陳 蘋,李立科 ,陳曉林,李一帆,羅啟慧,2,黃 超,劉文濤,2,陳正禮,2*
(1.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,成都 611130;2.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)預(yù)防獸醫(yī)研究所,成都 611130)
肥胖是一種由脂肪代謝紊亂誘發(fā)的疾病,其發(fā)病率在世界范圍內(nèi)持續(xù)增加,全球超重和肥胖人數(shù)已達(dá)21億,肥胖已成為全球亟須解決的公共衛(wèi)生問題[1-2]。肥胖是由多種內(nèi)外因素共同作用導(dǎo)致的營養(yǎng)代謝障礙疾病,是多種并發(fā)癥的風(fēng)險因素。多項(xiàng)研究顯示,肥胖會增加糖尿病[3-4]、動脈粥樣硬化[5]、高血壓[6-7]等疾病的發(fā)病率。導(dǎo)致肥胖的原因包括能量攝入和輸出失衡、內(nèi)分泌紊亂、遺傳因素[8]以及人們生活方式和膳食的改變[9]。然而,肥胖及其相關(guān)疾病在亞洲國家發(fā)病率較低,這可能與亞洲國家飲食中含有較多的大豆以及大豆食物有關(guān)[10]。大豆異黃酮(soy isoflavone,SIF)是一種天然的植物雌激素,研究表明,大豆異黃酮具有多種生物學(xué)功能,例如改善血脂和血糖[11]、抗氧化[12]、增強(qiáng)免疫[13]等,從而對乳腺癌、骨質(zhì)疏松癥、心血管疾病等疾病發(fā)揮潛在的保護(hù)作用[10]。肝臟作為脂質(zhì)代謝的主要器官,具有合成、運(yùn)輸和氧化脂肪酸的功能,當(dāng)這些功能失常時就會導(dǎo)致脂肪酸累積最終形成肥胖。而與脂肪生成密切相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子過氧化物酶體增殖物激活受體α(PPARα)、固醇調(diào)節(jié)元件結(jié)合蛋白1(SREBP-1c)和脂解基因甘油三酯水解酶(ATGL)、乙酰輔酶A羧化酶α(ACC1)以及生脂基因脂肪酸合成酶(FAS)等對脂肪細(xì)胞的分化和脂質(zhì)代謝平衡發(fā)揮著重要作用。目前有關(guān)SIF對肥胖的降脂減重作用已有一定報道[11],然而不同劑量的SIF是否會影響正常肝臟脂肪酸的代謝還鮮有報道,因此,本試驗(yàn)利用熒光定量PCR技術(shù)檢測與肝臟脂肪酸代謝密切相關(guān)的基因,以期為SIF的干預(yù)機(jī)制提供理論依據(jù)。
試驗(yàn)動物為40只6周齡SD雄性大鼠,體重(228.44±11.06)g,購自成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動物有限公司,使用許可證SCXK(川)2015-030。
試驗(yàn)大鼠專用飼料和墊料購自成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動物有限公司;大豆異黃酮提取物購自西安天豐生物科技有限公司,產(chǎn)品批號NF-20140806,純度為90%;氯仿、異丙醇、無水乙醇購自成都科龍化工試劑廠,RNAiso-Plus、PrimeScriptTMRT reagent Kitwith gDNA Eraser、SYBRRPremix Ex TaqTMII購自大連寶生物工程有限公司
Leica石蠟切片機(jī)(德國徠卡有限公司),Leica冷凍切片機(jī)(德國徠卡有限公司),生物數(shù)碼顯微鏡(Nikon DS-Ril),大容量高速臺式冷凍離心機(jī)(ST16)(Thermo Scientific),熒光定量PCR 儀(CFX96 touch),移液槍(Thermo Scientific),等。
將40只大鼠隨機(jī)分為4組,在晝夜交替的自然光下飼養(yǎng),自由飲水進(jìn)食。以課題組前期研究得到的劑量為依據(jù)并參照其動物處理方法[14],將不同劑量(0,50,250,500 mg/kg)的大豆異黃酮溶于 0.5%羧甲基纖維素鈉中,每日各組大鼠按照2 mL/kg BW連續(xù)灌胃4 w,并記錄體重。試驗(yàn)中對動物的處置符合中華人民共和國科技部《關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動物的指導(dǎo)性意見》的規(guī)定。
