李玉英,王玉玲,王轉(zhuǎn)花
(山西大學(xué)生物技術(shù)研究所,化學(xué)生物學(xué)與分子工程教育部重點實驗室,山西太原030006)
藜麥(Chenopodium quinoa)是原產(chǎn)于南美洲安第斯山脈的藜科藜屬植物[1],是古印加人的傳統(tǒng)糧食作物,種子顏色有白、紅、黑3種色系,具有耐寒、耐旱、耐貧瘠、耐鹽堿等特性,是喜冷涼和高海拔的作物[2-3]。由于生長習(xí)性以及對種植條件要求的特殊性,不同環(huán)境下生產(chǎn)出的藜麥品質(zhì)相差極大,目前,其主要分布于南美洲,亞洲的中國山西、青海省及西北地區(qū)等。
藜麥營養(yǎng)價值極高,有營養(yǎng)黃金的美稱。藜麥中含有大量優(yōu)質(zhì)蛋白,平均為12%~23%[4],是普通谷物的2倍及以上,可與肉蛋奶媲美,并且含有人體生長必需的所有氨基酸,其中,賴氨酸含量高于大多數(shù)谷物。藜麥富含鎂、鋅、鐵、鈣、鉀等多種礦物質(zhì),藜麥與常見糧食作物相比,鈣、鐵含量是小麥的4倍。此外,藜麥還含有豐富的膳食纖維[5]、維生素以及包括多酚、皂苷等在內(nèi)的生物活性成分[6],其中,黃酮類物質(zhì)被認(rèn)為是主要的功能活性成分,不僅具有抗氧化活性[7-8],還有良好的抑菌活性[9]。RITVA等[10]研究表明,秘魯、西班牙、薩爾塞多等地藜麥的黃酮類含量在 36.2~144.3 mg/100 g;ZHU等[11]從美國托倫斯藜麥種子中分離出了6種黃酮苷元,這6種黃酮苷元在自由基清除試驗中都表現(xiàn)出很強的抗氧化活性。近年來,我國一些學(xué)者也開展了對藜麥的研究,孫雪婷等[12]以浙江本土藜麥品種Vanilla為材料,對藜麥總黃酮乙醇浸提法進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果表明,在最佳條件下黃酮的得率可達(dá)2.64 mg/g。
由于藜麥豐富的營養(yǎng)價值,對藜麥中化學(xué)成分及生物活性的研究已成為國內(nèi)外食品研究領(lǐng)域的熱點,我國對于藜麥的研究起步較晚,大多集中在藜麥黃酮提取工藝優(yōu)化方面,對藜麥黃酮成分鑒定以及抗氧化和抗菌活性的研究甚少。
本研究以山西種植的藜麥種子為材料,利用地方特色資源,采用多種方法分析測定了其中的營養(yǎng)成分,并利用提取獲得的藜麥黃酮化合物進(jìn)行了抗氧化和抑菌活性研究,旨在評價藜麥的營養(yǎng)價值以及為藜麥中抗氧化物質(zhì)以及抗菌劑的開發(fā)提供理論依據(jù)。
供試黑色(BQ)、紅色(RQ)、白色(WQ)3種藜麥種子采自山西靜樂,系當(dāng)年收獲種子。
供試菌株金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,BNCC186335),大腸桿菌(Escherichia coli,BNCC337271),枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis,BNCC124990),均由山西大學(xué)化學(xué)生物學(xué)與分子工程教育部重點實驗室保存。
1,1- 二 苯 基 -2 三 硝 基 苯 肼(1,1-dipheny1-2-picrylhydrazyl,DPPH)購自美國Sigma公司;蘆丁、槲皮素、山奈酚標(biāo)品購自北京索萊寶科技有限公司;甲醇、甲酸為色譜純試劑;3,5-二硝基水楊酸(DNS)、無水乙醇、濃硫酸、無水葡萄糖、碳酸鈉、氫氧化鈉、硼酸、硫酸銅和硫酸鉀等其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
QE-250高速粉碎機(浙江屹立工貿(mào)有限公司);RE-3000B旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海亞榮生化儀器廠);HN-36B恒溫培養(yǎng)箱(北京市恒諾利興科技有限公司);HC-2518離心機(安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司);Lambda35紫外可見分光光度計(美國Perkin Elmer公司);Heto PowerDry PL3000真空冷凍干燥器(上海匯分電子科技);HS800D恒溫水浴鍋 (太倉華利達(dá)儀器廠);Agilent 1260系列高效液相色譜儀(安捷倫有限公司)。
