干擾Jab1的表達(dá)能極大地誘導(dǎo)細(xì)胞進(jìn)入凋亡.
研究表明干擾Jab1的表達(dá)能極大的增加sub G1期細(xì)胞的比例,sub G1代表細(xì)胞中亞二倍體的含量,這是細(xì)胞凋亡的重要指標(biāo),說明干擾Jab1的表達(dá)能造成部分細(xì)胞中DNA的斷裂和降解,誘導(dǎo)其凋亡,使得Jab1成為低浸潤乳腺癌細(xì)胞中一個重要的治療靶點,對將來的治療研究有積極意義.
越來越多的研究表明,THBS1在腫瘤的發(fā)生中具有多種功能,在胃癌、大腸癌、白血病等中是抑癌基因,而在乳腺癌演進(jìn)的不同過程中功能迥異,乳腺原位癌中THBS1表達(dá)于基底膜,抑制腫瘤發(fā)生,在高組織學(xué)分級及伴有廣泛壞死的原位癌中表達(dá)缺失[23-26].而Horiguchle等研究表明在淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移陽性的乳腺癌中,THBS1的腫瘤細(xì)胞陽性表達(dá)率很高,提示它與腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移相關(guān)[27].本研究表明,在MCF-7細(xì)胞中其表達(dá)高,Jab1基因表達(dá)被干擾后,其表達(dá)也下降,說明THBS1的表達(dá)受Jab1調(diào)控.
前人有報導(dǎo)在腫瘤細(xì)胞中,THBS1的啟動子被甲基化而被抑制表達(dá),Jab1是通過何種途徑調(diào)控THBS1的呢?本研究表明,用甲基轉(zhuǎn)移酶抑制劑5-Aza-dC處理,Western blot檢測表明Jab1基因表達(dá)干擾實驗組中THBS1的表達(dá)下降被極大的抑制,暗示Jab1可能是抑制表觀遺傳學(xué)中的甲基化修飾方式來調(diào)控THBS1基因的表達(dá),Jab1干擾表達(dá)后其對THBS1啟動子區(qū)甲基化的抑制作用可能大大降低,增加了THBS1啟動子區(qū)的甲基化水平,抑制了THBS1的表達(dá),在5-Aza-dC的作用下,THBS1啟動子區(qū)的甲基化被抑制,THBS1的表達(dá)增加.
參考文獻(xiàn):
[1] TORRE L A, BRAY F, SIEGEL R L, et al. Global cancer statistics, 2012 [J].CACancerJClin, 2015,65(2): 87-108.
[2] CHAMBERS A F, NAUMOV G N, VANTYGHEM S A, et al. Molecular biology of breast cancer metastasis Clinical implications of experimental studies on metastatic inefficiency [J].BreastCancerRes, 2000,2(6): 400-407.
[3] CLARET F X, HIBI M, DHUT S, et al. A new group of conserved coactivators that increase the specificity of ap-1 transcription factors [J].Nature, 1996,383(6599): 453-457.
[4] WEI N, DENG X W. The cop9 signalosome [J].AnnuRevCellDevBiol, 2003,19(1): 261-286.
[5] TOMODA K, KUBOTA Y, KATO J. Degradation of the cyclin-dependent-kinase inhibitor p27kip1 is instigated by Jab1 [J].Nature, 1999,398(6723): 160-165.
[6] BAE M K, AHN M Y, JEONG J W, et al. Jab1 interacts directly with HIF-1α and regulates its stability [J].JBiolChem, 2002,277(1): 9-12.
[7] BECH-OTSCHIR D, KRAFT R, HUANG X, et al. Cop9 signalosome-specific phosphorylation targets p53 to degradation by the ubiquitin system [J].EMBOJ, 2001,20(7): 1630-1639.
[8] SUI L, DONG Y, OHNO M, et al. Jab1 expression is associated with inverse expression of p27(kip1) and poor prognosis in epithelial ovarian tumors [J].ClinCancerRes, 2001,7(12): 4130-4135.
[9] RASSIDAKIS G Z, CLARET F X, LAI R, et al. Expression of p27(kip1) and c-jun activation binding protein 1 are inversely correlated in systemic anaplastic large cell lymphoma [J].ClinCancerRes, 2003,9(3): 1121-1128.
