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    纖維素酶解法提取劍麻總皂苷工藝研究

    2018-03-30 01:55:41賈桂云顧長瑜
    安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2018年9期
    關(guān)鍵詞:劍麻總皂苷水浴

    賈桂云,顧長瑜,李 云,劉 紅,2*

    (1.海南師范大學(xué)化學(xué)與化工學(xué)院,海南???571127;2.熱帶特色藥食同源植物研究與開發(fā)重點實驗室,海南海口 571127)

    劍麻(AgavesisaianaPerrine),又名菠蘿麻、西紗爾麻、劍麻麻,是劍麻科劍麻屬植物,亞熱帶多年生草本硬質(zhì)纖維作物,原產(chǎn)于墨西哥的龍加丹半島。在我國廣東、廣西、福建、海南有大面積種植,主要用于生產(chǎn)劍麻纖維。劍麻葉片抽取纖維后的液汁中含有甾體骨架成分劍麻皂苷(Tigogenin),甾體皂苷是天然產(chǎn)物中一類重要的化學(xué)成分,有降血糖、祛痰、止咳、抗炎、抗癌等多種生物活性,是半合成四大甾體激素藥物的主要原料之一[1-2]。因此,從植物中提取天然甾體皂苷具有廣闊的前景。目前,劍麻皂苷的提取多采用發(fā)酵方法,破除堅厚的植物細(xì)胞壁,讓依附在纖維素中的劍麻皂苷釋放出來,該方法原料、試劑消耗較多,且產(chǎn)生大量的酸堿廢水。近年來,超聲輔助提取劍麻總皂苷的工藝和超臨界CO2萃取劍麻中總皂苷的工藝也有報道[4-7]。采用纖維素酶解法-乙醇浸提法[8],即用纖維素酶分解劍麻植物的堅硬細(xì)胞壁,用乙醇提取劍麻總皂苷,探討最佳提取工藝,為纖維素酶解法提取劍麻的皂苷類化學(xué)成分提供參考。

    1 材料與方法

    1.1儀器ZN-04A小型粉碎機(北京興時利和科技發(fā)展有限公司);TP-214電子天平(丹佛儀器(北京)有限公司);RE-52AA 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);i5紫外可見分光光度計(濟南海能儀器股份有限公司);SB-5200DTD超聲波清洗機(寧波新芝生物科技有限公司);HH-1數(shù)顯恒溫水浴箱(金壇市金南儀器制造有限公司);數(shù)顯酸度計(上海佑科儀器儀表有限公司)。

    1.2材料與試劑劍麻采摘于海南師范大學(xué)桂林洋校區(qū)。洗凈、陰干后放在干燥箱內(nèi)37 ℃干燥后粉碎。

    纖維素酶[安倍醫(yī)療器械貿(mào)易(上海)有限公司(MP Biomedicals)];熊果酸[阿拉丁試劑(上海)有限公司];乙醇、甲醇、冰乙酸、香草醛、高氯酸等均為國產(chǎn)分析純;蒸餾水(實驗室自制)。

    1.3方法

    1.3.1劍麻總皂苷的提取。準(zhǔn)確稱取劍麻的樣品粉末0.500 0 g至50 mL的圓底燒瓶中,按一定的固液比加入蒸餾水,調(diào)節(jié)pH,加入纖維素酶,使酶的質(zhì)量濃度達到控制值。將圓底燒瓶置于水浴鍋中,在一定溫度下酶解反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后,移入80 ℃的恒溫水浴鍋中滅活30 min。離心分離酶解液,上層清液留用,下層的沉淀物用15 mL 95%乙醇在70 ℃恒溫水浴回流浸提60 min后抽濾,濾液與酶解液合并,減壓蒸干。移至100 mL容量瓶用甲醇溶解定容,即為提取物的樣品溶液。

