李韓帥,周秒依 ,楊鳳玲,李 婷 ,白琪林 ,劉 亞
(1.山西大學(xué)生物工程學(xué)院,山西太原 030006;2.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所,山西太原 030031;3.北京市農(nóng)林科學(xué)院玉米研究中心,北京 100097)
玉米作為世界上重要的糧食作物和工業(yè)原料之一,在解決糧食安全和資源短缺問題,以及促進(jìn)國民經(jīng)濟(jì)發(fā)展等方面意義重大。FAO統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示,玉米產(chǎn)量自2001年以來正式超過水稻和小麥,成為世界上產(chǎn)量最大的作物[1]。自新中國成立以來,常規(guī)育種在玉米遺傳改良中發(fā)揮了重要作用,使得玉米產(chǎn)量至少增加了2倍[2]。隨著分子生物學(xué)的日漸成熟,轉(zhuǎn)基因技術(shù)已經(jīng)逐漸成為玉米品種改良的重要手段。1987年,GRIMSLEY等[3]選擇農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化法,成功地用玉米條斑病毒的cDNA感染了玉米植株,首次證明農(nóng)桿菌侵染玉米的可行性;1988年RHODES等[4]首次用基因槍法獲得轉(zhuǎn)基因玉米完整植株;1996年ISHIDA等[5]用含超雙元載體的農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化自交系的幼胚,成功獲得轉(zhuǎn)基因玉米植株,初步建立農(nóng)桿菌遺傳轉(zhuǎn)化體系,在此轉(zhuǎn)化體系下,玉米的轉(zhuǎn)化率能夠達(dá)到5%~30%,這是農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化玉米的一個(gè)重要突破。轉(zhuǎn)基因玉米遺傳轉(zhuǎn)化研究已進(jìn)入飛速發(fā)展時(shí)期。
目前,玉米遺傳轉(zhuǎn)化的方法有很多,包括基因槍法、農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化法、花粉管通道法、PEG介導(dǎo)法、電激法和子房注射法等[6]。由于農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化法具有研究機(jī)理相對清楚、外源基因能夠穩(wěn)定表達(dá)和遺傳、轉(zhuǎn)基因后代拷貝數(shù)少,且遺傳穩(wěn)定性好、成本低且操作簡單等優(yōu)勢[7],目前該方法已在全世界范圍內(nèi)廣泛應(yīng)用。農(nóng)桿菌介導(dǎo)玉米遺傳轉(zhuǎn)化的主要過程包括:農(nóng)桿菌侵染吸附受體幼胚、農(nóng)桿菌體內(nèi)Vir基因激活及T-DNA復(fù)合物的產(chǎn)生、T-DNA復(fù)合物整合進(jìn)入植物細(xì)胞核的基因組中并表達(dá)外源基因[8-9]。影響農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化的因素包括外植體的類型、幼胚的大小、農(nóng)桿菌濃度、侵染時(shí)間、共培養(yǎng)時(shí)間以及抗生素和篩選劑等,都是研究的熱點(diǎn)。其中,愈傷組織誘導(dǎo)和再生主要取決于玉米的基因型[10-11]。通過對離體幼胚的多年研究發(fā)現(xiàn),不同基因型的玉米幼胚抵抗農(nóng)桿菌侵染的能力差異很大,這直接影響到玉米的轉(zhuǎn)化效率,而且絕大部分基因型的玉米轉(zhuǎn)化效率都不高。SCHALAPPI等[12]深入研究農(nóng)桿菌對玉米幼胚的親和性時(shí)發(fā)現(xiàn),感受態(tài)細(xì)胞是整個(gè)農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化過程中不可或缺的。相比較而言,再生和整合能力強(qiáng)的感受態(tài)細(xì)胞更容易得到轉(zhuǎn)化植株。目前,玉米材料A188和HiⅡ取得了不錯(cuò)的效果,但農(nóng)藝性狀較差。
