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    EID3參與調(diào)控人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞轉(zhuǎn)分化為類神經(jīng)干細(xì)胞過(guò)程的研究

    2018-05-04 02:47:17陳文錦羅亮張麗殷勤偉徐如祥
    關(guān)鍵詞:轉(zhuǎn)分化甲基化干細(xì)胞

    陳文錦 羅亮 張麗 殷勤偉 徐如祥

    神經(jīng)前體細(xì)胞(neural progenitor cells,NPCs)具有在特定微環(huán)境下分化為多種成熟神經(jīng)細(xì)胞的干細(xì)胞特點(diǎn),是細(xì)胞移植治療神經(jīng)退行性疾病的一種理想細(xì)胞系。由于通過(guò)人腦組織內(nèi)直接獲取NPCs進(jìn)行原代培養(yǎng)受器官捐獻(xiàn)及倫理學(xué)限制而難以實(shí)施,因此,通過(guò)人間充質(zhì)干細(xì)胞 (mesenchymal stem cells,MSCs)轉(zhuǎn)分化為神經(jīng)干細(xì)胞(neural stem cells,NSCs)便成為一種理想的替代方式。MSCs是細(xì)胞移植治療神經(jīng)退行性病變等中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病的理想細(xì)胞來(lái)源[1-3]。然而,這類MSCs在體內(nèi)或體外特定環(huán)境下誘導(dǎo)轉(zhuǎn)分化為類神經(jīng)干細(xì)胞 (neural stem-like cells,uNSCLs)的分子機(jī)制尚不明確[4]。表觀遺傳學(xué)的調(diào)控是MSCs誘導(dǎo)轉(zhuǎn)分化為uNSCLs的關(guān)鍵,如DNA甲基化、基因組印記、母體效應(yīng)以及基因沉默等[5-7]。表觀遺傳學(xué)將基因型與表現(xiàn)型相互聯(lián)系,對(duì)干細(xì)胞命運(yùn)決定、生長(zhǎng)分化都起到了關(guān)鍵的調(diào)控作用[8]。MSCs轉(zhuǎn)分化過(guò)程中,組蛋白乙酰化轉(zhuǎn)移酶P300和DNA甲基化轉(zhuǎn)移酶 3A (DNA methyltransferase,DNMT3A)分別對(duì)組蛋白修飾和DNA甲基化起到關(guān)鍵性的調(diào)控[9]。

    E1A樣轉(zhuǎn)分化抑制蛋白3(E1A-like inhibitor of differentiation 3,EID3)能夠綁定P300/CBP并通過(guò)直接結(jié)合細(xì)胞核受體小異二聚體伴侶分子(small heterodimer partner,SHP)及 SRC1 來(lái)抑制 P300/CBP依賴性基因轉(zhuǎn)錄過(guò)程從而調(diào)控細(xì)胞的轉(zhuǎn)化、生長(zhǎng)和凋亡。DNA甲基化中,DNMT3A參與DNA的從頭甲基化,DNMT3A的功能缺失通常導(dǎo)致小鼠胚胎期死亡,而DNMT3A基因敲除的小鼠則表現(xiàn)為發(fā)育缺陷,在發(fā)育成熟前死亡[13]。同時(shí)DNMT3A作為甲基化轉(zhuǎn)移酶,具有甲基化與去甲基化的雙重作用[14]。研究表明,DNMT3A參與了NPC分化和胚胎期中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育過(guò)程,DNMT3A能夠精確地控制中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)NPCs的分裂、分化以及細(xì)胞的增殖過(guò)程[15-17]。然而,對(duì)DNMT3A的調(diào)控干細(xì)胞分裂分化等生理過(guò)程的詳細(xì)機(jī)制尚未明確,同時(shí)其與EID3之間可能存在的相互關(guān)系也尚未有研究,本研究目的是研究EID3在人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞轉(zhuǎn)分化為uNSCLs過(guò)程關(guān)系發(fā)揮的作用以及過(guò)程中EID3和DNMT3A之間的。

