楊德慧 賴勝敏 古梓婷 劉鴻慶 馬宇昕 羅利 李國(guó)營(yíng) 劉靖
廣東藥科大學(xué)基礎(chǔ)學(xué)院人體解剖學(xué)教研室(廣州 510006)
丙烯酰胺(acrylamide,ACR)是一種可溶于水的乙烯基單體,其復(fù)合體聚丙烯酰胺廣泛應(yīng)用于化工行業(yè)[1]。業(yè)已證實(shí)ACR對(duì)人和動(dòng)物具有神經(jīng)毒性,能夠選擇性地?fù)p害中樞神經(jīng)和周?chē)窠?jīng)的神經(jīng)元終末,出現(xiàn)共濟(jì)失調(diào)、肢體乏力、四肢麻木、感覺(jué)障礙等一系列臨床癥狀[2]。然而關(guān)于ACR神經(jīng)發(fā)育毒性報(bào)道較少,胎兒和嬰兒正處于神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育重要階段,特別是血腦屏障尚未發(fā)育成熟,可能更容易受到各種有害因素的損傷,特別是神經(jīng)毒物。在中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育過(guò)程中,雙皮質(zhì)素(doublecortin,DCX)和生長(zhǎng)相關(guān)蛋白?43(growth associated protein?34,GAP?43)共同參與了神經(jīng)元生成和發(fā)育的全過(guò)程。其中,DCX是一種微管相關(guān)蛋白,在神經(jīng)元分化和遷移過(guò)程中階段性地表達(dá)于神經(jīng)元的突起和胞體上,其陽(yáng)性細(xì)胞的數(shù)量可以反映海馬齒狀回新生神經(jīng)元的增殖情況[3]。另外,GAP?43是一種促進(jìn)神經(jīng)元修復(fù)與合成的胞膜上的特異性磷酸蛋白,能夠促進(jìn)神經(jīng)元軸突的延伸[4]。
因此,本實(shí)驗(yàn)通過(guò)建立ACR母源性暴露,檢測(cè)仔鼠海馬齒狀回DCX和GAP?43的表達(dá)情況進(jìn)行探討ACR對(duì)神經(jīng)元的生長(zhǎng)發(fā)育的影響,為研究ACR的神經(jīng)發(fā)育毒性提供理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù),有利于優(yōu)生優(yōu)育。
1.1 主要試劑ACR(美國(guó)Sigma公司,純度99.9%)、Rabbit Anti?DCX(美國(guó) Abcam 公司)、Rabbit Anti?GAP?34(武漢博士德生物公司)、HRP標(biāo)記山羊抗兔(美國(guó)Ear thox公司)。
1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物6周齡級(jí)SD大鼠由廣東省醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,許可證號(hào)SCXK(粵)2013?0002。雌鼠32只,雄鼠16只,體質(zhì)量140~160 g,所有實(shí)驗(yàn)動(dòng)物在SPF級(jí)的條件下自由攝食和飲水,雌鼠懷孕后單籠飼養(yǎng)。
1.3 動(dòng)物分組及染毒SD大鼠體成熟后,雌雄以1∶1進(jìn)行交配,孕鼠隨機(jī)分為4組,分別為對(duì)照組(0 mg/kg)、低(4.5 mg/kg)、中(9 mg/kg)和高(18 mg/kg)劑量組,每組8只。于母鼠妊娠第15天開(kāi)始灌胃給藥,連續(xù)給藥至分娩后第13天,分娩后第14天,對(duì)仔鼠進(jìn)行取材。
1.4 動(dòng)物取材仔鼠出生后第14天,在4%水合氯醛腹腔注射麻醉下,以0.9%生理鹽水沖洗和4%多聚甲醛溶液灌注,灌注固定后取腦置于4%多聚甲醛中固定48 h,組織常規(guī)脫水和石蠟包埋,用于免疫組織化學(xué)檢測(cè)。