在前期材料篩選的基礎(chǔ)上,本研究選擇其中遺傳轉(zhuǎn)化效率較高的材料Z21,針對遺傳轉(zhuǎn)化各個(gè)環(huán)節(jié)的影響條件進(jìn)行進(jìn)一步的優(yōu)化和完善,初步建立高效穩(wěn)定的遺傳轉(zhuǎn)化系統(tǒng),獲得轉(zhuǎn)基因材料,旨在為加快轉(zhuǎn)基因育種進(jìn)程打下堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。
1.1.1 供試作物材料 試驗(yàn)所用幼胚取自大田種植的玉米材料Z21,根據(jù)氣溫變化情況,選取授粉后8~10 d、幼胚大小為0.5~2.0 mm的玉米幼穗。
1.1.2 菌株和質(zhì)粒 菌株選用農(nóng)桿菌EHA105,質(zhì)粒為pCAMBIA3301,攜帶GUS基因(圖1)。
1.1.3 培養(yǎng)基及成分 培養(yǎng)基及其成分列于表1。
表1 培養(yǎng)基及溶液組分
1.2.1 活化菌株 從-20℃冰箱取出保存在甘油中的農(nóng)桿菌菌種,置于冰塊上,待甘油解凍,將接種環(huán)經(jīng)酒精燈灼燒片刻后蘸取菌液,在相應(yīng)抗性YEP固體培養(yǎng)基上劃線,密封置于28℃培養(yǎng)箱中暗培養(yǎng)2 d。2 d后YEP固體培養(yǎng)基上會(huì)出現(xiàn)稀疏不同的菌落,選擇菌落稀少且不重疊的的區(qū)域挑取單菌落,接種于50 mL含抗生素(50 μL)的YEP液體培養(yǎng)基中,28℃條件下200 r/min振蕩培養(yǎng)16~20 h。第2天將搖好的菌液離心后去上清,用Inf侵染培養(yǎng)基懸浮農(nóng)桿菌并調(diào)節(jié)其 OD600為 0.3,0.5,0.7,0.9,1.0,1.2,1.5 和 2.0。
1.2.2 幼胚遺傳轉(zhuǎn)化 取授粉10 d左右、幼胚大小為0.5~2.0 mm的玉米幼穗,除去苞葉,切除果穗頂端和基部1~2 cm,在次氯酸鈉溶液中加入0.1%Tween 20后浸泡幼穗,消毒滅菌20 min,每隔5 min左右上下攪動(dòng)幾次,以消除籽粒表面的氣泡,從而達(dá)到最佳的消毒效果。消毒結(jié)束后用無菌水沖洗幼穗籽粒表面,在超凈工作臺內(nèi)進(jìn)行剝胚操作,將所得幼胚置于含有1 mL Inf侵染培養(yǎng)液的1.5 mL EP管中待用。
用 OD600為 0.3,0.5,0.7,0.9,1.0,1.2,1.5 和 2.0的菌液分別侵染待用的幼胚,20℃條件下各自侵染15 min。
1.2.3 共培養(yǎng) 利用帶細(xì)槍頭的移液槍吸除農(nóng)桿菌懸浮液,將幼胚均勻轉(zhuǎn)移至Coc共培養(yǎng)基中,幼胚盾面朝上放置,間隔1 cm,隨后將Coc培養(yǎng)基放置于培養(yǎng)箱中,24 ℃分別暗培養(yǎng) 1,2,3,4,5 d。
1.2.4 GUS染色鑒定 分別將共培養(yǎng)1~5 d后的部分幼胚用無菌水清洗干凈,放入含有1 mL GUS染色液的EP管中,置于37℃培養(yǎng)箱24 h。通過肉眼或者顯微鏡觀察統(tǒng)計(jì)帶有藍(lán)斑的幼胚數(shù)量,計(jì)算GUS染色瞬時(shí)表達(dá)率。