    材料與方法

    一、UMSCs的獲取和培養(yǎng)

    該研究中人臍帶來(lái)源于產(chǎn)婦捐贈(zèng),臍帶的使用和實(shí)驗(yàn)?zāi)康漠a(chǎn)婦均知情理解,簽字同意。產(chǎn)婦分娩后捐贈(zèng)的新鮮臍帶用75%的乙醇消毒30 s,放入Hanks平衡鹽溶液中浸泡1 ~6 h。將臍帶動(dòng)靜脈去除,然后轉(zhuǎn)入裝有DMEM/F12培養(yǎng)基的培養(yǎng)皿中,用無(wú)菌眼科剪將臍帶剪成2 ~4 mm3的小塊,加入組織消化液(含0.5 mg/mL膠原酶、0.5%胰蛋白酶和0.5 mg/mL透明質(zhì)酸酶),37℃培養(yǎng)箱中消化45 ~60 min。消化完畢后,用5 mL槍頭緩和吹打30 s,在用45 μm的濾網(wǎng)過(guò)濾消化后的組織,去除消化不完全的大塊組織。濾液經(jīng)離心機(jī)250×g離心5 min,用新鮮的DMEM/F12培養(yǎng)基 [含10%胎牛血清 (fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、1%雙抗 (100 U/mL 青霉素、0.1 mg/mL 鏈霉素)]重懸細(xì)胞。

    二、抗體

    實(shí)驗(yàn)所用抗體:(1)一抗:DNMT3A 抗體(Cell Signaling Technology,Beverly,美國(guó)),beta-Actin 抗體(Abcam Inc,Cambridge,MA,美國(guó)),EID3 抗體(Abcam Inc,Cambridge,MA,美國(guó)),CBP/P300 抗體(Cell Signaling Technology,MA,美國(guó)),甘油醛-3-磷酸脫氫酶 (glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)抗 體 (Abcam Inc,Cambridge,MA,美 國(guó) ),F(xiàn)ITC-CD34 抗體、FITC-CD29 抗體、FITC-CD106、PECD45、PE-CD44、PE-CD90 抗 體 (BD Biosciences,Piscataway,NJ,美國(guó)),根據(jù)廠家推薦濃度稀釋使用;(2)二抗:驢抗兔免疫球蛋白 G(immunoglobulin G,IgG)Alexa Fluor 488、驢抗鼠 lgG Alexa Fluor 568(Thermo Life,Pittsburg,PA,美國(guó))。

    三、細(xì)胞的培養(yǎng)

    UMSCs用含10%FBS、4.5 g/L葡萄糖的DMEM/F12培養(yǎng)基培養(yǎng),細(xì)胞融合度達(dá)80%時(shí)進(jìn)行細(xì)胞傳代(0.25%trypsin-EDTA消化細(xì)胞,含血清的培養(yǎng)基終止消化),UMSCs在下一步實(shí)驗(yàn)前先傳代2 ~4次。

    HEK293用含10%FBS、2 mmol/L谷氨酰胺和1%雙抗 (100 U/mL青霉素、0.1 mg/mL鏈霉素)的DMEM/F12培養(yǎng)基培養(yǎng)。

    NSCs(SCC007,Millipore,美國(guó))的培養(yǎng)和擴(kuò)增根據(jù)生產(chǎn)商提供的方案進(jìn)行。細(xì)胞培養(yǎng)皿用層粘連蛋白和多聚賴氨酸包被,用含20 ng/mL堿性成纖維生長(zhǎng)因子(basicfibroblastgrowthfactor,bFGF)(PeproTech,美國(guó))、20 ng/mL表皮生長(zhǎng)因子 (epidermal growth factor,EGF)(PeproTech,美國(guó))的 ReNCell培養(yǎng)基培養(yǎng)。NSCs種板密度為5×105/mL,實(shí)驗(yàn)中所使用的NSCs均在3 ~10代內(nèi)。