[10] KARIN M, LIU Z, ZANDI E. Ap-1 function and regulation [J].CurrOpinCellBiol, 1997,9(2): 240-246.
[11] EFERL R, HOEBERTZ A, SCHILLING A F, et al. The Fos-related antigen Fra-1 is an activator of bone matrix formation [J].EMBOJ, 2004,23(14): 2789-2799.
[12] PRUSTY B K, DAS B C. Constitutive activation of transcription factor Ap-1 in cervical cancer and suppression of human papillomavirus (HPV) transcription and Ap-1 activity in hela cells by curcumin [J].IntJCancer, 2005,113(6): 951-960.
[13] DONG Y, SUI L, WATANABE Y, et al. Prognostic significance of Jab1 expression in laryngeal squamous cell carcinomas [J].ClinCancerRes, 2005,11(1): 259-266.
[14] HARADA K, KAWASHIMA Y, YOSHIDA H, et al. High expression of jun activation domain-binding protein 1(Jab1) is a strong prognostic marker in oral squamous cell carcinoma patients treated by UFT in combination with radiation [J].AnticancerRes, 2006,26(2B): 1615-1619.
[15] HSU M C, HUANG CC, CHANG H C, et al. Overexpression of Jab1 in hepatocellular carcinoma and its inhibition by peroxisome proliferator-activated receptor γ ligandsinvitroandinvivo[J].ClinCancerRes, 2008,14(13): 4045-4052
[16] CHEN H, HERNDON M E, LAWLER J. The cell biology of thrombospondin-1 [J].MatrixBiol, 2000,19(7) : 597-614.
[17] RESOVI A, PINESSI D, CHIORINO G, et al. Current understanding of the thrombospondin-1 interactome [J].MatrixBiol, 2014,37: 83-91
[18] JAYACHANDRAN A, ANAKA M, PRITHVIRAJ P, et al. Thrombospondin 1 promotes an aggressive phenotype through epithelial-to-mesenchymal transition in human melanoma [J].Oncotarget, 2014,5(14): 5782-5797.
[19] IOACHIM E, DAMALA K, TSANOU E. Thrombospondin-1 expressionin breastcancer: Prognostic significance and association with p53 alterations,tumourangiogenesis and extracellular matrix components [J].HistolHistopathol, 2012,27(2): 209-216.
[20] SHACKLEFORD T J, CLARET F X. Jab1/csn5: A new player in cell cycle control and cancer [J].CellDiv, 2010,5(1): 26
[21] 王靖坤,王順妮,陳紅巖,等.慢病毒介導(dǎo)的Jab1基因表達(dá)干擾在乳腺癌細(xì)胞中功能的初步研究 [J].復(fù)旦學(xué)報(自然科學(xué)版),2013,52(6): 724-727
[22] 王順妮,陳紅巖,葉曉娟,等.乳腺癌Jab1蛋白調(diào)控Nov基因的表達(dá)受甲基化水平影響 [J].復(fù)旦學(xué)報(自然科學(xué)版),2016,55(1): 112-118.
[23] RICE A J, STEWARD M A, QUINN C M. Thrombospondin 1 protein expression relates to good prognostic indices in ductal carcinoma in situ of the breast [J].JClinPathol, 2002,55(12): 921-925.
[24] GASPARINI G, TOI M, BIGANZOLI E, et al. Thrombospondin-1 and -2 in node-negative breast cancer: Correlation with angiogenic factors,p53, cathepsin D,hormone receptors and prognosis [J].Oncol, 2001,60(1): 72-80.
[25] MIYATA Y, SAKAI H. Thrombospondin-1 in urological cancer: Pathological role, clinical significance, and therapeutic prospects [J].IntJMolSci, 2013,14(6): 12249-12272.
[26] OKADA K, HIRABAYASHI K, IMAIZUMI T, et al. Stromal thrombospondin-1 expression is a prognostic indicator and a new marker of invasiveness in intraductal papillary-mucinous neoplasm of the pancreas [J].BiomedRes, 2010,31(1): 13-19.
[27] HORIGUCHI H, YAMAGATA S, RONG Q Z, et al. Thrombospondin-1 is highly expressed in desmoplastic components of invasive ductal carcinoma of the breast and associated with lymph node metastasis [J].JMedInvestigation, 2013,60(1/2): 91-96.