1.5 免疫組織化學(xué)檢測(cè)切片常規(guī)脫蠟至水,在0.01 mol/L pH 6.0檸檬酸緩沖液中微波修復(fù)20 min,3%H2O2?PBS室溫處理30 min,5%BSA封閉液37℃封閉30 min,于4℃冰箱孵育一抗過(guò)夜。次日滴加HRP標(biāo)記的二抗在37℃孵育40 min。DAB顯色4.5 min,切片置于ddH2O終止顯色。蘇木素染色15 s,自來(lái)水返藍(lán)2 min。切片繼續(xù)脫水后用中性樹(shù)脂封片。封片后選取每組每只大鼠2張切片,隨機(jī)選取3個(gè)視野,用Image pro?plus 6.0圖像分析軟件計(jì)算免疫陽(yáng)性表達(dá)物積分光密度值(IOD)。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法利用Image pro?plus 6.0圖像分析軟件進(jìn)行光密度值分析,陽(yáng)性表達(dá)物的平均光密度值,以表示,結(jié)果采用統(tǒng)計(jì)軟件SPSS 17.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,組間比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 ACR對(duì)P14仔鼠海馬齒狀回GAP?43表達(dá)的影響 見(jiàn)圖1,GAP?43陽(yáng)性表達(dá)物為黃棕色物質(zhì),環(huán)繞細(xì)胞核分布,呈中空狀。GAP?43能夠調(diào)節(jié)軸突的生長(zhǎng),是神經(jīng)元發(fā)育過(guò)程中的標(biāo)志位之一。與對(duì)照組和低劑量組相比較,中、高劑量組仔鼠海馬齒狀回GAP?43均明顯有減少(P<0.01)。見(jiàn)圖2。
圖1 各實(shí)驗(yàn)組仔鼠海馬GAP?43的表達(dá)情況(IHC×400)Fig.1 Effect of ACR on expression of GFAP in the hippocampal mother rats
表1 ACR染毒對(duì)仔鼠海馬齒狀回GAP?43表達(dá)的影響Tab.1 Effect of ACR on expression of GAP?43 in the hippocampal dentate of offsprings(n=8) x± s
2.2 ACR對(duì)P14仔鼠海馬齒狀回DCX表達(dá)的影響本實(shí)驗(yàn)通過(guò)免疫組織化學(xué)方法檢測(cè)P14仔鼠海馬齒狀回中DCX的陽(yáng)性表達(dá)來(lái)檢測(cè)神經(jīng)元突起形成的情況。與對(duì)照組相比較,ACR中、高劑量組仔鼠海馬齒狀回DCX的陽(yáng)性表達(dá)物均顯著減少(P<0.01)。
圖2 各實(shí)驗(yàn)組仔鼠海馬DCX的表達(dá)情況(IHC×400)Fig.2 Effect of ACR on expression of DCX in the hippocampal mother rats
表2 ACR染毒對(duì)仔鼠海馬齒狀回DCX表達(dá)的影響Tab.2 Effect of ACR on expression of DCX in the hippocampal dentate of offsprings(n=8)±s
表2 ACR染毒對(duì)仔鼠海馬齒狀回DCX表達(dá)的影響Tab.2 Effect of ACR on expression of DCX in the hippocampal dentate of offsprings(n=8)±s
注:與對(duì)照組相比較,*P<0.05,**P<0.01
組別對(duì)照組低劑量組中劑量組高劑量組IOD of DCX 9.37±0.70 7.75±0.39 6.21±0.33*4.43±0.56**
ACR是生產(chǎn)聚丙烯酰胺的原材料,廣泛應(yīng)用于各行業(yè)。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)業(yè)已證實(shí)ACR具有多種毒性,并在人體發(fā)現(xiàn)其神經(jīng)毒性。ACR可以通過(guò)多種途徑進(jìn)行傳播,胎盤(pán)和哺乳亦是ACR傳播的方式[1]。ACR的神經(jīng)毒性具有累積性,低劑量長(zhǎng)期染毒和高劑量短期染毒均可導(dǎo)致明顯的神經(jīng)毒性[5]。ACR母源性暴露后,胎兒和嬰兒的健康與安全受到威脅[6]。海馬屬于邊緣系統(tǒng)的一部分,不但與學(xué)習(xí)、記憶、情緒等相關(guān),其中齒狀回顆粒下層(subgranular zone,SGZ)更是神經(jīng)發(fā)生和神經(jīng)再生的重要部位之一。