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    干擾MITF表達(dá)對(duì)惡性黑素瘤細(xì)胞B16F10增殖及黑素生成的影響*

    2018-05-15 01:40:17陳恒君田超群楊鈺興袁睿重慶市渝北區(qū)人民醫(yī)院皮膚科泌尿外科400
    現(xiàn)代醫(yī)藥衛(wèi)生 2018年9期
    關(guān)鍵詞:黑素瘤黑素黑素細(xì)胞

    陳恒君,田超群,楊鈺興,袁睿(重慶市渝北區(qū)人民醫(yī)院:.皮膚科;.泌尿外科400)

    惡性黑素瘤是由皮膚、黏膜、眼等色素沉著部位的黑素細(xì)胞產(chǎn)生的一種高度惡性腫瘤,其特點(diǎn)為生長(zhǎng)隱匿、轉(zhuǎn)移早且迅速,患者預(yù)后差及病死率高,致死率達(dá)79.0%[1?3]。目前,已確定小眼畸形相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子(MITF)在黑素細(xì)胞和黑素瘤細(xì)胞核中高表達(dá)[4?5],是核蛋白最重要的轉(zhuǎn)錄因子,具有較強(qiáng)的診斷靈敏度和特異性[6?7],但相關(guān)機(jī)制研究較少。本研究采用RNA干擾技術(shù),研究了MITF對(duì)惡性黑素瘤的生長(zhǎng)及黑素生成能力的影響,試圖為惡性黑素瘤的治療提供新的思路和策略,現(xiàn)報(bào)道如下。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株 pLKO.1?短發(fā)夾RNA(shRNA)載體。

    1.1.2 細(xì)胞系 B16F10黑素瘤細(xì)胞系購(gòu)自KeyGen公司。細(xì)胞生長(zhǎng)基質(zhì)(培養(yǎng)液 1)為 RPMI?1640、10% 胎牛血清。細(xì)胞培養(yǎng)箱條件為37℃及5%二氧化碳。

    1.1.3 主要試劑 RPMI?1640、10%胎牛血清均購(gòu)自HyClone公司;mRNA提取試劑盒Trizol Reagent、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒 PrimeScript?RT reagent Kit、擴(kuò)增試劑盒SYBR Green RT?PCR Kit均購(gòu)自 TaKaRa公司;蛋白抽提試劑盒、蛋白質(zhì)印跡跑膠試劑盒、聚偏氟乙烯(PVDF)膜、蛋白質(zhì)印跡顯影ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒、Tri?ton?X100、MTT細(xì)胞活性檢測(cè)試劑盒均購(gòu)自Beyotime公司;蛋白定量試劑盒采用Pierce?BCA Protein Assay Kit,購(gòu)自Thermo Scientific公司;免疫組織化學(xué)試劑盒購(gòu)自博士德公司;MITF、β?actin蛋白抗體均購(gòu)自Santa公司;DNA Marker、RNA Marker、LipofectamineTM2000均購(gòu)自Invitrogen公司;嘌呤霉素購(gòu)自Sigma公司;MITF?shRNA質(zhì)粒由KeyGen公司構(gòu)建,并根據(jù)片段不同分別標(biāo)注為 B16F10?NC(空白質(zhì)粒對(duì)照)、B16F10?1、B16F10?2、B16F10?3,另建立未用任何質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的陰性對(duì)照(B16F10組)。

    1.2 方法

    1.2.1 構(gòu)建穩(wěn)定干擾MITF表達(dá)的B16F10細(xì)胞系 將對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期B16F10細(xì)胞系傳代并過夜(約24 h)培養(yǎng),按標(biāo)準(zhǔn)流程,使用LipofectamineTM2000將擴(kuò)增的shR?NA質(zhì)粒中MITF沉默片段轉(zhuǎn)染該細(xì)胞系。48 h后,使用添加嘌呤霉素(4μg/mL)的細(xì)胞培養(yǎng)液(培養(yǎng)液2)繼續(xù)培養(yǎng)轉(zhuǎn)染細(xì)胞系2周(每2~3天更換1次培養(yǎng)液2),將存活細(xì)胞單克隆移至96孔板中并使用培養(yǎng)液2繼續(xù)培養(yǎng),直至轉(zhuǎn)染細(xì)胞系呈對(duì)數(shù)期生長(zhǎng)并達(dá)90%以上的匯合率時(shí)將孔中細(xì)胞轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶中使用培養(yǎng)液3(嘌呤霉素降至2μg/mL)繼續(xù)培養(yǎng)并大規(guī)模傳代以收集細(xì)胞系進(jìn)行研究。每傳代5~7次時(shí)再次使用培養(yǎng)液2進(jìn)行篩選。

