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      牛傳染性鼻氣管炎病毒LAMP檢測方法的建立

      2018-05-09 06:12:08王建峰于伯華劉向陽秦志軍唐泰山
      中國動物檢疫 2018年5期
      關鍵詞:氣管炎傳染性特異性

      高 峰,王建峰,于伯華,張 丹,劉向陽,張 琳,秦志軍,唐泰山

      (1. 鹽城出入境檢驗檢疫局,江蘇鹽城 224002;2. 寧波檢驗檢疫科學技術研究院,浙江寧波 315100;3. 江蘇出入境檢驗檢疫局,江蘇南京 210001)

      牛傳染性鼻氣管炎(IBR)是由牛傳染性鼻氣管炎病毒(IBRV)引起牛的一種急性、熱性、接觸性傳染病,以鼻氣管炎、眼結膜炎、高熱、流產、傳染性膿皰性外陰道炎為主要特征[1],為世界動物衛(wèi)生組織(OIE)法定報告動物疫病。IBRV可通過空氣、媒介物,以及與病牛直接接觸傳播,20~60日齡犢牛對其最易感,對6周齡以下犢牛的病死率可達85%~100%[2]。目前針對IBR的病原學檢測有包涵體檢查、病毒分離、PCR、qPCR和熒光定量PCR等[3];血清學診斷方法有中和試驗、瓊脂擴散試驗、間接血凝試驗、ELISA試驗和變態(tài)試驗等[4]。但這些方法不是操作繁瑣,就是需要高昂的設備和試劑。環(huán)介導等溫擴增(Loop-mediated isothermal ampli fi cation,LAMP)是一種新型的核酸等溫擴增技術,最早由日本 Notomi 等[5]報道,具有條件簡單、操作方便等突出優(yōu)點,是近年來發(fā)展起來的一種快速臨床疾病診斷方法[6]。與其它分子生物學方法相比,LAMP 具有方便、簡捷、靈敏等優(yōu)點。本研究以IBRV為研究對象,基于LAMP技術,建立了可視化LAMP檢測方法,有效縮短了檢測時間,加快了通關速度,便于口岸、基層等特殊場所動物疫病檢測的開展。

      1 材料與方法

      1.1 病毒株

      牛傳染性鼻氣管炎病毒(IBRV)、藍舌病病毒、赤羽病病毒、牛病毒性腹瀉病毒、牛白血病病毒、小反芻獸疫病毒和偽狂犬病病毒,由江蘇出入境檢驗檢疫局動檢實驗室提供。

      1.2 主要試劑、儀器及耗材

      病毒株病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒(貨號DP315)、 DNA純化回收試劑盒(貨號DP214-02):購自天根生化科技(北京)有限公司;反轉錄試劑盒(D2680A):購自TaKaRa公司。其他:甜菜堿(Sigma 公司)、Bst DNA大片段擴增酶(NEB公司)、SYBR Green I(Invitrigen 公司)

      1.3 LAMP引物設計及合成

      根據GenBank中發(fā)表的IBRV全基因序列,利用MEGA 3.1進行同源性比對;選擇基因中的高保守區(qū)域,采用Primer explorer V4網上在線軟件(http∶//primerexplorer.jp/elamp4.0.0/index.html) 設計3對針對靶基因的引物,包括2條外引物F3和B3、2條內引物FIP和BIP,以及引物LF和LB。引物序列如表1所示。

      表1 RT-LAMP引物序列

      1.4 病毒核酸提取及反轉錄

      RNA和DNA病毒核酸的提取,參照病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒說明書進行。其中對RNA,再利用反轉錄試劑盒,將RNA反轉錄為cDNA,-20 ℃ 保存。

      1.5 LAMP檢測體系優(yōu)化

      在LAMP基本反應體系基礎上設置不同內引物濃度(0.2、0.4、0.8、1.6、2.0、2.4 μmol/L),dNTP 濃度(0、0.2、0.4、0.8、1.0、1.2、1.4、2.0和2.4 mmol/L),Mg2+濃度(2、4、6、8、10和12 mmol/L)和反應溫度(45、50、55、57、60、63、65、67和70 ℃),然后分別進行單因素實驗,探索各因素對LAMP的影響,獲得最佳反應參數。