1.3.1 藜麥營養(yǎng)成分分析 采用國標(biāo)方法對山西靜樂藜麥營養(yǎng)成分進(jìn)行測定,蛋白質(zhì)測定采用凱氏定氮法(GB 5009.5—2010);灰分測定采用灼燒法(GB 5009.4—2010);水分含量測定采用直接干燥法(GB 5009.3—2010);粗脂肪測定采用索氏抽提法(GB 5009.6—2003);氨基酸成分委托山西糧食質(zhì)量檢測中心檢測。
1.3.2 藜麥黃酮的提取制備 其參考文獻(xiàn)[13],稍有改進(jìn)。準(zhǔn)確稱取5 g干燥粉碎的藜麥樣品,石油醚索氏抽提去脂。以料液比1∶30加入1%HCl-甲醇溶液,在恒溫70℃水浴條件下回流2 h。濾渣重復(fù)上述步驟,重復(fù)提取一次,合并2次提取液,減壓抽濾,濾液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干,殘渣用甲醇定容至5 mL,4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.3 黃酮含量的測定 用甲醇配制蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品0.25 mg/mL,用甲醇稀釋標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度分別為0.05,0.10,0.15,0.20,0.25 mg/mL,吸取上述標(biāo)準(zhǔn)溶液 5.0 mL,加入到 5 個試管中,分別加 0.3 mL 5%亞硝酸鈉,混勻,室溫下靜置5 min后再加10%硝酸鋁 0.3 mL,混勻,靜置 10 min 后,加入 2 mL 4%氫氧化鈉,然后加水補足到10 mL,混勻后放置10 min,以甲醇為空白對照,510 nm處紫外測定吸光度值,繪制蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線。取用甲醇稀釋后不同質(zhì)量濃度的藜麥黃酮提取液重復(fù)以上步驟,根據(jù)蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算不同藜麥樣品中總黃酮的含量。
1.3.4 藜麥黃酮的HPLC-DAD檢測 藜麥黃酮提取液經(jīng)0.45 μm微孔濾膜過濾后,進(jìn)樣5 μL進(jìn)行分析。
用以下色譜條件進(jìn)行定量分析。色譜柱:Venusil XBP C18(L)(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動相為甲醇-0.4%磷酸,梯度洗脫0~10 min,45%~48%甲醇;10~30 min,48%~52%甲醇;波長為 360 nm;流速為 1.0 mL/min;柱溫為 30 ℃;進(jìn)樣量為 10 μL。
1.3.5 抗氧化活性測定
1.3.5.1 DPPH自由基清除作用測定 配制 0.05 mg/mL DPPH甲醇溶液,避光放置備用。用甲醇稀釋樣品質(zhì)量濃度分別為 0.05,0.10,0.15 mg/mL,試管中分別加入不同濃度的樣品溶液2mL,DPPH溶液2mL,充分混勻,在黑暗中避光反應(yīng)30 min,測定517 nm處的吸光值(A樣品),用甲醇代替DPPH溶液測定吸光值(A對照),用甲醇代替樣品測定吸光值(A空白),以維生素C為陽性對照。試驗平行測定3次,取平均值。按公式(1)計算DPPH自由基的清除率。
1.3.5.2 羥自由基(·OH)清除率的測定 用甲醇稀釋樣品質(zhì)量濃度分別為 0.05,0.10,0.15 mg/mL,試管中分別加入不同濃度的樣品溶液2 mL,按順序先后加入2 mL 6 mmol/L FeSO4,2 mL 6 mmol/L水楊酸-乙醇,2 mL 6 mmol/L H2O2,充分搖勻后在37℃的水浴鍋中反應(yīng)30 min,以蒸餾水為參比,于510 nm下測量各濃度的吸光度(D樣品)。用蒸餾水代替水楊酸測得吸光度(D對照),用蒸餾水代替樣品測定吸光度(D空白)。以維生素C作為陽性對照。所有試驗均平行測定3次,取平均值,按公式(2)計算·OH清除率。