神經(jīng)干細(xì)胞位于海馬門(mén)區(qū)與顆粒細(xì)胞層之間的顆粒下層,新生成的神經(jīng)元從顆粒下層移入顆粒層,接受突觸傳入沖動(dòng),把軸突伸進(jìn)苔狀纖維通路,整合到海馬功能的神經(jīng)環(huán)路中,參與海馬的學(xué)習(xí)記憶等功能活動(dòng)[7]。有研究顯示,母鼠通過(guò)飲水?dāng)z入ACR后,仔鼠海馬齒狀回Reelin免疫反應(yīng)細(xì)胞和谷氨酸脫羧酶67免疫反應(yīng)細(xì)胞呈劑量依賴性的增加,ACR干擾了海馬齒狀回神經(jīng)元的遷移和定位[8]。而在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的發(fā)育過(guò)程中,神經(jīng)元所分泌的蛋白GAP?43和DCX共同參與調(diào)節(jié)神經(jīng)元的生長(zhǎng)與發(fā)育。因此,我們通過(guò)檢測(cè)仔鼠海馬GAP?43和DCX表達(dá)情況,研究ACR對(duì)神經(jīng)元發(fā)育的影響。
在本研究中,ACR暴露后,與對(duì)照組相比較,中、高劑量組仔鼠海馬齒狀回GAP?43的表達(dá)明顯下降。GAP?43是一種磷酸蛋白,特異性地表達(dá)于神經(jīng)元胞膜上,調(diào)節(jié)軸突的生長(zhǎng)、突觸的形成和神經(jīng)遞質(zhì)的釋放[9-10]。在神經(jīng)元發(fā)育過(guò)程中,GAP?43引導(dǎo)軸突生長(zhǎng)和調(diào)節(jié)突觸聯(lián)系中發(fā)揮著重要作用[9]。GAP?43表達(dá)的含量與軸突的生長(zhǎng)、突觸的塑造狀態(tài)相一致[11]。在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育過(guò)程中,GAP?43有較高的表達(dá),被認(rèn)為是神經(jīng)元發(fā)育和再生的一個(gè)內(nèi)在決定因子,能夠促進(jìn)神經(jīng)元軸突的生長(zhǎng)[12]。GAP?43的減少將降低軸突結(jié)構(gòu)的可塑性,包括軸突與樹(shù)突的發(fā)芽,其表達(dá)與神經(jīng)元軸突和樹(shù)突的功能呈正相關(guān)[13?14]。由此筆者推測(cè),GAP?43表達(dá)減少后,神經(jīng)元軸突和樹(shù)突的發(fā)育受到了抑制。另外,本研究通過(guò)免疫組織化學(xué)法檢測(cè)發(fā)現(xiàn),ACR暴露后仔鼠海馬齒狀回DCX亦顯著表達(dá)減少。DCX是一種微管相關(guān)蛋白,在神經(jīng)元分化、遷移過(guò)程中階段性地表達(dá)于神經(jīng)元周?chē)耐黄鸷桶w上,參與神經(jīng)元突起的形成與發(fā)育[3]。DCX可促進(jìn)微管聚合并穩(wěn)定其網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu),在神經(jīng)元遷移過(guò)程中控制著神經(jīng)元的聚合,穩(wěn)定細(xì)胞骨架[15]。DCX表達(dá)下降,提示ACR母源性暴露可能導(dǎo)致仔鼠海馬神經(jīng)發(fā)生、分化受到抑制。有實(shí)驗(yàn)報(bào)道,把ACR注射到小鼠體內(nèi)后,能夠抑制其海馬齒狀回增殖活性,新生神經(jīng)元減少[16]。ACR母源性暴露后,仔鼠海馬齒狀回GAP?43和DCX的表達(dá)均下降,提示ACR可能影響海馬神經(jīng)元的增殖、分化以及神經(jīng)元軸突的延伸。ACR的神經(jīng)發(fā)育毒性作用可能是多因素的,其作用機(jī)制尚有待進(jìn)一步研究。
綜上所述,母源性暴露后ACR能夠減少仔鼠大腦GAP?43和DCX的表達(dá),可能抑制了海馬神經(jīng)元的生長(zhǎng)發(fā)育。而海馬區(qū)與學(xué)習(xí)、記憶等高級(jí)功能密切相關(guān),ACR母源性暴露后可能會(huì)影響到仔鼠空間學(xué)習(xí)和記憶能力發(fā)展[17]。
[1]ERKEKOGLU P,BAYDAR T.Acrylamide neurotoxicity[J].Nutr Neurosci,2014,17(2):49?57.