      1.6 LAMP 靈敏性試驗

      提取IBRV核酸,按照107~100copies/μL進行10倍比梯度稀釋;以此為模板分別進行LAMP擴增,分析檢測體系的靈敏度。

      1.7 LAMP 特異性試驗

      提取IBRV、藍舌病病毒、赤羽病病毒、牛病毒性腹瀉病毒、牛白血病病毒、小反芻獸疫病毒和偽狂犬病病毒核酸,并以此為模板進行LAMP擴增,分析檢測體系的特異性。

      1.8 LAMP 反應時間

      分別反應 5、10、15、20、25、30、40、50和60 min,評估反應時間。

      2 結果與分析

      2.1 內引物濃度梯度試驗

      分別用 0.2、0.4、0.8、1.6、2.0、2.4 μmol/L 引物進行內引物濃度優(yōu)化,發(fā)現最佳引物濃度為2.4μmol/L。其中,黃綠色為陽性結果,淺橙色為陰性結果(圖1)。

      圖1 內引物優(yōu)化結果

      2.2 dNTP濃度梯度試驗

      分 別 用 0、0.2、0.4、0.8、1.0、1.2和 1.4 mmol/L dNTP濃度進行試驗摸索,發(fā)現最佳dNTPs濃度為1.0 mmol/L。其中,黃綠色為陽性結果,淺橙色為陰性結果(圖2)。

      圖2 dNTP優(yōu)化結果

      2.3 Mg2+ 濃度梯度試驗

      分別用 2、4、6、8、10、12 μmol/L 濃度進行試驗摸索,發(fā)現Mg2+最佳濃度濃度為8 μmol/L。其中,黃綠色為陽性結果,淺橙色為陰性結果(圖3)。

      圖3 Mg2+優(yōu)化結果

      2.4 溫度梯度試驗

      分別采用 67、65、63 、60、57、55、50、45 ℃進行試驗摸索,發(fā)現佳反應溫度為65 ℃。其中,黃綠色為陽性結果,淺橙色為陰性結果(圖4)。

      圖4 溫度優(yōu)化結果

      2.5 LAMP特異性試驗

      特異性試驗結果顯示,藍舌病病毒、赤羽病病毒、牛病毒性腹瀉病毒等6種其他病原全為陰性,僅IBRV為陽性,說明所建立的LAMP技術特異性較好(圖5)。

      圖5 特異性實驗結果

      2.6 LAMP靈敏度試驗

      分別采用不同核酸濃度106、105、104、103、102、101copies/μL進行試驗摸索,最終確定IBRV靈敏度為103copies/μL。其中,黃綠色為陽性結果,淺橙色為陰性結果(圖6)。

      圖6 靈敏度結果

      3 討論

      IBR是由牛皰疹病毒I型引起的一種急性、熱性、接觸性傳染病。此病在全球范圍內廣泛分布,主要損害牛的呼吸系統(tǒng)及生殖系統(tǒng),給養(yǎng)牛業(yè)帶來巨大經濟損失[8]。目前,我國口岸動物檢疫部門已明確規(guī)定凡是進境的牛及其制品必須檢測IBRV。近年來,我國進境種(奶)用牛數量和種類不斷增加,待檢疫病種類較多,在實際檢驗檢疫工作中,每進口一批活動物,往往要做上萬次檢測,因而需要花費大量時間和試劑,以及復雜的人工操作。因此,必須尋找一種高通量、高靈敏度、省時省力、經濟且操作簡單的檢測方法,以加速口岸通關速度,提高口岸檢測水平,并能有效防控外來動物疫病入侵。