1.3.5.3 總還原力的測定 試管中依次加入1 mL不同濃度提取溶液,2.5 mL 0.2 mol/L PBS 磷酸緩沖液(pH值6.6),2.5 mL 1.0%K3(Fe(CN)6)混合置于50℃的水浴鍋中反應(yīng)20 min,加入2.5 mL 10%三氯乙酸溶液,搖勻,將混合物以3 000 r/min離心10 min。吸取2.5 mL上清液,加2.5 mL雙蒸水和0.5 mL 0.1%三氯化鐵,混勻,測定樣品在 700 nm波長處的吸光度值。以維生素C作為陽性對照。結(jié)果重復(fù)測定3次,取平均值。
1.3.6 抗菌活性測定 依據(jù)上述3個樣品黃酮含量和抗氧化活性測定結(jié)果,選取黃酮含量和抗氧化活性都較高的BQ樣品進(jìn)行抑細(xì)菌活性測定。取供試的大腸桿菌、枯草芽孢桿菌、金黃色葡萄球菌菌株進(jìn)行活化,加入無菌水中,制成菌懸液,借助麥?zhǔn)媳葷醿x調(diào)制菌濃度為107cfu/mL。采用牛津杯法測黃酮提取物的抑菌活性。采用甲醇稀釋黃酮貯備液質(zhì)量濃度分別為16,8,4 mg/mL。無菌條件下,在培養(yǎng)皿中注入20 mL培養(yǎng)基,取0.18 mL菌懸液均勻涂布于其上,將滅菌的牛津杯均勻置于平板上,然后加入0.2 mL樣液,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24~28 h。用甲醇作為陰性對照,采用精確度為1 mm的游標(biāo)卡尺量取抑菌圈直徑,肉眼觀察無明顯細(xì)菌生長的區(qū)域作為抑菌圈邊緣,試驗抑菌圈直徑為減去對照組后的值,結(jié)果平行測定3次。
所有試驗均重復(fù)測定3次,采用SPSS 17.0統(tǒng)計分析軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理。
表1 藜麥基本營養(yǎng)成分分析
表2 藜麥氨基酸組成分析 g/100 g
由表1可知,藜麥中蛋白質(zhì)含量平均為12.98%,其中,WQ為 11.81%,RQ為 13.74%,BQ為 13.39%,相比于其他谷類作物大麥(11%)、水稻(7.5%),其蛋白質(zhì)含量較高,與玉米(13.4%)相當(dāng)[14-15]。藜麥中的淀粉含量在57.08%~63.37%,與其他谷物水稻(70%~80%)、玉米(65%~72%)相比,藜麥中的淀粉含量稍低。3種藜麥的水分、灰分、脂肪含量差異不大。不同顏色藜麥黃酮含量差異較大,顏色越深含量越高,最大為 3.35 mg/g。
本試驗對17種氨基酸進(jìn)行了檢測,從表2可以看出,3種藜麥的氨基酸組成的類型相差不大,但氨基酸相對含量有一定的差異。其中,BQ的氨基酸總量最高,平均為12.53 g/100 g。測定結(jié)果也顯示,藜麥中富含賴氨酸(0.25~0.35 g/100 g)、亮氨酸(1.48~1.82 g/100 g)、蛋氨酸(0.12~0.16 g/100 g)等人體生長所需的必需氨基酸。
表3 藜麥中黃酮化合物的含量 mg/100 g
用高效液相色譜法測定藜麥種子中提取的黃酮類化合物。HPLC的分析測定結(jié)果如圖1所示,其中,(1),(2),(3),(7) 為槲皮素,(4),(5),(6),(8)為山奈酚,都是藜麥種子黃酮的主要成分。
根據(jù)HPLC的分析測定結(jié)果,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得出2種標(biāo)品中黃酮的回歸方程。其中,槲皮素標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為 y= 40.028x+4.308 7 (R2=0.996 19);山奈酚標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為 y=35.649x+3.067(R2=0.993 6)。根據(jù)以上標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程計算黃酮含量,結(jié)果列于表3,藜麥中槲皮素和山奈酚的含量分別為 15.06~35.25,15.56~20.46 mg/100 g。其中,RQ樣品中槲皮素含量明顯高于其他2個樣品。RITVA等[10]研究表明,不同品種藜麥的黃酮類含量在 36.2~144.3 mg/100 g;HIROSE等[16]利用高效液相色譜分析了4種藜麥黃酮苷,結(jié)果表明,日本藜麥種子黃酮的含量高于南美藜麥和日本的蕎麥,而大部分谷物類如水稻、小麥、玉米都不含有黃酮類物質(zhì)。