[2]LOPACHIN R M,GAVIN T.Acrylamide?induced nerve termi?nal damage:relevance to neurotoxic and neurodegenerative mechanisms[J].J Agric Food Chem,2008,56(15):5994?6003.
[3]FRANCIS F,KOULAKOOF A,BOUCHER D,et al.Double?cortin is a developmentally regulated,microtubule?associated protein expressed in migrating and differentiating neurons[J].Neuron,1999,23:247?256.
[4]陳慶友,師巖,王中華.丁苯酞改善血管性癡呆大鼠認(rèn)知功能及其對(duì)海馬區(qū)GAP?43和突觸素表達(dá)的影響[J].中國(guó)老年學(xué)雜志,2016(8):1830?1831.
[5]LOPACHIN R M.Acrylamide neurotoxicity: neurological,morhological and molecular endpoints in animal models[J].Adv Exp Med Biol,2005,561:21?37.
[6]FRIEDMAN M A,TYL R W,MARR M C,et al.Effects of lac?tational administration of acrylamide on rat dams and offspring[J].Reprod Toxicol,1999,13(6):511?520.
[7]ZHAO C,DENG W,GAGE F H.Mechanisms and functional implications of adult neurogenesis[J].Cell,2008,132(4):645?660.
[8]OGAWA B,OHISHI T,WANG L,et al.Disruptive neuronal development by acrylamide in the hippocampal dentate hilus af?ter developmental exposure in rats[J].Arch Toxicol,2011 ,85(8):987?994.
[9]DONNEIIL C J,PARK M,SPILLANE M,et al.Axonally syn?thesized β?actin and GAP?43 proteins support distinct modes of axonal growth[J].J Neurosci,2013,33(8):3311?3322.
[10]MUTTUCUMARU N,POWERS S J,ELMORE J S,et al.Acrylamide?forming potential of potatoes grown at different loca?tions,and the ratio of free asparagine to reducing sugars at which free asparagine becomes a limiting factor for acrylamide?formation[J].Food Chem,2017,220:76?86.
[11]GUPTA S K,MISHRA R,KUSUM S,et al.GAP?43 is essen?tial for the neurotrophic effects of BDNF and positive AMPA re?ceptor modulator S18986[J].Cell Death Differ,2009,16(4):624?637.
[12]張征宇,袁寶莉,鄧素娟.1,6?二磷酸果糖對(duì)腦白質(zhì)損害大鼠皮質(zhì)生長(zhǎng)相關(guān)蛋白43表達(dá)的影響[J].實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2011,27(13):2330?2333.
[13]CHEN M Y,WANG E H,WOODSON W J,et al.Optogenetic neuronal stimulation promotes functional recovery after stroke[J].Proc Natl Acad Sci USA,2014,111(35):12913?12918.
[14]SHAH A M,ISHIZAKA S,CHENG M Y,et al.Optogenetic neuronal stimulation of the lateral cerebellar nucleus promotes persistent functional recovery after stroke[J].Sci Rep,2017,7:46612.
[15]MERZ K,LIE D C.Evidence that Doublecortin is dispensable for the development of adult born neurons in mice[J].PLoS One,2013,8(5):e62693.
[16]PARK H R,KIM M S,KIM S J,et al.Acrylamide induces cell death in neural progenitor cells and impairs hippocampal neurogenesis[J].Toxicol Lett,2010,193(1):86?93.
[17]劉富,兵尹力,朱宇航,等.異氟醚對(duì)老年大鼠學(xué)習(xí)記憶能力及海馬NMDAR1表達(dá)的影響[J].實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2016,32(1):34?37.