      可視化的逆轉錄環(huán)介導等溫擴增(LAMP)方法相比其他方法,具有快速、高效、高敏感及高特異的特點[9]。馮蒙等[10]也建立了IBRV LAMP 方法。該法可在50 min內檢出標準陽性質粒,且不發(fā)生交叉反應,通過肉眼直接觀察即可判斷結果。本研究以IBRV核酸作為研究對象,尋找該病毒的特異性保守基因序列,利用LAMP在線軟件,設計篩選出特異性引物,利用具有鏈置換作用的Bst DNA聚合酶進行靶序列的識別和延伸,對待測靶序列進行超指數擴增,以驗證引物的特異性和敏感性。在LAMP基本反應體系基礎上,設置不同內引物濃度(0.2、0.4、0.8、1.6、2.0、2.4 μmol/L),dNTP 濃 度(0、0.2、0.4、0.8、1.0、1.2、1.4、2.0、2.4 mmol/L),Mg2+濃度(2、4、6、8、10、12 mmol/L)和反應溫度(45、50、55、57、60、63、65、67 ℃)分別進行試驗,探索各因素對LAMP的影響,以獲得最佳反應參數,最終建立了靈敏度高的IBRV LAMP檢測方法,靈敏度可達到103拷貝/μL。本研究對牛白血病病毒等6種牛主要疫病病原進行特異性分析,結果僅IBRV為陽性,特異性良好。本研究在反應體系中添加了堿土金屬離子指示劑羥基萘酚藍(HNB)。由于反應副產物焦磷酸根離子和反應體系中的Mg2+生成焦磷酸鎂沉淀,不斷消耗游離Mg2+,導致反應前后顏色顯著改變,從而使IBRV檢測可視化。

      4 結論

      本研究建立的可視化IBRV LAMP檢測方法具有特異性和敏感性高、操作簡便、耗時短等特點,適用于口岸進出口動物的IBR快速檢疫。

      參考文獻:

      [1] GRIFFIN D,CHENGAPPA M M,KUSZAK J,et al.Bacterial pathogens of the bovine respiratory disease complex[J]. Veterinary clinics of north america food animal practice,2010,26(2):381.

      [2] BENO R M,JULIEN T,PHILIPPE K,et al.Bovine herpesvirusl infection and Infectious bovine rhinotracheitis[J]. Veterinary research,2007,38:181-209.

      [3] 陳圣軍,孔繁德,徐淑菲,等. 牛傳染性鼻氣管炎檢測方法的研究進展[J]. 經濟動物學報,2013,17(1):37-40.

      [4] 徐曉琴,冷雪,李真光,等. 牛傳染性鼻氣管炎診斷方法研究進展[J]. 動物醫(yī)學進展,2010,31(1):80-86.

      [5] NOTOMT T H,OKAYAMA H,MASUBUCHI T,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic acids research,2000,28:e63.

      [6] 張躍偉,李旭妮,郭盼盼,等. 熒光顯色在環(huán)介導等溫擴增(LAMP)檢測豬繁殖與呼吸綜合征病毒的應用[J]. 農業(yè)生物技術學報,2010,18(3):508-513.

      [7] PAWAR S S,MESHRAM C D,SINGH N K,et al.Rapid detection of bovine herpesvirus 1 in bovine semen by loop-mediated isothermal amplification(LAMP)assay[J]. Archives of virology,2014,159(4):641.

      [8] JONES C,CHOWDHURY S. A review of the biology of bovine herpesvirus type 1(BHV-1),its role as a cofactor in the bovine respiratory disease complex and development of improved vaccines[J]. Animal health research reviews,2007,8(2):187.

      [9] ZHANG S Q,TAN B,LI P,et al. Comparison of conventional RT-PCR,reverse-transcription loopmediated isothermal amplification,and SYBR green I-based real-time RT-PCR in the rapid detection of bovine viral diarrhea virus nucleotide in contaminated commercial bovine sera batches[J]. Journal of virological methods,2014,207(10):204-209.

      [10] 馮蒙. 可視化檢測牛傳染性鼻氣管炎病毒LAMP法的建立及其對流行狀況的初步調查[D]. 南京:南京農業(yè)大學,2014.

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