李嬋娟,石慧,王曼玥,王婧
1(武漢設(shè)計(jì)工程學(xué)院 食品與生物科技學(xué)院,湖北 武漢,430205)2(湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)業(yè)質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測(cè)技術(shù)研究所,湖北 武漢,430064)
來源于Geobacillusstearothermophilus木聚糖酶最適反應(yīng)溫度在65~80 ℃之間,為高溫木聚糖酶,在烘焙、造紙等工業(yè)領(lǐng)域具有應(yīng)用潛力,成為熱門研究對(duì)象[7]。ZHANG等人應(yīng)用易錯(cuò)PCR結(jié)合family shuffling技術(shù)將Geobacillusstearothermophilus木聚糖酶XT6的最適反應(yīng)溫度從77 ℃提高到87 ℃;催化效率也提高了90%[11]。WANG等人對(duì)Geobacillusstearothermophilus木聚糖酶XynA的179位H進(jìn)行飽和突變,當(dāng)其突變?yōu)?79F時(shí),催化活性和熱穩(wěn)定性均有提高[12]。本研究采用重疊延伸PCR技術(shù)對(duì)XynA保守區(qū)內(nèi)可能影響活性的位點(diǎn)H297定點(diǎn)突變?yōu)镕,以期提高XynA的熱穩(wěn)定性和催化活性。
菌種和質(zhì)粒:木聚糖酶基因由本實(shí)驗(yàn)室從Geobacillusstearothermophilus菌株中獲得并構(gòu)建成重組質(zhì)粒pGEX-6p-xynA,可在大腸桿菌中異源表達(dá);大腸桿菌EscherichiacoliDH5α、BL21(DE3)均由本實(shí)驗(yàn)室保存。
培養(yǎng)基:酵母粉5 g,胰蛋白胨10 g,NaCl 10 g,溶于1 000 mL蒸餾水;液體培養(yǎng)基中加入1.5%瓊脂粉即為固體培養(yǎng)基。
工具酶和生化試劑:TransStartFastPfuDNA聚合酶為北京全式金生物技術(shù)有限公司提供;限制性內(nèi)切酶BamHI和XhoI、T4 DNA連接酶、DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)和蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)購(gòu)自TaKaRa 寶生物工程(大連)有限公司,AxyPrepDNA凝膠回收試劑盒和AxyPrep Plasmid Miniprep Kit購(gòu)自愛思進(jìn)(杭州)技術(shù)有限公司,GST-蛋白純化試劑盒購(gòu)自GE Healthcare公司(美國(guó)),蛋白質(zhì)定量檢測(cè)試劑盒為Beyotime公司產(chǎn)品;樺木木聚糖(birchwood xylan) 、氨芐青霉素、異丙基-β-d-硫代半乳糖苷(isopropyl-β-d-thiogalactoside, IPTG)購(gòu)自Sigma 公司(美國(guó)),其他化學(xué)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
PCR儀,美國(guó)Biorad T100 Thermal Cycler;微量離心機(jī),美國(guó)Thermo Heraeus Pico 17;超速冷凍離心機(jī),美國(guó)Backman OptimeTM LE-80K;凝膠成像系統(tǒng),中國(guó)CLiXN GenoSens1580;細(xì)胞破碎儀器,美國(guó)Thermo French Cell Press;酶標(biāo)儀,美國(guó)Thermo Multiskan Spectrum。
1.3.1XynAH297F定點(diǎn)突變
根據(jù)嗜熱脂肪芽孢桿菌木聚糖酶XynA的核苷酸序列設(shè)計(jì)引物如下:
TC(下劃線為BamHI酶切位點(diǎn));
CCAA(下劃線為XhoI酶切位點(diǎn));
CTTGACCAT(下劃線為Phe 297位點(diǎn));
GGCAATTCC(下劃線為Phe 297位點(diǎn));