連續(xù)干預(yù)4 w后,利用10%水合氯醛腹腔注射麻醉,斷頸處死大鼠。迅速分離出肝臟并稱重記錄,臟器指數(shù)=肝臟(mg)/體重(g)。取部分肝臟組織凍存于液氮中,余下部分在4%多聚甲醛溶液中進(jìn)行固定。固定24 h后,將組織流水沖洗過夜,隨后依次梯度酒精脫水、石蠟包埋、切片(5 μm)、烤片備用;另取組織利用30%蔗糖脫水過夜,冰凍切片(20 μm)備用。
利用蘇木精-伊紅(HE)對切片進(jìn)行染色,在光學(xué)顯微鏡下觀察肝臟形態(tài)結(jié)構(gòu)并記錄拍照。
將新鮮配制的油紅O滴于組織上,室溫靜置20 min,60%異丙醇脫色,PBS潤洗后甘油明膠封片,在光學(xué)顯微鏡下觀察肝臟脂滴并記錄拍照。
在EP管中加入1 mL RNAiso-Plus,用組織勻漿器破碎組織后,室溫靜置5 min。隨后加入800 μL氯仿劇烈震蕩后,室溫靜置10 min,15 000 r/min 4℃離心15 min,取上清200 μL于EP管中,加入等體積異丙醇,室溫靜置10 min,隨后15 000 r/min 4℃離心10 min,棄去液體后加入400 μL75%乙醇,室溫靜置5 min,隨后7 800 r/min 4℃離心5 min,棄去液體干燥后加入適量DEPC水溶解。
反轉(zhuǎn)錄方法及具體步驟嚴(yán)格參考試劑盒說明書進(jìn)行。具體步驟見表1。
表1 去除基因組DNA和反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系Table 1 Eliminating the genomic DNA and reverse transcription system
上述反應(yīng)液混勻后,37℃反應(yīng)15 min,85℃5 sec,-20℃貯存。
引物設(shè)計信息見表2,均由大連寶生物有限公司設(shè)計并合成。
qPCR反應(yīng)體系為25μL:SYBR熒光染料12.5μL,cDNA 模板1 μL,上、下游引物各 1μL,無菌水 9.5 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性 5 min;95℃ 10 s,58℃30 s,72℃10 s,進(jìn)行30個循環(huán),cDNA樣品設(shè)置3個重復(fù),反應(yīng)結(jié)束后采集目標(biāo)基因和內(nèi)參基因的循環(huán)閾值(Ct)平均值,利用 2-ΔΔCt相對定量法計算相對表達(dá)量。
利用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行單因素方差分析(one-way ANOVA),數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示(X±SD),P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著。
由表3可知,在SIF干預(yù)前,各組大鼠體重?zé)o顯著差異;在SIF干預(yù)1 w后,各組大鼠體重雖有變化但差異不顯著;在SIF干預(yù)2 w后,高劑量組大鼠體重顯著(P<0.05)低于對照組,其余各組差異不顯著;在SIF干預(yù)3 w后,中、高劑量組大鼠體重均顯著低于對照組,分別差異顯著(P<0.05)和差異極顯著(P<0.01);在SIF干預(yù)4 w后,中、高劑量組大鼠體重均顯著低于對照組,差異極顯著(P<0.01)。
由表4可知,在SIF干預(yù)4周后,與對照組相比,低劑量組甘油三酯含量顯著下降(P<0.05);中劑量組總膽固醇、甘油三酯和低密度脂蛋白含量顯著下降(P<0.05);高劑量組甘油三酯和低密度脂蛋白含量極顯著下降(P<0.01)。
由表5可知,在SIF干預(yù)4周后,與對照組相比,各劑量組大鼠的肝臟指數(shù)均無顯著性差異。