    1.2.2 RNA提取及實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)檢測(cè)MITF基因表達(dá) 按說明書使用Trizol Reagent提取總RNA,用分光光度儀(A260/280)測(cè)定總RNA,并按說明書使用PrimeScript?RT reagent Kit制備cDNA。MITF上游引物:5′?CGGGTCTCTGCTCTCCAGA?3′,下游引物:5′?CCGGCTGCTTGTTTTGGAA?3′。按下述方法配置 25μL 反應(yīng)液:(1)SYBR?Premix Ex TaqTM Ⅱ(2×)12.5 μL;(2)PCR 上游引物(10 μmol/L)1 μL;(3)PCR下游引物(10 μmol/L)1 μL;(4)DNA 模板 2 μL(<100 ng,且液體量不超過反應(yīng)液總體積的10%);(5)dH2O 8.5μL。擴(kuò)增反應(yīng)條件:(1)預(yù)變性為 95℃、30 s,1次;(2)PCR 反應(yīng)為 95 ℃、5 s,60 ℃、30 s,40 次;(3)溶解。1.2.3 蛋白提取及蛋白質(zhì)印跡檢測(cè)MITF蛋白表達(dá) 收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,在4℃條件下使用蛋白抽提試劑盒裂解細(xì)胞并收集蛋白;使用Pierce?BCA Protein Assay Kit按標(biāo)準(zhǔn)流程測(cè)定收集的總蛋白。根據(jù)測(cè)定結(jié)果按40μg的總蛋白量加樣、檢測(cè)、跑膠、轉(zhuǎn)膜及顯影。圖像采集使用化學(xué)成像系統(tǒng)(ChemiDoc XRS+,Bio?Rad,USA)。圖像分析采用Quantity One4.6軟件。內(nèi)參使用β?actin蛋白。

    1.2.4 黑素含量測(cè)定 (1)細(xì)胞外分泌黑素含量測(cè)定:使用不含酚紅的培養(yǎng)基在常規(guī)條件下培養(yǎng)細(xì)胞24 h并收集培養(yǎng)基(溶液1);(2)細(xì)胞內(nèi)分泌黑素含量測(cè)定:收集上述去除培養(yǎng)基的細(xì)胞,使用蛋白抽提試劑盒提取蛋白,離心500 r/min,上清液(溶液3)進(jìn)行總蛋白測(cè)定,收集下層黑色固體物質(zhì)與1 mol/L的NaOH溶液在60℃條件下孵育2 h并充分溶解(溶液2)。使用分光光度計(jì)在405 nm處測(cè)定黑素溶液1及溶液2中黑素含量。按每種細(xì)胞蛋白濃度標(biāo)準(zhǔn)化每種細(xì)胞內(nèi)外黑素含量[8]。

    1.2.5 酪氨酸酶(TYR)活性及 TYR/TYR?1/TYR?2蛋白檢測(cè) 按下述方法配置溶液:(1)溶液A,配制含2%N,N?二甲基甲酰胺的磷酸鈉(100 mmol/L,pH 7.1);(2)溶液 B,配制含 5 mmol/LL?左旋多巴的磷酸鈉(100 mmol/L,pH 7.1);(3)溶液 C,配制含 20 mmol/L 的酚試劑去離子水。在細(xì)胞中加入0.5%Triton?X100(含1%脫氧膽酸鈉)并孵育2 h裂解細(xì)胞,再按2∶1∶1比例加入溶液A、B、C,在37℃條件下反應(yīng)10 min,然后在分光光度計(jì)下測(cè)定505 nm處吸光度。與1.2.4項(xiàng)相同,按每種細(xì)胞蛋白濃度標(biāo)準(zhǔn)化每種細(xì)胞的蛋白含量。

    1.2.6 細(xì)胞增殖活性檢測(cè)(克隆形成實(shí)驗(yàn)、MTT實(shí)驗(yàn)) 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞并計(jì)數(shù),按每孔500個(gè)細(xì)胞接種于96孔板中(每種細(xì)胞重復(fù)5個(gè)孔),加入培養(yǎng)基并在細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h,加入MTT溶液(5 mg/mL)10μL,繼續(xù)在細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育4 h,再加入甲臜溶解液100μL后繼續(xù)在細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育,直至結(jié)晶全部溶解,最后使用分光光度計(jì)測(cè)定570 nm處吸光度。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS18.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,組間和組內(nèi)比較采用單因素方差分析(One?Way ANOVA)。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 各組MITF基因及蛋白表達(dá)水平比較 與B16F10組比較,B16F10?1組MITF基因干擾效率最大(達(dá)82.7%),B16F10?2、B16F10?3 組 MITF 基因干擾效率分別為 62.3%、21.5%;B16F10?1、B16F10?2、B16F10?3 組基因表達(dá)水平與B16F10組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見圖1。與 B16F10 組比較,B16F10?1 組MITF蛋白表達(dá)水平最低,干擾效率最高(50.0%),B16F10?2、B16F10?3 組蛋白表達(dá)干擾率分別為 22.1%、11.6%;B16F10?1 、B16F10?2、B16F10?3 組基因表達(dá)水平與B16F10組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),與MITF基因表達(dá)水平基本一致。見圖2。表明B16F10?1為首選目標(biāo)細(xì)胞系,其次為B16F10?2。