利用重疊延伸PCR法對(duì)xynA的H297位點(diǎn)突變?yōu)镕。第一步:以構(gòu)建好的pGEX-6p-xynA質(zhì)粒為模板,以xynA-F/xynAH297F-R 和xynAH297F-F/xynA-R為引物分別擴(kuò)增上游片段和下游片段。反應(yīng)體系為50 μL:5×FastPfubuffer 10 μL,正向引物、反向引物(10 mmol/L)各1 μL,模板DNA 1 μL,F(xiàn)astPfuDNA聚合酶(2.5 U/μL)1 μL,dNTP(2.5 mmol/L)2 μL,補(bǔ)充ddH2O至50 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性3 min,95 ℃變性30 s,52 ℃退火30 s,72 ℃延伸25 s,30個(gè)循環(huán)。第二步:取上游片段和下游片段混合為模板,以xynA-F/xynA-R為引物進(jìn)行全長(zhǎng)擴(kuò)增,獲得含有酶切位點(diǎn)和突變位點(diǎn)的xynAH297F基因,反應(yīng)體系同第一步。反應(yīng)條件為95 ℃預(yù)變性3 min,95 ℃變性30 s,52 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán)。以1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR擴(kuò)增結(jié)果,凝膠回收試劑盒回收DNA片段。
1.3.2重組質(zhì)粒pGEX-6p-xynAH297F的構(gòu)建
用BamH I和XhoI對(duì)回收后的PCR產(chǎn)物進(jìn)行雙酶切,再回收木聚糖酶基因酶切片段,將其與相應(yīng)雙酶切的pGEX-6p-1質(zhì)粒載體在4 ℃下酶連過夜,轉(zhuǎn)化E.coliDH5α感受態(tài)細(xì)胞,構(gòu)建pGEX-6p-xynAH297F重組質(zhì)粒,挑選陽性克隆進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。
1.3.3XynA及XynAH297F在E.coliBL21(DE3)中的表達(dá)與純化
將構(gòu)建正確的重組質(zhì)粒pGEX-6p-xynA、pGEX-6p-xynAH297F分別轉(zhuǎn)化至E.coliBL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞中。挑選含有重組質(zhì)粒的E.coliBL21(DE3)分別液體培養(yǎng)過夜,以1%的接種量分別轉(zhuǎn)接至含100 μg/mL氨芐青霉素2 L的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃搖床培養(yǎng)A600達(dá)到0.6~0.7后,加入IPTG至終濃度為0.1 mmol/L,18 ℃,200 r/min誘導(dǎo)培養(yǎng)12 h。離心收集菌體,PBS懸浮后高壓破碎儀破細(xì)胞,12 000 r/min,4 ℃離心30 min,收集細(xì)胞破碎液上清,按照谷胱甘肽S轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)融合蛋白純化試劑盒說明書純化重組木聚糖酶XynA及突變體XynAH297F。根據(jù)采用5%的濃縮膠和12%的分離膠進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳 (sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)檢測(cè)分析,并根據(jù)蛋白定量檢測(cè)試劑盒說明書測(cè)定蛋白濃度。
1.3.4XynA及XynAH297F酶學(xué)性質(zhì)研究
采用Somogyi-Nelson 法測(cè)定木聚糖酶活性。取10 μL適量的木聚糖酶加入90 μL緩沖液配制的1%樺木木聚糖底物,一定溫度下反應(yīng)10 min,再加入100 μL 3,5-二硝基水楊酸(DNS)沸水浴10 min,冷卻后加ddH2O定容至1 mL,再取200 μL反應(yīng)液至96孔板中,酶標(biāo)儀測(cè)定A540讀數(shù)。
酶活單位定義(Unit): 在上述條件下,每分鐘產(chǎn)生1 μmol木糖所需要的酶量為一個(gè)酶活力單位。
1.3.4.1XynA及XynAH297F最適pH及pH穩(wěn)定性研究
最適pH:配制不同pH值的濃度為1%底物溶液(pH 4~8緩沖液為0.2 mol/LNa2HPO4/0.1 mol/L檸檬酸緩沖液;pH 8.5~10緩沖液為50 mmol/L Gly-NaOH緩沖液),按照上述酶活測(cè)定方法,以最高酶活為100%,計(jì)算不同pH條件下的相對(duì)酶活。
pH穩(wěn)定性:將木聚糖酶分別置于不同pH緩沖液中,室溫放置20 h后,以最適pH緩沖液配制底物測(cè)定活性,以未處理的木聚糖酶酶活為100%,計(jì)算相對(duì)酶活。
1.3.4.2XynA及XynAH297FP的最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性研究