1.2.5 靜息培養(yǎng) 將共培養(yǎng)后的另一部分幼胚洗菌并用濾紙將幼胚周圍水分吸干,轉(zhuǎn)移到Res靜息培養(yǎng)基上面,同時(shí)用封口膜封住培養(yǎng)皿,28℃條件下暗培養(yǎng)4 d。
1.2.6 選擇階段 靜息培養(yǎng)后,將幼胚轉(zhuǎn)移至選擇Ⅰ培養(yǎng)基上,大約間隔1.5 cm。培養(yǎng)皿放置于培養(yǎng)箱中28℃暗培養(yǎng)14 d,直至長出1~2 cm的Ⅱ型愈傷組織。統(tǒng)計(jì)數(shù)量計(jì)算Z21的Ⅱ型愈傷率。
將存活且松散的Ⅱ型愈傷組織塊平鋪至選擇Ⅱ培養(yǎng)基上,簡單分離每個(gè)愈傷組織塊,使其仍能保持完整性。隨后將培養(yǎng)皿放置于培養(yǎng)箱的塑料盒中28℃暗培養(yǎng)14 d。再次統(tǒng)計(jì)數(shù)量計(jì)算Z21的Ⅱ型愈傷率。
每隔20 d將新長出的陽性愈傷繼代選擇培養(yǎng)一次。
1.2.7 再生階段 把選擇出來的Ⅱ型愈傷組織平鋪到再生Ⅰ培養(yǎng)基上,每個(gè)培養(yǎng)基上4個(gè)愈傷組織塊,26℃暗培養(yǎng),直至長出不透明的體細(xì)胞胚或不定芽。將體細(xì)胞胚或者不定芽轉(zhuǎn)移到再生Ⅱ培養(yǎng)基上,每個(gè)培養(yǎng)皿中只放置1個(gè),26℃條件下按16h∶8 h光周期進(jìn)行光照培養(yǎng),直至長出約4 cm的綠芽。把綠芽轉(zhuǎn)到RⅢ生根培養(yǎng)瓶中,繼續(xù)26℃條件下按16 h∶8 h光周期進(jìn)行光照培養(yǎng),待長出明顯的根芽為止。
1.2.8 幼苗的生長 將長出根芽的幼苗接到壯苗培養(yǎng)基(長試管)中,26℃條件下按16 h∶8 h光周期培養(yǎng)7~14 d。
1.2.9 轉(zhuǎn)化植株的檢測 取部分葉片,設(shè)計(jì)PCR檢測引物(F:GAAGGCACGCAACGCCTACGA;R:CCAGAAACCCACGTCATGCCA),用PCR等分子檢測手段檢測bar基因,通過bar基因的表達(dá)情況來驗(yàn)證目的基因是否被成功導(dǎo)入玉米植株中,記錄陽性植株。等植株長至試管口處時(shí),輕輕移出,室溫下沖洗掉附著在根部的殘余培養(yǎng)基,將植株完整轉(zhuǎn)移到含營養(yǎng)土的育苗紙盆中。取少量葉片,加入緩沖液后研磨,用試紙條進(jìn)行轉(zhuǎn)基因檢測,進(jìn)一步驗(yàn)證所得的陽性植株。
由圖2可知,Z21在幼胚大小為1.5~2.0 mm時(shí)GUS瞬時(shí)表達(dá)率達(dá)到最大值,為63.5%,明顯高于其他3種幼胚。當(dāng)換用不同濃度的菌液侵染幼胚時(shí),≥1.5<2.0 mm的幼胚的GUS瞬時(shí)表達(dá)率均處于最大值,且更易形成愈傷組織。通過對比發(fā)現(xiàn),在農(nóng)桿菌濃度逐漸增大的情況下,<1 mm的幼胚率先大面積染菌,生長停滯甚至褐化死亡,即使存活下來的幼胚也很難形成愈傷組織;而≥2.0 mm的幼胚很容易直接萌發(fā),其愈傷組織的誘導(dǎo)率隨著幼胚的長大逐漸降低,不利于轉(zhuǎn)基因幼苗的長成。
用 OD600分 別 為 0.3,0.5,0.7,0.9,1.0,1.2,1.5和2.0的農(nóng)桿菌菌液侵染大小為1.5~2.0 mm的Z21幼胚15 min,24℃培養(yǎng)箱中共培養(yǎng)3 d后進(jìn)行GUS染色,統(tǒng)計(jì)染色數(shù)量,結(jié)果如圖3所示。