    圖1 各組MITF基因表達(dá)水平比較

    2.2 各組增殖活性比較 與B16F10組比較,B16F10?NC組細(xì)胞增殖活性無明顯改變,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);B16F10?1組細(xì)胞增殖活性降低最明顯(達(dá)49.5%),B16F10?2組細(xì)胞增殖活性也有所降低(達(dá)23.8%);B16F10?1、B16F10?2 組細(xì)胞增殖活性與 B16F10 組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖3。

    2.3 各組細(xì)胞內(nèi)外黑素含量比較 B16F10?1組細(xì)胞內(nèi)外黑素含量降低最明顯(分別為49.7%、43.8%),B16F10?2組細(xì)胞內(nèi)外黑素含量降低程度分別為21.4%、16.8%;B16F10?1、B16F10?2 組細(xì)胞內(nèi)外黑素含量與B16F10組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),但B16F10?NC組細(xì)胞內(nèi)外黑素含量均無明顯改變,與B16F10組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),與MITF基因和蛋白表達(dá)趨勢(shì)一致,見圖4。

    圖2 各組MITF蛋白表達(dá)水平比較

    圖3 各組增殖活性比較

    圖4 各組細(xì)胞內(nèi)外黑素含量比較

    2.4 各組TYR活性比較 與B16F10組比較,B16F10?1組TYR活性降低最明顯(達(dá)48%),B16F10?2組TYR活性降低了 29.0%,B16F10?1、B16F10?2 組 TYR 活性與B16F10組比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖5。

    圖5 各組TYR活性比較

    3 討 論

    目前,已確定MITF選擇性表達(dá)于黑素細(xì)胞和黑素瘤細(xì)胞核,是黑素細(xì)胞的核蛋白和最重要的轉(zhuǎn)錄因子,在黑素細(xì)胞生成和活性方面具有關(guān)鍵性作用。目前,已證實(shí)該基因在黑素細(xì)胞起源細(xì)胞(如黑素母細(xì)胞、黑素細(xì)胞及黑素瘤細(xì)胞)中參與了形態(tài)、分化和生存的調(diào)節(jié)[7,9];而在黑素瘤患者中該基因處于失調(diào)狀態(tài)[6],是一種診斷黑素瘤靈敏度和特異性均較強(qiáng)的免疫標(biāo)記物[7]。

    MITF在黑素細(xì)胞中特異表達(dá),是調(diào)節(jié)黑素細(xì)胞發(fā)育的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子和總調(diào)控因子,參與了黑素細(xì)胞形態(tài)構(gòu)成、黑素合成、轉(zhuǎn)運(yùn)和運(yùn)輸。MITF主要通過調(diào)控黑素細(xì)胞中特異表達(dá)基因TYR的轉(zhuǎn)錄活性調(diào)節(jié)黑素分泌,TYR參與并調(diào)控黑素合成,是黑素生成的關(guān)鍵酶[10]。

    本研究以MITF為靶基因,利用RNA干擾技術(shù)特異性抑制該基因及蛋白表達(dá),觀察B16F10黑素瘤細(xì)胞增殖活性變化,進(jìn)而探討MITF對(duì)黑素瘤細(xì)胞內(nèi)外黑素分泌水平的影響及與該分泌水平密切相關(guān)的TYR活性的影響,從而驗(yàn)證MITF高表達(dá)在黑素瘤細(xì)胞中的關(guān)鍵作用。結(jié)果顯示,RNA干擾技術(shù)能在B16F10細(xì)胞中顯著抑制MITF基因及蛋白表達(dá),最高干擾率分別達(dá)82.7%、50.0%;MTT實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,干擾MITF表達(dá)能顯著抑制B16F10細(xì)胞增殖活性,表明MITF對(duì)黑素瘤細(xì)胞增殖活性具有重要作用。與VACHTENHEIM等[11]研究結(jié)果一致。本研究B16F10細(xì)胞內(nèi)外黑素含量測(cè)定結(jié)果顯示,干擾MITF表達(dá)能顯著抑制黑素瘤細(xì)胞內(nèi)外黑素分泌水平;TYR活性測(cè)定結(jié)果顯示,干擾MITF表達(dá)也抑制了與黑素分泌水平密切相關(guān)的TYR的活性,表明MITF對(duì)黑素瘤細(xì)胞中的TYR活性及黑素生成均具有重要作用,與黑素瘤細(xì)胞中的黑素功能密切相關(guān)。

    目前,較一致的看法是MITF在黑素細(xì)胞的黑素生成和活性方面均具有關(guān)鍵性作用。本研究結(jié)果不僅證明了MITF對(duì)黑素瘤細(xì)胞的增殖具有重要作用,更進(jìn)一步證明了MITF在黑素瘤細(xì)胞黑素生成及活性調(diào)節(jié)方面發(fā)揮了關(guān)鍵性作用。為了更深入的研究,包括MITF如何調(diào)節(jié)黑素瘤細(xì)胞的增殖活性及黑素生成的活性,以及上、下游基因和相關(guān)信號(hào)通路等研究奠定了重要的實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ),從而為惡性黑素瘤的治療提供了新的思路和策略。

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