    四、UMSCs轉(zhuǎn)分化為uNSCL

    UMSCs經(jīng)過(guò)0.05%的胰酶消化后,以(1.5 ~2.0)×105/cm2密度種植于低粘附培養(yǎng)瓶 (Corning Inc,Lowell,MA,美國(guó)),用含 1×N2B27、20 ng/mL bFGF、20 ng/mL EGF的NSC細(xì)胞培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)3 ~4 d時(shí),離心收集細(xì)胞,用細(xì)胞消化液Accutase(Sigma,美國(guó))消化細(xì)胞,然后再以(1.5 ~2.0)×105/cm2密度種植于低粘附培養(yǎng)瓶。培養(yǎng)7 ~10 d呈神經(jīng)球樣生長(zhǎng)的細(xì)胞便可用于相關(guān)實(shí)驗(yàn)使用。

    五、流式細(xì)胞實(shí)驗(yàn)

    UMSC細(xì)胞經(jīng)胰蛋白酶-EDTA處理后,用含1%新生胎牛血清和0.02%疊氮鈉的磷酸緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)溶液清洗 2 遍。樣品采用FACSCalibur流式細(xì)胞儀和相應(yīng)軟件(Becton Dickinson,F(xiàn)ranklin Lakes,NJ,美國(guó))進(jìn)行分析,每個(gè)樣品納入分析數(shù)目不少于20 000個(gè)細(xì)胞。

    六、質(zhì)粒

    含質(zhì)粒 EID3(pcDNA3.1-Flag-EID3)和DNMT3A(pcEGFP-C1-DNMT3A)大腸桿菌菌液(Ampicillin 耐藥)購(gòu)置于北京和元生物科技公司。菌液復(fù)蘇后,搖菌24 h,質(zhì)粒大提試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司)提取質(zhì)粒(實(shí)驗(yàn)步驟根據(jù)廠家說(shuō)明)。

    七、Western blot

    總蛋白的提取使用含蛋白酶抑制劑成分RIPA細(xì)胞裂解液(Thermo Fisher,Pittsburg,PA,美國(guó)),蛋白濃度的測(cè)定使用BCA蛋白質(zhì)檢測(cè)試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)有限公司)。等量蛋白經(jīng)十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳電泳分離后,電轉(zhuǎn)至聚偏二氟乙烯膜(Milipore,美國(guó))。5%牛血清白蛋白溶液(bovine serum albumin,BSA)抗原封閉,一抗(EID3、DNMT3A、GAPDH、Flag、EGFP)孵育 4℃過(guò)夜,二抗孵育室溫?fù)u床反應(yīng)1 h,PBS吐溫洗膜液洗膜。條帶使用ECL檢測(cè)試劑盒顯影 (GE Healthcare Life Science,Pittsburgh,PA,美國(guó)),暗室曝光分析結(jié)果。

    八、免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)

    研究uNSCLs細(xì)胞內(nèi)源性EID3和DNMT3A是否能夠免疫共沉淀時(shí),收集uNSCLs細(xì)胞總蛋白后,分2組,各500 μg,對(duì)照組加入免疫球蛋白G磁珠(Milipore,美國(guó)),實(shí)驗(yàn)組中加入 1.5 μL EID3 抗體,混勻4°C冰箱搖過(guò)夜,各加入20 μL A/G蛋白磁珠(Santa Cruz,CA,美國(guó))混勻,4℃搖 4 h。 取出后離心小心吸出全部上清,PBS充分洗滌珠子,2×上樣緩沖液 (上海碧云天生物技術(shù)有限公司)混勻珠子后95℃煮樣10 min,冷卻后各吸取15 μL進(jìn)行western blot實(shí)驗(yàn),檢測(cè)DNMT3A。相同方法加入DNMT3A抗體檢測(cè)EID3是否被共沉淀。