由圖3可知,Z21的GUS瞬時(shí)表達(dá)率隨農(nóng)桿菌濃度的增大呈先升后降的變化趨勢,其中,在OD600為0.9~1.2的范圍內(nèi),Z21的GUS瞬時(shí)表達(dá)率達(dá)到峰值,且3個(gè)濃度間的瞬時(shí)表達(dá)率相差很??;雖然在OD600為1.5和2.0時(shí)也獲得了較高的GUS瞬時(shí)表達(dá)率,但在后續(xù)的多次篩選過程中,大量的Z21幼胚染菌死亡。說明高濃度的農(nóng)桿菌對幼胚傷害很大,且容易直接影響后期愈傷的生成。綜合各種因素考慮,最終選取OD600=0.9~1.2為農(nóng)桿菌最適濃度。
用OD600為0.9的農(nóng)桿菌菌液侵染1.5~2.0 mm的幼胚15 min,放置24℃培養(yǎng)箱分別培養(yǎng)1~5 d,進(jìn)行GUS染色檢驗(yàn),結(jié)果如圖4所示。
從圖4可以看出,當(dāng)共培養(yǎng)1 d時(shí),Z21的GUS瞬時(shí)表達(dá)率很低,隨著共培養(yǎng)天數(shù)的增加,相應(yīng)的GUS瞬時(shí)表達(dá)率也隨之增加;當(dāng)共培養(yǎng)3 d后,GUS瞬時(shí)表達(dá)率不再出現(xiàn)顯著的變化。共培養(yǎng)時(shí)間的長短能夠直接影響農(nóng)桿菌對幼胚的吸附能力以及T-DNA的轉(zhuǎn)移情況。時(shí)間過短會(huì)導(dǎo)致吸附的農(nóng)桿菌量少,T-DNA轉(zhuǎn)移過程不能全部完成;而時(shí)間過長也不利于農(nóng)桿菌的有效控制,容易出現(xiàn)幼胚褐化和水漬化等問題,影響愈傷組織的生成和分化,從而不能再生出完整植株。綜合來看,共培養(yǎng)3 d是農(nóng)桿菌遺傳轉(zhuǎn)化的最佳選擇。
2.4.1 基礎(chǔ)鹽對轉(zhuǎn)化效率的影響 影響玉米幼胚愈傷組織誘導(dǎo)的因素很多,其中,培養(yǎng)基的合理選擇是組織培養(yǎng)過程成功的必要條件。本試驗(yàn)分別選用了MS鹽和N6鹽培養(yǎng)基,最終均穩(wěn)定并成功地培育出了所要的轉(zhuǎn)基因幼苗,且長勢良好。而N6鹽誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織分化再生過程相對較快,更符合試驗(yàn)需求。所以,在接下來的試驗(yàn)中均選用N6鹽培養(yǎng)基。
2.4.2 抗生素對轉(zhuǎn)化效率的影響 抗生素是由微生物(包括細(xì)菌、真菌、放線菌屬)或高等動(dòng)植物在生活過程中所產(chǎn)生的具有抗病原體或其他活性的一類次級代謝產(chǎn)物,能干擾其他生活細(xì)胞發(fā)育功能的化學(xué)物質(zhì)。本試驗(yàn)在組織培養(yǎng)過程中選擇培養(yǎng)基和再生培養(yǎng)基中加入100 mg/L的特美汀,能夠在一定程度上抑制殘余農(nóng)桿菌對幼胚和愈傷組織的傷害,提高Ⅱ型愈傷率。
“育人”主要反映教師的管理工作尤其是學(xué)生管理工作取得的業(yè)績。有關(guān)評價(jià)要素包括:管理工作年限;在師德和管理方面獲得的表彰;育人管理方面的研究成果;指導(dǎo)學(xué)生取得的成績。其中,除了“管理工作年限”的認(rèn)可度為中等外,其他評價(jià)要素的認(rèn)可度均為高。
根據(jù)研究轉(zhuǎn)化效率的影響因素,選擇幼胚大小1.5~2.0 mm,農(nóng)桿菌菌液OD600處于0.9~1.2,20℃侵染15 min,共培養(yǎng)3 d,選擇抗生素特美汀為優(yōu)化轉(zhuǎn)化條件進(jìn)行玉米Z21的遺傳轉(zhuǎn)化,結(jié)果表明,在第1次選擇培養(yǎng)階段(SⅠ),共有745個(gè)愈傷,符合要求的抗性愈傷431個(gè),抗性愈傷率達(dá)57.8%;在第2次選擇培養(yǎng)階段(SⅡ),獲得145個(gè)抗性愈傷組織,抗性愈傷獲得率為19.5%。