表2 實(shí)時熒光定量PCR引物序列Table 2 The sequences of real-time fluorescence quantitative PCR primers
表3 大豆異黃酮干預(yù)各時期大鼠體重Table 3 Body weight of rats at each period of administration of SIF g
表4 大豆異黃酮對大鼠生化指標(biāo)的影響Table 4 Effects of SIF on biochemical indicators of rats
表5 大豆異黃酮對大鼠肝臟指數(shù)的影響Table 5 Effects of SIF on liver index of rats
如圖1所示,與對照組相比,SIF各劑量組大鼠肝臟肝小葉結(jié)構(gòu)完整,未見異常病理變化。
如圖2所示,與對照組相比,可見脂滴數(shù)量在低劑量組變化不明顯,而在中劑量和高劑量組明顯減少。
圖1 大鼠肝臟HE染色Figure 1 The liver HE staining of rats
圖2 大鼠肝臟油紅O染色Figure 2 The liver Oil Red O staining of rats
如表6所示,與對照組相比,低劑量SIF干預(yù)4 w后,大鼠肝臟中FAS、ACC1 mRNA表達(dá)量極顯著降低(P<0.01),SREBP-1C、PPARα 和 ATGL 表達(dá)量差異不顯著(P>0.05);與對照組相比,中、高劑量組FAS、SREBP-1C和ACC-1mRNA表達(dá)量顯著降低(P<0.05或 P<0.01),而 PPARα 和 ATGL mRNA 表達(dá)量顯著升高(P<0.05或 P<0.01)。
關(guān)于大豆異黃酮對動物體重的調(diào)節(jié)作用目前已有報道。Chen J.R.等[15]和 Huang C.等[16]研究發(fā)現(xiàn)大豆異黃酮的劑量與體重呈負(fù)相關(guān),表明其具有降脂減重的作用。在本試驗(yàn)中,灌胃中、高劑量的大豆異黃酮后能夠顯著的降低大鼠體重,并伴隨血清中總膽固醇、甘油三酯和低密度脂蛋白濃度的降低。然而,在雄性斷乳大鼠[17]和ZDF大鼠[18]日糧中添加大豆異黃酮卻能夠顯著增加動物體重。這可能與大豆異黃酮的給藥途徑以及使用劑量有關(guān),因?yàn)榇蠖巩慄S酮具有雌激素活性和抗雌激素活性雙重作用,其與雌二醇受體結(jié)合而發(fā)揮生物學(xué)功能主要取決于動物的生理狀態(tài)、給藥途徑、局部濃度以及內(nèi)源性雌激素水平等[19-20]。這些差異表明大豆異黃酮在哺乳動物中存在著不同的代謝機(jī)制。
表6 大鼠肝臟中目的基因mRNA的表達(dá)變化(n=10)Table 6 Changes in mRNA expression of target genes in liver of rats(n=10)
肝臟是哺乳動物的重要代謝器官,在脂肪合成、脂肪酸β氧化以及生酮過程中發(fā)揮了重要作用[21]。不同劑量的SIF是否會對肝臟產(chǎn)生病理損傷目前還不清楚,而在本試驗(yàn)中,大鼠經(jīng)口灌胃大豆異黃酮后,各劑量組之間肝臟指數(shù)和形態(tài)結(jié)構(gòu)沒有發(fā)生顯著變化,表明在此劑量范圍內(nèi)的SIF不會損傷肝臟的正常結(jié)構(gòu)。然而,中、高劑量的大豆異黃酮卻明顯減少了肝臟脂滴數(shù)量,這表明大豆異黃酮可以促進(jìn)大鼠肝臟脂滴的清除,從而減少脂滴的形成,這些結(jié)果與之前報道相一致[10]。SREBP-1c是脂肪細(xì)胞分化過程中一種重要的核轉(zhuǎn)錄因子,ACC1、FAS基因是其下游靶位基因。ACC1和FAS是體內(nèi)脂肪酸合成的兩種關(guān)鍵酶,ACC1能夠催化乙酰輔酶A羧化為脂肪酸合成所必需的底物丙二酰輔酶A[22],而FAS則是脂肪酸合成的限速酶,通過催化乙酰輔酶A和丙二酰輔酶A進(jìn)而合成長鏈脂肪酸[23]。在大豆異黃酮干預(yù)后,SREBP-1c、ACC1和FAS的基因表達(dá)被顯著抑制,從而減少了脂肪酸的合成。