    研究外源性EID3和DNMT3A在HEK293細(xì)胞中能夠發(fā)生免疫共沉淀時(shí),向HEK293中轉(zhuǎn)染pcDNA-EID3(帶Flag標(biāo)簽)和pcEGFP-DNMT3A(EGFP標(biāo)簽)質(zhì)粒,加入Flag抗體后檢測(cè)DNMT3A,同理加入EGFP抗體檢測(cè)Flag。其他方法步驟同內(nèi)源性檢測(cè)。

    九、免疫細(xì)胞化學(xué)染色和激光共聚焦

    細(xì)胞以1.5×104/cm2的密度種在已放入經(jīng)多聚賴氨酸包被細(xì)胞爬片的12孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,細(xì)胞染色前,以4%多聚甲醛細(xì)胞固定液(1×PBS配置)進(jìn)行細(xì)胞固定處理10 min。PBS浸潤(rùn)洗滌3次,0.25%Triton-X100(5%BSA配置)細(xì)胞破膜處理5 min,室溫下5%BSA溶液抗原封閉處理1 h后去除封閉液,加入適量現(xiàn)配工作濃度一抗(EID3、DNMT3A),4℃過(guò)夜,一抗洗滌后進(jìn)行二抗染色,室溫下避光孵育2 h。二抗洗滌,封片。激光共聚焦顯微鏡下觀察染色結(jié)果和分析亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)染色情況。

    十、RNA提取及RT-PCR和qRT-PCR分析

    RNA 的提取利用 TRIzol(Invitrogen,美國(guó)),實(shí)驗(yàn)步驟根據(jù)廠家說(shuō)明。提取UMSCs、NSCs和uNSCLs細(xì)胞中的總RNA后,再用無(wú)RNA酶的DNA酶試劑處理,操作步驟根據(jù)廠家說(shuō)明。為了評(píng)價(jià)mRNA的表達(dá)水平,總RNA經(jīng)逆轉(zhuǎn)錄處理,逆轉(zhuǎn)錄操作試劑盒使用 PrimeScript RT Reagent Kit(TaKaRa,Otsu,日本)。500 ng總RNA用于合成第一條cDNA。逆轉(zhuǎn)錄系統(tǒng)為Applied Biosystems ViiATM7 System,后續(xù)擴(kuò)增使用SYBR Green PCR Master mix(TaKaRa,Otsu,日本)。

    十一、統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用SPSS20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,實(shí)驗(yàn)結(jié)果均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,2組組間比較采用兩獨(dú)立樣本的t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    結(jié) 果

    一、誘導(dǎo)轉(zhuǎn)分化后的uNSCLs表現(xiàn)出NSC的細(xì)胞特點(diǎn)

    UMSC經(jīng)過(guò)4 ~6代后,通過(guò)特定培養(yǎng)條件下(見實(shí)驗(yàn)方法),細(xì)胞逐漸表現(xiàn)出NSCs的成球成長(zhǎng)特征,體外培養(yǎng)的uNSCLs細(xì)胞倍增時(shí)間約為2.6 d,連續(xù)體外培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)學(xué)至少能維持8周時(shí)間 (圖1A ~B)。同時(shí),相比較UMSCs,uNSCLs高表達(dá)NSCs的 相 關(guān) mRNA: 在 NESTIN、PAX6、VIMENTIN、GFAP、MUSASHI1和NEUROD1基因mRNA的水平上增加了3 ~13.2倍,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=9.925、14.089、4.303、8.994、10.122、22.327、1.876;P=0.018、0.0005、0.026、0.0003、0.017、0.002、0.258,圖 1C)。