最適反應(yīng)溫度:以最適pH緩沖液配制底物,按照標(biāo)準(zhǔn)方法測(cè)定不同溫度下的酶活,以最高酶活為100%,計(jì)算相對(duì)酶活。
熱穩(wěn)定性:將木聚糖酶分別置于60~80 ℃處理20 min,然后在最適條件下測(cè)定酶活,以未處理的木聚糖酶酶活為100%,計(jì)算相對(duì)酶活。
1.3.5XynA及XynAH297F動(dòng)力學(xué)研究
以最適pH緩沖液配制一系列不同濃度梯度的木聚糖底物,酶促反應(yīng)結(jié)束后,根據(jù)Lineweaver-Burk 法,通過雙倒數(shù)作圖,求出米氏常數(shù)Km和最大速率Vmax,而催化常數(shù)Kcat=Vmax/[E],[E]為酶濃度。
本實(shí)驗(yàn)采用重疊延伸PCR進(jìn)行xynA的定點(diǎn)突變H297F。如圖1所示,以xynA-F/xynAH297F-R和xynAH297F-F/xynA-R為引物分別擴(kuò)增上游片段891 bp
M-DNA marker;1-引物xynAH297F-F/ xynA-R擴(kuò)增產(chǎn)物;2-xynAH297F-F/xynA-R擴(kuò)增產(chǎn)物;3-xynA-F/xynA-R擴(kuò)增產(chǎn)物圖1 重疊延伸PCR擴(kuò)增xynAH297F基因Fig.1 XynAH297F gene amplified by overlapping extension PCR
和下游片段105 bp,第二輪PCR以xynA-F/xynA-R為引物進(jìn)行全長(zhǎng)擴(kuò)增所得片段大小為996 bp,與預(yù)期一致。構(gòu)建重組質(zhì)粒并測(cè)序驗(yàn)證,將成功的突變的質(zhì)粒轉(zhuǎn)入E.coliBL21(DE3)中進(jìn)行表達(dá)與純化。
將帶有重組質(zhì)粒pGEX-6p-xynA、 pGEX-6p-xynAH297F的E.coliBL21(DE3)分別誘導(dǎo)表達(dá),破細(xì)胞后利用SDS-PAGE檢測(cè)蛋白表達(dá)情況。如圖2-A所示,帶有空載質(zhì)粒菌株誘導(dǎo)后只表達(dá)了26 ku的GST標(biāo)簽,且主要存在上清中;含有重組的pGEX-6p-xynA和pGEX-6p-xynAH297F菌株均表達(dá)了64 ku的融合蛋白,雖然主要存在沉淀中,但是上清中也存在可溶的融合蛋白。經(jīng)過親和層析、3C蛋白酶切除GST標(biāo)簽后,最終獲得高純度的木聚糖酶。經(jīng)SDS-PAGE分析,純化后的蛋白條帶單一,且大小約為38 ku,與預(yù)期一致,說明所得蛋白即為目標(biāo)蛋白。
A-XynA和XynAH297P在BL21(DE3)中的表達(dá)分析。M-蛋白質(zhì)marker;1-IPTG誘導(dǎo)的含pGEX-6p-1的E. coliBL21(DE3)表達(dá)上清;2-IPTG誘導(dǎo)的含pGEX-6p-1的E. coli BL21(DE3)表達(dá)沉淀;3-IPTG誘導(dǎo)的含pGEX-6p-xynA的E. coliBL21(DE3)表達(dá)上清;4-IPTG誘導(dǎo)的含pGEX-6p-xynA的E. coliBL21(DE3)表達(dá)沉淀;5-IPTG誘導(dǎo)的含pGEX-6p-xynAH297F的E. coli BL21(DE3)表達(dá)上清H297P上清;6-IPTG誘導(dǎo)的含pGEX-6p-xynAH297F的E. coli BL21(DE3)表達(dá)上清H297P沉淀。B-M-蛋白質(zhì)marker;1-純化后的XynA;2-純化后的XynAH297P圖2 XynA和XynAH297P的表達(dá)與純化SDS-PAGE分析Fig.2 SDS-PAGE analysis of XynA and XynAH297P
2.3.1最適反應(yīng)pH和pH的穩(wěn)定性研究
如圖3-A所示,野生型XynA與突變體XynAH297F的最適反應(yīng)pH值均為5.5,且在不同pH緩沖液中相對(duì)活性幾乎相同。由圖3-B可知,野生型XynA在pH 4~10的緩沖液中室溫處理20h后殘余活性均在90%左右;相同處理?xiàng)l件下,XynAH297F殘余活性均在95%左右。XynA與突變體XynAH297F均具有較好的pH穩(wěn)定性,且兩者的pH穩(wěn)定性也幾乎相同。說明H297位點(diǎn)對(duì)該酶的最適pH和pH穩(wěn)定性不起關(guān)鍵作用。