PPARα是PPARs核激素受體超家族成員之一,它是肝臟中PPAR的主要形式,對體內(nèi)脂肪酸和膽固醇代謝、膽固醇轉(zhuǎn)運(yùn)以及血漿載脂蛋白水平均有調(diào)控作用[24]。而ATGL是動物體內(nèi)調(diào)節(jié)脂肪酸代謝的關(guān)鍵酶,能夠?qū)⒏视腿シ纸鉃楦视投ァ1驹囼?yàn)發(fā)現(xiàn)經(jīng)中、高劑量的大豆異黃酮干預(yù)后,PPARα和ATGL基因表達(dá)顯著增加,激活的PPARα可促進(jìn)膽固醇向膽酸的轉(zhuǎn)化,調(diào)節(jié)脂蛋白代謝,降低膽固醇水平。同時,過度表達(dá)的ATGL可加速脂肪的分解,降低脂肪的沉積。
綜上,SIF可通過抑制肝臟SREBP-1c、ACC1和FAS基因,增強(qiáng)PPARα和ATGL基因,進(jìn)而減少肝臟脂肪酸的合成,加速脂肪的分解。然而,SIF作為一種食用保健品,對于肥胖人群具有相對較好的降脂減重作用,但過量攝入SIF則可能會影響到正常肝臟脂肪酸的代謝,導(dǎo)致潛在的健康風(fēng)險。
參考文獻(xiàn):
[1]KEATING C,BACKHOLER K,PEETERS A.Prevalence of overweight and obesity in children and adults[J].Lancet,2014,384(9960):2107-2108.
[2]鄒珍,張靜,鄭志杰.國內(nèi)外兒童和青少年肥胖現(xiàn)狀及研究進(jìn)展[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2015,35(4):601-604.
[3]PLATT T L,BECKETT T L,KOHLER K,et al.Obesity,diabetes,and leptin resistance promote tau pathology in a mouse model of disease[J].Neuroscience,2016,(315):162-74.
[4]ROHDE U,HEDBACK N,GLUUD L,et al.Effect of the Endo-Barrier Gastrointestinal Liner on obesity and type 2 diabetes:a systematic review and meta-analysis[J].Diabetes,Obesity and Metabolism,2016,3(9):300-305.
[5]BAXTER J D,WEBB P.Thyroid hormone mimetics:potential applications in atherosclerosis,obesity and type 2 diabetes[J].Nature Reviews Drug Discovery,2009,8(4):308-320.
[6]COMMODORE M Y,SAMUEL L J,DENNISON-HIMMELFARB C R,et al.Hypertension and overweight/obesity in Ghanaians and Nigerians living in West Africa and industrialized countries:a systematic review[J].Journal of Human Hypertension,2014,32(3):464-472.
[7]ABALLAY L R,EYNARD A R,DIAZ M D P,et al.Overweight and obesity:a review of their relationship to metabolic syndrome,cardiovascular disease,and cancer in South America[J].Nutrition Reviews,2013,71(3):168-179.
[8]ABUYASSIN B,LAHER I.Diabetes epidemic sweeping the Arab world[J].World J Diabetes,2016,7(8):165-174.