    圖1 UMSCs和由UMSCs轉(zhuǎn)分化而來(lái)的uNSCLs細(xì)胞形態(tài)及免疫學(xué)特征

    二 、EID3 和 DNMT3A 在 uNSCL、UMSCs 和NSCs細(xì)胞中的表達(dá)變化

    為了研究uNSCLs細(xì)胞中甲基化和乙酰化酶之間的關(guān)系,通過(guò)qRT-PCR檢測(cè)相關(guān)表觀遺傳學(xué)基因的表達(dá)情況, 包括 DNMT1、DNMT3A、DNMT3B、HDAC1、P300、EID1和 EID3。結(jié)果顯示 DNMT3A 在uNSCLs和NSC中的表達(dá)量明顯高于UMSCs,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異 (tuNSCLs=7.453,PuNSCLs=0.006;tNSCs=12.924,PNSCs=0.001)(圖 2A)。 隨后,檢測(cè) UMSC、uNSCLs和NSC細(xì)胞中DNMT3A和EID3的蛋白表達(dá)水平。結(jié)果顯示,DNMT3A和EID3在上述細(xì)胞中的蛋白表達(dá)量呈現(xiàn)相反的趨勢(shì),在UMSC中,EID3高表達(dá)而DNMT3A低表達(dá);經(jīng)過(guò)誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化后的uNSCLs與UMSC比較,EID3表達(dá)量降低而DNMT3A的表達(dá)量升高;NSCs與uNSCLs比較,EID3的表達(dá)量進(jìn)一步降低,并且DNMT3A的表達(dá)量進(jìn)一步升高(圖2B ~C)。

    圖2 UMSCs、uNSCLs、NSCs中表觀遺傳基因mRNA水平比較及EID3和DNMT3A蛋白水平比較

    圖3 EID3和DNMT3A在UMSCs、uNSCLs、NSCs中免疫熒光情況

    亞細(xì)胞水平表達(dá)定位研究發(fā)現(xiàn),EID3和DNMT3A都優(yōu)先在細(xì)胞核中富集,而后,EID3在細(xì)胞漿和細(xì)胞核中均有表達(dá),而DNMT3A則大部分表達(dá)在細(xì)胞核中,與EID3存在共定位表達(dá)現(xiàn)象(圖3)。

    三、EID3直接結(jié)合DNMT3A

    通過(guò)免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步檢測(cè)EID3和DNMT3A之間確切關(guān)系,EID3抗體能夠?qū)NSCLs細(xì)胞總蛋白中DNMT3A蛋白沉淀下來(lái),并且DNMT3A抗體也能夠?qū)NSCLs細(xì)胞總蛋白中EID3蛋白沉淀下來(lái) (圖4A)。這部分實(shí)驗(yàn)證明,在uNSCLs細(xì)胞中,EID3和DNMT3A之間存在直接結(jié)合作用。

    為了進(jìn)一步驗(yàn)證細(xì)胞內(nèi)EID3與DNMT3A蛋白之間能夠直接結(jié)合,本研究在HEK293細(xì)胞系中共轉(zhuǎn)染表達(dá)EID3(Flag標(biāo)簽)和DNMT3A(EGFP標(biāo)簽)的外源性質(zhì)粒,外源性轉(zhuǎn)染基因表達(dá)蛋白的免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),外源性Flag-EID3與pEGFPDNMT3A之間同樣能夠相互沉淀下來(lái)。這就說(shuō)明,外源性EID3和DNMT3A蛋白同樣存在直接結(jié)合的現(xiàn)象(圖 4B)。

    討 論

    圖4 EID3和DNMT3A免疫共沉淀

    成熟神經(jīng)細(xì)胞因其有限的自我更新能力,移植NSCs成為神經(jīng)退行性病變的一種理想可行的治療方案。目前,NSCs移植治療在再生醫(yī)學(xué)領(lǐng)域?qū)嶋H應(yīng)用尚存在許多未能解決的難題,其中最大難題在于如何快速獲取大量的NSCs[18]。直接提取uNSCLs進(jìn)行原代培養(yǎng)擴(kuò)增因存在諸多限制,實(shí)際操作無(wú)法實(shí)現(xiàn)。幸運(yùn)的是,人類干細(xì)胞轉(zhuǎn)分化領(lǐng)域大量研究成果表明,MSCs為NSCs的大量獲取提供了可能。MSCs來(lái)源豐富,容易分離培養(yǎng),細(xì)胞增殖速度快,并且研究已經(jīng)表明MSCs能夠在較短的時(shí)間內(nèi)通過(guò)人工誘導(dǎo)轉(zhuǎn)分化,從而獲取大量具有NSCs功能特性的一種uNSCLs樣細(xì)胞[19,20]。然而,關(guān)于MSCs是否能夠在不引入外源性轉(zhuǎn)錄因子而自然的轉(zhuǎn)分化為uNSCLs的問(wèn)題,仍然存在許多爭(zhēng)論。

