張勇超,李潛,謝建國,王家祥,韓廣森,張永磊,張金岱
鄭州大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院1普外科,2超聲科,鄭州 450008
3鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院小兒外科,鄭州 450052
直腸癌是消化系統(tǒng)最常見的惡性腫瘤之一,大多數(shù)直腸癌是由腺瘤惡變而來,目前人們已廣泛認(rèn)同“腺瘤—腺癌”的演變過程。近年研究發(fā)現(xiàn),髓源抑制細(xì)胞(myeloid derived suppressor cell,MDSC)在多種腫瘤患者的外周血和腫瘤組織中聚集,抑制機體的腫瘤免疫,在腫瘤的免疫逃逸機制中發(fā)揮重要作用[1-4]。至今為止,國內(nèi)外尚缺乏直腸癌及癌前病變患者M(jìn)DSC的研究報道,本研究以健康體檢者、直腸增生型息肉、直腸絨毛狀腺瘤及直腸癌患者的外周血為樣本,通過流式細(xì)胞技術(shù)檢測MDSC、T淋巴細(xì)胞亞群以及調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cell,Treg)的比例,探討MDSC促進(jìn)“直腸腺瘤—直腸腺癌”演變的免疫機制。
采用隨機抽樣法,收集鄭州大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院普外科2015年11月至2016年8月收治的155例直腸疾病患者的外周血標(biāo)本。根據(jù)患者腸鏡及病理學(xué)檢查結(jié)果分為3組:直腸增生型息肉組45例,直腸絨毛狀腺瘤組52例,直腸癌組58例。所有患者均有明確的病理診斷,均為首次診斷且未行化療、放療、手術(shù)、靶向治療等抗腫瘤治療,既往均無感染性疾病、免疫系統(tǒng)疾病病史。同時,收集鄭州大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院40例健康體檢者的外周血標(biāo)本,作為健康對照組。
淋巴細(xì)胞分離液購自美國Sigma公司。紅細(xì)胞裂解液、藻紅蛋白(P-phycoerythrin,PE)標(biāo)記的鼠抗人CD3單克隆抗體、異硫氰酸熒光素(fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)標(biāo)記的鼠抗人CD4單克隆抗體、藻紅蛋白-羰花青-5(P-phycoerythrin-Carbocyanine-5,PE-CY-5)標(biāo)記的鼠抗人CD8單克隆抗體、PE-CY-7標(biāo)記的鼠抗人CD11b單克隆抗體、PE-CY-5標(biāo)記的鼠抗人CD33單克隆抗體、PE-CY-5標(biāo)記的鼠抗人HLA-DR單克隆抗體、人Treg染色試劑盒及IgG同型對照抗體均購自美國BD公司。流式細(xì)胞儀購自美國Beckman Coulter公司。
經(jīng)腸鏡及病理學(xué)檢查后,患者于清晨空腹抽取靜脈血3 ml,肝素抗凝,用于流式細(xì)胞術(shù)檢測。
Treg檢測:取靜脈血2 ml,以淋巴細(xì)胞分離液收集單核細(xì)胞,然后取細(xì)胞懸液100 μl(細(xì)胞數(shù)約為1×106個),依據(jù)Treg染色試劑盒說明書的指導(dǎo)步驟進(jìn)行操作,透化緩沖液洗滌后,以適量流式染色緩沖液重懸染色細(xì)胞,行流式細(xì)胞術(shù)檢測。
CD4+、CD8+T淋巴細(xì)胞檢測:取100 μl靜脈血置于流式管中,加入熒光標(biāo)記抗體CD3-PE、CD4-FITC、CD8-PE-CY-5各2 μl,2~8 ℃孵育30~60 min。加入紅細(xì)胞裂解液2 ml,避光室溫孵育10 min,磷酸鹽緩沖溶液(phosphate buffer saline,PBS)洗滌后,以適量流式染色緩沖液重懸染色細(xì)胞,行流式細(xì)胞術(shù)檢測。
MDSC檢測:取100 μl靜脈血置于流式管中,加入熒光標(biāo)記抗體HLA-DR-PE-CY-5、CD33-PE-CY-5、CD11b-PE-CY-7各2 μl,2~8 ℃孵育30~60 min。加入紅細(xì)胞裂解液2 ml,避光室溫孵育10 min,PBS洗滌后,以適量流式染色緩沖液重懸染色細(xì)胞,行流式細(xì)胞術(shù)檢測。
采用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析及Post-hoc檢驗(SNK法),兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,相關(guān)分析采用Pearson檢驗。以P﹤0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
4組患者M(jìn)DSC及Treg比例比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P﹤0.05);直腸癌組MDSC及Treg比例最高,直腸絨毛狀腺瘤組、直腸增生型息肉組及健康對照組依次下降,進(jìn)一步兩兩比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P﹤0.05)。(表1)
表1 4組研究對象外周血MDSC、Treg比例的比較(%,±s)