以Vc為陽性對照,采用3種常用的體外抗氧化活性方法(DPPH自由基清除法、羥自由基(·OH)清除法和總還原力法)對藜麥黃酮的抗氧化活性進(jìn)行了測定,結(jié)果如圖2所示。
由圖2可知,3種不同顏色藜麥黃酮提取物均具有明顯的抗氧化活性,清除DPPH的IC50值(半抑制濃度)分別為 0.08,0.09,0.14 mg/mL,清除·OH的 IC50值分別為 0.08,0.10,0.15 mg/mL,BQ 和 RQ樣品清除自由基的能力強于WQ,表明顏色越深,其清除自由基的能力越強。還原力測定結(jié)果表明,3種樣品藜麥黃酮在試驗質(zhì)量濃度(0.05~0.15 mg/mL)范圍內(nèi)總還原力與質(zhì)量濃度呈線性關(guān)系,說明其具有較強的還原能力,與Vc相比,清除率略低。這一結(jié)果與上述黃酮含量測定結(jié)果也具有一定程度的一致性,整體呈正相關(guān)趨勢,表明藜麥中黃酮某些成分具有清除氧自由基抗氧化的作用。
藜麥黃酮對金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、枯草芽孢桿菌抑菌作用通過牛津杯法進(jìn)行了檢測。由圖3可知,藜麥黃酮對各供試菌株均表現(xiàn)出明顯的抑制作用,最大抑菌圈直徑分別為22,24,23 mm,隨著黃酮質(zhì)量濃度的增大,抑菌范圍也逐漸增大,對大腸桿菌抑制效果最為明顯。
已有研究表明,不同產(chǎn)地、生態(tài)環(huán)境、栽培條件會影響藜麥種子營養(yǎng)成分及其抑菌性、抗氧化活性。山西省靜樂縣作為我國最大的藜麥種植生產(chǎn)縣,與種植地方小雜糧相比具有比較高的競爭優(yōu)勢。本研究以3種山西靜樂藜麥種子為材料,營養(yǎng)成分測定結(jié)果表明,其蛋白質(zhì)、脂肪、氨基酸含量稍有差異,但均高于小麥、水稻等傳統(tǒng)糧食作物。WRIGHT等[17]研究表明,玻利維亞的甜藜麥和苦藜麥蛋白質(zhì)含量分別為14.8%和15.7%,與本試驗測得的結(jié)果稍有不同,可能是由于不同基因型、生長環(huán)境以及檢測方法導(dǎo)致了不同產(chǎn)地藜麥中蛋白質(zhì)的差異,高海拔有利于藜麥蛋白質(zhì)品質(zhì)的提高。
藜麥中含有豐富的黃酮。許多研究表明,藜麥中黃酮和植物甾醇類物質(zhì)具有很強的抗氧化能力。ADBERRAHIM等[18]對秘魯13種有色藜麥進(jìn)行了研究,結(jié)果表明,秘魯藜麥種子是酚類和黃酮類物質(zhì)的良好來源,并且抗氧化能力高于一般谷物,不同植物品種間黃酮化合物的含量差異很大[19-20]。本研究表明,山西靜樂3種藜麥中深色種子有更高黃酮含量和抗氧化活性,而常見谷物小麥、燕麥、大麥等谷物中幾乎不含有黃酮類化合物。由此可見,深色藜麥可作為一種很好的天然抗氧化劑的來源。已有研究表明,黃酮化合物具有抗真菌、抗細(xì)菌活性,本研究也發(fā)現(xiàn),藜麥黃酮提取物對供試菌種大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌均有明顯的抑制作用,但其抑菌活性成分還需進(jìn)一步研究。本研究結(jié)果對于藜麥作為山西地標(biāo)特色農(nóng)產(chǎn)品的推廣種植具有一定的促進(jìn)作用,也可為我國藜麥資源的功能開發(fā)與應(yīng)用提供一定的參考。
參考文獻(xiàn):
[1]BHARGAVA A,SYDHIRS,OHRI D.Chenopodium quinoa:an Indian per-spective[J].Industrial Crops and Products,2006,23(1):73-87.