    在本研究中,由UMSCs轉(zhuǎn)分化而來(lái)的uNSCLs,能夠6次以上進(jìn)行傳代而保持自身細(xì)胞特征的穩(wěn)定性。筆者認(rèn)為,uNSCLs體現(xiàn)的是MSCs轉(zhuǎn)分化為NSCs的一種中間狀態(tài),理由如下:(1)在無(wú)血清培養(yǎng)基中,UMSCs傾向聚集成球生長(zhǎng),但是這并不等同于NSC/NPC神經(jīng)球,因?yàn)楹笳叱汕蛏L(zhǎng)的原因是因其自身的細(xì)胞增殖所致;(2)盡管uNSCLs細(xì)胞表達(dá)許多NSCs的細(xì)胞表面蛋白和轉(zhuǎn)錄因子標(biāo)記物,但是一些重要的NSCs標(biāo)記物并沒(méi)有顯著表達(dá),如SOX2。雖然存在以上的問(wèn)題,uNSCLs仍然表現(xiàn)出了類似NSCs的諸多特性,uNSCLs細(xì)胞能夠成球狀增殖,并且表達(dá)NSCs相關(guān)標(biāo)記蛋白,同時(shí)能夠進(jìn)一步分化為不同類型的神經(jīng)細(xì)胞。因此,筆者認(rèn)為uNSCLs細(xì)胞作為MSCs轉(zhuǎn)分化為NSCs研究的細(xì)胞模型具有重大的價(jià)值。

    在體細(xì)胞的重編碼的過(guò)程中,DNA甲基化和去甲基化平衡能夠維持DNA的甲基化譜,但其中去甲基化的機(jī)制尚不明確。相關(guān)研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn),DNMT3A作為一個(gè)從頭甲基化酶,卻能表現(xiàn)出脫羥基甲基化酶活性[21,22]。然而,在細(xì)胞的轉(zhuǎn)分化過(guò)程中,DNMT3A是如何協(xié)調(diào)自身甲基化和去甲基化雙重作用尚不得知。筆者檢測(cè)EID3和DNMT3A分別在uNSCLs、UMSCs和NSCs中的表達(dá)水平,結(jié)果發(fā)現(xiàn),EID3和DNMT3A之間的表達(dá)水平存在相關(guān)關(guān)系,在UMSCs轉(zhuǎn)分化為uNSCLs之前,細(xì)胞高表達(dá)EID3而低表達(dá)DNMT3A;UMSCs轉(zhuǎn)分化為uNSCLs之后,細(xì)胞低表達(dá)EID3而高表達(dá)DNMT3A。隨后,本研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)了EID3在UMSCs轉(zhuǎn)分化的過(guò)程中直接結(jié)合了DNMT3A。因此,EID3很可能參與調(diào)控了DNMT3A所表現(xiàn)出的甲基化和去甲基化雙重功能的轉(zhuǎn)變過(guò)程,調(diào)控了UMSCs轉(zhuǎn)分化為uNSCLs過(guò)程中DNA重編碼中的甲基化和去甲基化平衡。

    EID3作為組蛋白乙酰化酶P300抑制蛋白,能夠直接結(jié)合甲基化轉(zhuǎn)移酶DNMT3A,并調(diào)控DNMT3A的功能狀態(tài),反映了MSCs轉(zhuǎn)分化過(guò)程中存在復(fù)雜的外源性調(diào)控,且需要更加全面地進(jìn)行多種因素研究來(lái)進(jìn)一步探索干細(xì)胞轉(zhuǎn)分化機(jī)制。

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