表1 4組研究對象外周血MDSC、Treg比例的比較(%,±s)
注:a與直腸癌組比較,P<0.05;b與直腸絨毛狀腺瘤組比較,P<0.05;c與直腸增生型息肉組比較,P<0.05
MDSC比例Treg比例組別
不同性別、年齡患者M(jìn)DSC比例的比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P﹥0.05)。(表2)
表2 不同性別、年齡研究對象的MDSC比例(%,±s)
表2 不同性別、年齡研究對象的MDSC比例(%,±s)
特征性別男女4.13±0.92 4.38±1.15 2.68±0.33 2.79±0.45 1.41±0.12 1.62±0.25 0.86±0.15 0.67±0.08年齡(歲)≤60>60 4.41±1.22 4.09±0.81 2.54±0.28 2.85±0.56 1.59±0.21 1.48±0.17 0.82±0.13 0.73±0.11直腸癌組(n=58)直腸絨毛狀腺瘤組(n=52)直腸增生型息肉組(n=45)健康對照組(n=40)
4組患者CD4+T淋巴細(xì)胞比例、CD8+T淋巴細(xì)胞比例及CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P﹤0.05)。進(jìn)一步兩兩比較,直腸癌組CD8+T淋巴細(xì)胞比例最高,直腸絨毛狀腺瘤組、直腸增生型息肉組及健康對照組依次下降;直腸癌組CD4+T淋巴細(xì)胞比例及CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值最低,直腸絨毛狀腺瘤組、直腸增生型息肉組及健康對照組依次升高,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P﹤0.05)。(表3)
Pearson相關(guān)分析結(jié)果提示,外周血MDSC比例與Treg比例呈正相關(guān)(r=0.887,P﹤0.05),而與CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值呈負(fù)相關(guān)(r=-0.793,P﹤0.05)。
表3 4組研究對象T淋巴細(xì)胞亞群比例的比較(±s)
表3 4組研究對象T淋巴細(xì)胞亞群比例的比較(±s)
注:a與直腸癌組比較,P<0.05;b與直腸絨毛狀腺瘤組比較,P<0.05;c與直腸增生型息肉組比較,P<0.05
組別CD4+(%)CD8+(%)CD4+/CD8+
MDSC是由粒細(xì)胞、單核/巨噬細(xì)胞和處于早期分化階段的髓系前體細(xì)胞組成的異質(zhì)性并具有分化潛能的細(xì)胞群。這些未成熟的髓細(xì)胞,可以通過多種途徑抑制機體的獲得性和天然抗腫瘤免疫,使腫瘤細(xì)胞逃避機體的免疫監(jiān)視和攻擊,促進(jìn)腫瘤進(jìn)展。在腫瘤源性因子的誘導(dǎo)下,骨髓中的這些未成熟的前體細(xì)胞可遷移至肝臟、淋巴器官及外周血,并大量擴增、分化、成熟,抑制機體的腫瘤免疫[5]。至今為止尚未確定人類MDSC的分子標(biāo)志,在不同組織來源或同一組織來源、不同部位的腫瘤患者中,MDSC可能不盡相同。HLA-DR-CD33+CD11b+是當(dāng)前研究中報道較多的譜系標(biāo)志[6]。MDSC介導(dǎo)免疫抑制的機制可能為通過產(chǎn)生精氨酸酶和誘導(dǎo)型一氧化氮合成酶,產(chǎn)生大量的活性氧以及分泌轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)等[1]。
近年來,人們發(fā)現(xiàn)了一類具有免疫抑制功能的T淋巴細(xì)胞,將其命名為Treg,可抑制自身反應(yīng)性T淋巴細(xì)胞的活化,進(jìn)而抑制其免疫效應(yīng),維持自身免疫耐受的狀態(tài)。Treg數(shù)量和功能的異常與機體的腫瘤免疫密切相關(guān)。腫瘤患者腫瘤組織以及外周血中Treg比例增加與腫瘤患者免疫功能低下有關(guān)。Treg比例增加時,其免疫抑制功能增強,使機體處于一種高度免疫耐受的狀態(tài),從而為腫瘤的發(fā)生、發(fā)展提供了免疫逃逸的環(huán)境。已有研究發(fā)現(xiàn),腫瘤患者中Treg細(xì)胞數(shù)量和比例增多[7],提示機體正處于潛在的免疫抑制狀態(tài)。外周血中成熟的T淋巴細(xì)胞是機體免疫系統(tǒng)中功能最重要的細(xì)胞群,可分為CD4+和CD8+兩個亞群,在維持機體正常的免疫功能中發(fā)揮重要作用。研究表明,T淋巴細(xì)胞亞群的變化與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展有密切關(guān)系[8]。腫瘤患者的T淋巴細(xì)胞亞群發(fā)生明顯變化,即CD4+T淋巴細(xì)胞減少,而CD8+T淋巴細(xì)胞增加,CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值下降;且隨著腫瘤的進(jìn)展,CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值進(jìn)一步下降,并可能出現(xiàn)倒置。