[9]MUSAIGER A O,D'SOUZA R.Nutritional profile of local and western fast foods consumed in Bahrain [J].Ecology of Food and Nutrition,2007,46(2):143-161.
[10]LLANEZA P,GONZALEZ C,F(xiàn)ERNANDEZ-INARREA J,et al.Soy isoflavones,diet and physical exercise modify serum cytokines in healthy obesepostmenopausalwomen[J].Phytomedicine:international journal of phytotherapy and phytopharmacology,2011,18(4):245-250.
[11]羅啟慧,劉蕓,唐秀瑩,等.大豆異黃酮對肥胖大鼠弓狀核及垂體 α-MSH、POMC、Ob-Rb 表達(dá)的影響[J].華北農(nóng)學(xué)報,2015,(4):84-89.
[12]WISEMAN H,OREILLY J D,ADLERCREUTZ H,et al.Isoflavone phytoestrogens consumed in soy decrease F-2-isoprostaneconcentrations and increase resistance of low-density lipoprotein tooxidation in humans[J].The American Journal of Clinical Nutrition,2000,72(2):395-400.
[13]王明,孫志剛,劉文奇,等.大豆異黃酮對奶牛脾臟和腸系淋巴結(jié)淋巴細(xì)胞干擾素γ、白介素2和白介素4濃度以及雌激素受體βmRNA表達(dá)的影響[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2012,24(5):859-869.
[14]李立科,羅啟慧,唐秀瑩,等.大豆異黃酮對肥胖大鼠腸道瘦素介導(dǎo)Janus激酶/信號轉(zhuǎn)導(dǎo)及轉(zhuǎn)錄激活因子信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的影響[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2016,28(8):2448-2457.
[15]CHEN J R,ZHANG J,LAZARENKO O P,et al.Soy protein isolates prevent loss of bone quantity associated with obesity in rats through regulation of insulin signaling in osteoblasts[J].FASEB Journal,2013,27(9):3514-3523.
[16]HUAGN C,PANG D J,LUO Q H,et al.Soy isoflavones regulate lipid metabolism through an AKT/mTORC1 pathway in diet-induced obesity(DIO)male rats[J].Molecules,2016,21(5):1-14.
[17]郭慧君,韓正康,王國杰.日糧中添加大豆黃酮對大鼠生長性能和有關(guān)內(nèi)分泌的影響[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2001,24(4):59-61.
[18]DAVIS J,HIGGINBOTHAM A,OCONNOR T,et al.Soy protein and isoflavones influence adiposity and development of metabolic syndrome in the obese male ZDF rat[J].Annals of Nutrition and Metabolism,2007,51(1):42-52.
[19]THAM D M,GARDNER C D,HASKELL W L.Potential health benefits of dietary phytoestrogens:a review of the clinical,epidemiological,and mechanistic evidence[J].Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism,1998,83(7):2223-2235.
[20]KALDAS R,HUGHES C.Reproductive and general metabolic effects of phytoestrogens in mammals[J].Reproductive Toxicology,1989,3(2):81-89.
[21]BROWN N F,STEFANOVIC R M,SIPULA I J,et al.The mammalian target of rapamycin regulates lipid metabolism in primary cultures of rat hepatocytes[J].Metabolism,2007,56(11):1500-1507.
[22]盧建雄,劉翊中,臧榮鑫,等.大鼠脂肪細(xì)胞分化過程中脂代謝相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)時序的研究 [J].中國獸醫(yī)科學(xué),2006,36(4):306-310.
[23]曾凡勇,秦銳,郭錫熔.脂肪酸合成酶在高脂飲食誘導(dǎo)的肥胖易感和肥胖抗性大鼠白色脂肪組織中的表達(dá)差異[J].臨床兒科雜志,2007,25(1):54-58.
[24]時皎皎,糜漫天,韋娜,等.不同膳食脂肪酸構(gòu)成對大鼠肝臟脂代謝相關(guān)基因表達(dá)的影響[J].重慶醫(yī)學(xué),2012,41(13):1252-1254.