對再生出來的玉米植株提取植株葉片DNA,PCR檢測bar基因,結(jié)果如圖5所示,陽性對照出現(xiàn)明亮的條帶,陰性對照無條帶,1~7號符合預(yù)期的檢測結(jié)果。且在后續(xù)的試紙條檢測中,1~7號均出現(xiàn)了明顯的檢測線,可以初步判定,1~7號為轉(zhuǎn)基因植株。
整個(gè)試驗(yàn)中還存在一些缺陷,例如在試管中培養(yǎng)的組培苗轉(zhuǎn)移到育苗盆后,長勢很弱,幼苗容易斷根枯死,其成活率顯著下降。所以,在玉米苗期需要加強(qiáng)對幼苗的監(jiān)管,保證充足的水分、養(yǎng)分和光照供給。
3.1.1 培養(yǎng)基成分對誘導(dǎo)愈傷組織的影響 目前,玉米組織培養(yǎng)體系中按照培養(yǎng)基所含成分不同大體劃分為N6,MS和B5培養(yǎng)基。ISHIDA等[18]成功地選用MS培養(yǎng)基培養(yǎng)出轉(zhuǎn)基因植株;李世潤等[19]研究認(rèn)為,相較N6而言,MS更容易作用在胚性愈傷組織的誘導(dǎo)和分化方面;王宏偉等研究發(fā)現(xiàn),用MS培養(yǎng)基培育出的愈傷組織質(zhì)量相對優(yōu)于N6培育出的愈傷組織。但是也有研究表明,在組織誘導(dǎo)過程中MS鹽容易產(chǎn)生Ⅰ型愈傷組織,N6鹽更利于產(chǎn)生Ⅱ型愈傷組織[20-21],而Ⅱ型愈傷組織結(jié)構(gòu)松脆,生長旺盛,色澤鮮艷且增殖很快,符合優(yōu)良標(biāo)準(zhǔn)的愈傷組織。
3.1.2 殘余農(nóng)桿菌對幼胚的傷害及影響 在農(nóng)桿菌介導(dǎo)的遺傳轉(zhuǎn)化中,共培養(yǎng)后在幼胚的表面和淺層組織中會(huì)殘留大量的農(nóng)桿菌,可能會(huì)對幼胚產(chǎn)生額外的傷害,褐化、水漬化甚至死亡,嚴(yán)重影響組織培養(yǎng)的過程,所以需要選擇合適的抗生素來抑制農(nóng)桿菌的生長。目前,使用較多的是頭孢菌素類和青霉素類,但不同的材料和組織對抗生素的敏感程度不同。本試驗(yàn)選用的特美汀雖然在一定程度上取得了很好的抑菌效果,但部分幼胚仍會(huì)出現(xiàn)染菌死亡的情況,較大程度地降低了遺傳轉(zhuǎn)化率。
本研究通過對玉米材料Z21的幼胚進(jìn)行農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化,在幼胚大小、菌液濃度、侵染時(shí)間、共培養(yǎng)時(shí)間以及抗生素等方面進(jìn)行深入地探索,初步建立了適用于Z21的農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化體系。以GUS染色瞬時(shí)表達(dá)率為依據(jù),對影響農(nóng)桿菌介導(dǎo)的主要因素采取控制單一變量的方法,不斷改變變量的大小進(jìn)行試驗(yàn)對比探究。本試驗(yàn)研究表明,在幼胚大小為1.5~2.0 mm,農(nóng)桿菌菌液OD600處于0.9~1.2,20℃侵染15 min,共培養(yǎng)3 d,選擇合適的抗生素(特美?。┑葪l件下,Z21的GUS染色瞬時(shí)表達(dá)率均達(dá)到最高值,且在后續(xù)的組織培養(yǎng)過程中,愈傷組織的形成和再分化表現(xiàn)良好,能夠穩(wěn)定地長出轉(zhuǎn)基因幼苗,證明此遺傳轉(zhuǎn)化系適用于玉米自交系Z21,符合實(shí)際需要。通過該體系可以將抗蟲、抗除草劑、抗旱等有益外源基因?qū)胗衩鬃越幌?,豐富轉(zhuǎn)基因種質(zhì)資源。
參考文獻(xiàn):
[1]FAQ.Topproduction-world(total)-2010[EB/OL].[2013-04-10].http://faostat.fao.org/site/339/default.aspx.