直腸癌是人類最常見的惡性腫瘤之一,早期發(fā)現(xiàn)是提高治愈率和生存率的關(guān)鍵。積極發(fā)現(xiàn)和治療癌前病變,可阻斷癌變進(jìn)程,預(yù)防直腸癌的發(fā)生。許多研究表明,大多數(shù)直腸癌是由腺瘤惡變而來的,即腺瘤—腺癌演變過程。目前已公認(rèn)直腸腺瘤是一種癌前病變,且認(rèn)為腺瘤癌變與腺瘤類型、瘤體大小和組織學(xué)類型有關(guān)。國內(nèi)外尚未有直腸癌及癌前病變患者M(jìn)DSC的研究報道,本研究首次就這一領(lǐng)域進(jìn)行探討。本研究結(jié)果顯示,與健康體檢者相比,直腸增生型息肉、直腸絨毛狀腺瘤、直腸癌患者外周血中MDSC比例均明顯增加;MDSC比例與性別、年齡無關(guān);與健康體檢者相比,直腸增生性息肉、直腸絨毛狀腺瘤、直腸癌患者外周血中的Treg比例及CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值亦有明顯變化,且Treg比例及CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比值的變化與MDSC比例的變化具有相關(guān)性。結(jié)果提示,在直腸腺瘤—直腸腺癌的發(fā)生演變過程中,MDSC可能通過誘導(dǎo)Treg產(chǎn)生及CD4+、CD8+T淋巴細(xì)胞比例變化來抑制機體的細(xì)胞免疫功能,進(jìn)而引起腫瘤的免疫逃逸,促進(jìn)腫瘤的發(fā)生發(fā)展。
綜上所述,本研究提示MDSC可能通過調(diào)控Treg及CD4+/CD8+T淋巴細(xì)胞比例來抑制機體的細(xì)胞免疫功能,誘導(dǎo)腫瘤免疫逃逸,最終導(dǎo)致“直腸腺瘤—直腸腺癌”的演變過程。因此,在直腸癌的防治及綜合治療時,可以考慮聯(lián)合靶向MDSC療法[9-10],以提高治療效果,改善患者的預(yù)后。
參考文獻(xiàn)
[1]Nagaraj S,Gabrilovich DI.Myeloid-derived suppressor cells in human cancer[J].Cancer J,2010,16(4):348-353.
[2]Seddon A,Hock B,Miller A,et al.Cutaneous squamous cell carcinomas with markers of increased metastatic risk are associated with elevated numbers of neutrophils and/or granulocytic myeloid derived suppressor cells[J].J Dermatol Sci,2016,83(2):124-130.
[3]Xu XD,Hu J,Wang M,et al.Circulating myeloid-derived suppressor cells in patients with pancreatic cancer[J].Hepatobiliary Pancreat Dis Int,2016,15(1):99-105.
[4]Eruslanov E,Neuberger M,Daurkin I,et al.Circulating and tumor-infiltrating myeloid cell subsets in patients with bladder cancer[J].Int J Cancer,2012,130(5):1109-1119.
[5]Ilkovitch D,Lopez DM.The liver is a site for tumor-induced myeloid-derived suppressor cell accumulation and immunosuppression[J].Cancer Res,2009,69(13):5514-5521.
[6]Ko JS,Bukowski RM,Fincke JH.Myeloid-derived suppressor cells:a novel therapeutic target[J].Curr Oncol Rep,2009,11(2):87-93.
[7]Li X,Ye DF,Xie X,et al.Proportion of CD4+CD25+regulatory T cell is increased in the patients with ovarian carcinoma[J].Cancer Invest,2005,23(5):399-403.
[8]Chattopadhyay S,Chakraborty NG,Mukherji B.Regulatory T cells and tumor immunity[J].Cancer Immunol Immunother,2005,54(12):1153-1161.
[9]Raychaudhuri B,Rayman P,Ireland J,et al.Myeloid-derived suppressor cell accumulation and function in patients with newly diagnosed glioblastoma[J].Neuro Oncol,2011,13(6):591-599.
[10]Zhang B,Wang Z,Wu L,et al.Circulating and tumor-infiltrating myeloid-derived suppressor cells in patients with colorectal carcinoma[J].PLoS One,2013,8(2):e57114.