[2]肖正春,張廣倫.藜麥及其資源開發(fā)利用 [J].中國野生植物資源,2014,33(2):62-66.
[3]魏愛春,楊修仕,么楊,等.藜麥營養(yǎng)功能成分及生物活性研究進(jìn)展[J].食品科學(xué),2015,36(15):272-276.
[4] ABUGOCH L E,ROMERO N,TAPIA C A,et al.Study of some physicochemical and functional properties of quinoa(Chenopodium quinoa Willd)protein isolates[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2008,56(12):4745.
[5]ANDOH,CHENY,TANGH,et al.Food components in fractions of quinoa seed[J].Food Science and Technology Research,2002,8(1):80-84.
[6]王黎明,馬寧,李頌,等.藜麥的營養(yǎng)價值及其應(yīng)用前景[J].食品工業(yè)科,2014,35(1):381-384.
[7]吳雨,李紅艷,牛燦杰,等.竹葉中黃酮類化合物的研究進(jìn)展[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,44(11):1-4.
[8]李濟芳,李芳,金舒寧,等.杏葉總黃酮提取工藝及抗氧化性研究[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(2):258-262.
[9]游庭活,劉凡,溫露,等.黃酮類化合物抑菌作用研究進(jìn)展[J].中國中藥雜志,2013,38(21):3645-3650.
[10]REPO-CARRASCO-VALENCIA R,HELLSTR?M J K,PIHLAVA J M,et al.Flavonoids and other phenolic compounds in Andean indigenous grains:Quinoa (Chenopodium quinoa),ka?iwa(Chenopodium pallidicalue)and kiwicha(Amaranthus caudatus)[J].Food Chemistry,2010,120(1):128-133.
[11] ZHU N,SHENG S,LI D,et al.Antioxidative flavonoid glycosides from quinoa seeds(Chenopodium quinoa Willd.)[J].Food Lipids,2001,8(1):37-44.
[12]孫雪婷,袁俊杰,蔣玉蓉,等.藜麥種子總黃酮提取及其抗氧化性[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(10):355-358.
[13]聶國偉.柚皮中黃酮物質(zhì)的提取工藝研究 [J].天津農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,20(8):29-31.
[14]VERENA N,JUAN D,U RUTH C.Assessment of the nutritional composition of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.)[J].Food Chemistry,2016,193:47-54.
[15]PEIRETTI P G,GAI F,TASSONE S.Fatty acid profile and nutritive value of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) seeds and plants at different growth stages[J].Animal Feed Science and Technology,2013,183(1/2):56-61.
[16]HIROSE Y,F(xiàn)UJITA T,ISHII T,et al.Antioxidative properties and flavonoid composition of Chenopodium quinoa seeds cultivated in Japan[J].Food Chemistry,2010,119(4):1300-1306.
[17]WRIGHTK H,PIKE OA,F(xiàn)AIRBANKS DJ,et al.Composition of atriplex hortensis,sweet and bitter Chenopodium quinoa seeds[J].Journal of Food Science,2010,67(4):1383-1385.
[18] ABDERRAHIM F,HUANATICO E,SEGURA R,et al.Physical features,phenolic compounds,betalains and total antioxidant capacity of coloured quinoa seeds (Chenopodium quinoa Willd.)fromPeruvian Altiplano[J].Food Chemistry,2015,183:83-90.
[19]孔衛(wèi)青.不同品種桑樹根與毛狀根總黃酮含量比較[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(7):828-830.
[20]侯名語,崔順立,穆國俊,等.花生種子黃酮及多酚含量的生態(tài)差異分析[J].華北農(nóng)學(xué)報,2017,32(3):155-160.