[2]戴景瑞,鄂立柱.我國玉米育種科技創(chuàng)新問題的幾點(diǎn)思考[J].玉米科學(xué),2010,18(1):1-5.
[3]GRIMSLEYNH,HOHNT,DAVIESJ W,et al.Agrobacterium mediated delivery of infectious maize streak virus into maize plant[J].Nature,1997,325:177-179.
[4] RHODES C A,PIERCE D A,METTLER I J,et al.Genetically transformed maize plants from protoplasts[J].Science,1988,240:204-207.
[5]ISHIDA Y,SAITO H,OHTA S,et al.High efficiency transformation ofmaize(Zea mays L.)mediated byAgrobacterium tumefaciens[J].Nature Biotechnology,1996,14(6):745.
[6]張兆熙.轉(zhuǎn)基因技術(shù)的研究綜述及利弊關(guān)系[J].科技創(chuàng)業(yè)月刊,2006(11):111-112.
[7]李新征,鄭成超,溫孚江.農(nóng)桿菌介導(dǎo)的玉米遺傳轉(zhuǎn)化研究進(jìn)展[J].生物工程進(jìn)展,2000,20(6):19-21.
[8]TZFITAT,CITOVSKYV.Fromhost recognition toT-DNAintegration:the function of bacterial and plant genes in the Agrobacterium plant cell interaction[J].Molecular Plant Pathology,2000,1(4):201-212.
[9]ZUPAN J,MUTH T R,DRAPER O,et al.The transfer of DNA from Agrobacterium tumefaciens into plants:a feast of fundamental insights[J].The Plant Journal,2000,23(1):11-28.
[10] AHLOOWALIA B S.Plant regeneration from callus culture of wheat[J].Crop Sci,1982,22:405-410.
[11] SPENCER T M,GORDON-KAMM W J,DAINES R J,et al.Bialaphos selection of stable transformants from maize cell culture[J].Theoretical&Applied Genetics,1990,79(5):625-631.
[12]SCHL?PPI M,HOHN B.Competence of immature maize embryos for Agrobacterium-mediated gene transfer[J].Plant Cell,1992,4(1):7.
[13]張艷貞,王罡,胡漢橋,等.農(nóng)桿菌介導(dǎo)將Bt殺蟲蛋白基因?qū)雰?yōu)良玉米自交系的研究[J].遺傳,2002,24(1):35-39.
[14]李慧芬,何鍶潔,王興智,等.玉米優(yōu)良自交系愈傷組織基因槍轉(zhuǎn)化的研究[J].遺傳學(xué)報(bào),1999(4):397-402.
[15]劉紀(jì)華,施介村.青飼玉米有益突變體篩選的研究[J].植物生態(tài)學(xué)報(bào)(英文版),1996(10):839-842.
[16]KAMO K K,BECWAR M R,HODGES T K.Regeneration of Zea mays L.from embryogenic callus[J].Botanical Gazette,1985,146(3):327-334.
[17]ESCUDEROJ,NEUHAUS G,SCHL?PPI M,et al.T DNA transfer in meristematic cells ofmaize provided with intracellular Agrobacterium[J].Plant Journal,1996,10(2):355-360.
[18] ZHAO Z Y,CAI T,TAGLIANI L,et al.Agrobacterium-mediated sorghum transformation[J].Plant Molecular Biology,2000,44(6):789-798.
[19]李世潤,張舉仁,陳惠民.玉米胚性愈傷組織誘導(dǎo)和植株再生的研究 [J].山東大學(xué)學(xué)報(bào) (自然科學(xué)版),1990,25(1):116-121.
[20]ARMSTRONG C L,GREEN C E.Establishment and maintenance of friable,embryogenic maize callus and the involvement of L-proline[J].Planta,1985,164(2):207-214.
[21] ELKONIN L A,PAKHOMOVA N V.Influence of nitrogen and phosphorus on induction embryogenic callus of sorghum[J].Plant Cell Tissue&Organ Culture,2000,61(2):115-123.