A-XynA和XynAH297P的最適反應(yīng)pH測(cè)定; B-XynA和XynAH297P的pH穩(wěn)定性研究圖3 XynA和XynAH297P的最適反應(yīng)pH及pH穩(wěn)定性研究Fig.3 The optimum pH and pH stability of the purified XynAand XynAH297P
2.3.2XynA及XynAH297P最適反應(yīng)溫度及熱穩(wěn)定性研究
測(cè)定不同溫度下XynA和XynAH297F的相對(duì)活性,如圖4-A所示,XynA的最適反應(yīng)溫度為70 ℃;XynAH297F的最適反應(yīng)溫度為75 ℃,與野生型相比提高了5 ℃。分別測(cè)定XynA和XynAH297的熱穩(wěn)定性發(fā)現(xiàn),65 ℃處理20 min后,XynA殘余活性降低至80%左右,而XynAH297活性幾乎不變;80℃處理20 min后,XynA的殘余活性降低至10%左右,而XynAH297仍具有30%左右的殘余活性,說明突變體的熱穩(wěn)定性優(yōu)于野生型。
A-XynA和XynAH297P的最適反應(yīng)溫度;B-XynA和XynAH297P的熱穩(wěn)定性圖4 XynA和XynAH297P的最適反應(yīng)溫度及熱穩(wěn)定性研究Fig.4 The optimum temperature and thermal stability of XynAand XynAH297P
以不同濃度的木聚糖為底物,測(cè)定XynA和XynAH297P的活性,采用雙倒數(shù)作圖法計(jì)算動(dòng)力學(xué)參數(shù)。從表1可以看出,與重組野生型酶相比,突變體XynAH297P的Km增大,說明H297位點(diǎn)突變成F后導(dǎo)致酶對(duì)底物的親和力下降。但突變體Vmax和Kcat均增大了1倍,說明突變后酶促催化速率增大,酶活也提高了1倍。
表1 XynA及XynAH297P的動(dòng)力學(xué)參數(shù)Table 1 Kinetic parameters for XynA and XynAH297P
Swiss-model 服務(wù)器以蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)(http://www.rcsb.org/pdb/home/home.do)中已經(jīng)報(bào)道的GeobacillusstearothermophilusT6(IXT6; PDB code 3mui)木聚糖酶的三維結(jié)構(gòu)為模板,模擬出突變型酶的三維結(jié)構(gòu)模型。從圖5可以看出,Glu44和Asn45是酶與底物結(jié)合的關(guān)鍵殘基,可能與底物木四糖形成氫鍵。H297突變?yōu)镻he后,底物的空間位置有一定改變,可能影響Glu44和Asn45與底物的作用力,使得酶對(duì)底物的親和力下降。另外,如圖5所示,Phe取代His后側(cè)鏈角度向外偏轉(zhuǎn),活性空腔變大,可能有利于產(chǎn)物的釋放,從而增大酶促反應(yīng)速率。同時(shí),Phe的苯環(huán)結(jié)構(gòu)的疏水性大于His的咪唑基團(tuán),有研究表明,引入疏水性氨基酸有利于提高木聚糖酶的熱穩(wěn)定性[13]。李同彪等人對(duì)黑曲霉木聚糖酶XynZF-2進(jìn)行突變引入芳香族氨基酸和其他疏水性氨基酸后都明顯改善了XynZF-2的熱穩(wěn)定性、最適反應(yīng)溫度等[14-15]。
藍(lán)色代表突變前酶蛋白結(jié)合的底物分子木四糖;黃色代表突變后酶蛋白結(jié)合的底物分子;綠色代表his297殘基;紅色代表突變后的Phe殘基圖5 利用Siwss-Model 模擬XynA及XynAH297P的結(jié)構(gòu)圖Fig.5 The molecular simulation of XynA and XynAH297Pby Siwss-Model
本研究利用重疊延伸PCR對(duì)嗜熱脂肪芽孢桿菌木聚糖酶XynA活性中心附近的H297位點(diǎn)突變?yōu)镕。在大腸桿菌中異源表達(dá)并純化相關(guān)蛋白,比較研究野生型木聚糖酶XynA和突變體XynAH297P的酶學(xué)性質(zhì)發(fā)現(xiàn),H297突變?yōu)镕后,酶的最適pH和pH穩(wěn)定性不受影響,但最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性有所提高。F297取代H297后,酶對(duì)底物的親和力下降,但催化反應(yīng)速率有一定程度提高。本結(jié)果為木聚糖酶結(jié)構(gòu)與功能關(guān)系研究提供了材料。
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