    1.3.2纖維素酶解法提取單因素試驗。影響纖維素酶解反應(yīng)的主要因素包括酶質(zhì)量濃度、酶解溫度、pH、酶解時間及固液比等因素,針對其中一個因素,在保持其他因素相同的條件下進行單因素試驗,考察單因素對劍麻總皂苷提取率的影響。

    1.3.3纖維素酶解法提取正交試驗。選取單因素試驗中對總皂苷提取率影響較大的因素進行正交試驗,按照因素水平表設(shè)計,考察各因素對劍麻總皂苷的影響程度,優(yōu)選最佳工藝條件。

    1.3.4工作曲線的繪制。準(zhǔn)確稱取熊果酸對照品0.010 0 g于50 mL容量瓶中,加無水乙醇溶解并定容至刻度(200 μg/mL),搖勻。精確吸取0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL溶液分別置于7支磨口的具塞試管中,水浴揮干無水乙醇后加入新配制的5%香草醛-冰乙酸溶液0.2 mL和高氯酸0.8 mL,塞緊試管磨口塞,混勻。在70 ℃水浴中加熱15 min使顯色反應(yīng)完全,冰水冷卻10 min。加冰乙酸4 mL搖勻,隨行試劑作空白。在545 nm測定吸光度[8]。熊果酸對照品加入量為x坐標(biāo),吸光度為y坐標(biāo),線性回歸,得線性回歸方程y=0.002 19x+0.000 91,R=0.998 16,線性范圍0~240 μg。

    1.3.5劍麻總皂苷含量的測定。準(zhǔn)確吸取提取物的樣品溶液0.2 mL于具塞磨口試管中,按“1.3.4”中顯色方法操作,在545 nm測樣品吸光度,計算提取率。

    式中,C為樣品溶液中總皂苷濃度(mg/mL),V為樣品溶液的總體積(mL);W為劍麻粉末的質(zhì)量(mg)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1單因素試驗

    2.1.1酶的質(zhì)量濃度對提取率的影響。準(zhǔn)確稱取0.500 0 g劍麻葉粉末于50 mL圓底燒瓶中,在固液比為1∶20,pH 5.0,水浴酶解溫度為50 ℃,酶解時間為100 min,纖維素酶質(zhì)量濃度分別為0.05、0.10、0.15、0.20、0.25 mg/mL,酶的質(zhì)量濃度對劍麻總皂苷提取率的影響見圖1。

    圖1 酶的質(zhì)量濃度對提取率的影響Fig.1 Effects of concentration of cellulase on extraction rate

    當(dāng)纖維素酶質(zhì)量濃度在0.15~0.20 mg/mL,總皂苷的提取率達到最大值,酶濃度超過0.20 mg/mL劍麻總皂苷的提取率反而呈現(xiàn)下降趨勢,原因可能是體系中過量的酶沒有機會與底物反應(yīng),反而影響總皂苷提取。

    2.1.2酶解溫度對提取率的影響。準(zhǔn)確稱取0.500 0 g劍麻粉末于50 mL圓底燒瓶中,在固液比為1∶20,pH 5.0,酶質(zhì)量濃度為0.15 mg/mL,酶解時間為100 min,分別在40、45、50、55、60 ℃恒溫水浴酶解,酶解溫度對劍麻總皂苷提取率的影響見圖2。

    圖2 酶解溫度對提取率的影響Fig.2 Effects of temperature of enzymatic hydrolysis on extraction rate

    隨酶解溫度的提高,劍麻皂苷提取率增加,50 ℃時達到最高,繼續(xù)提高酶解溫度,提取率下降。其原因是溫度超過50 ℃纖維素酶活性下降,細(xì)胞壁沒有被完全分解,影響劍麻皂苷的浸出。最適宜的酶解溫度是50 ℃。

    2.1.3溶液pH對提取率的影響。準(zhǔn)確稱取0.500 0 g劍麻葉粉末于50 mL圓底燒瓶中,在固液比1∶20,水浴酶解溫度為50 ℃,纖維素酶質(zhì)量濃度為0.15 mg/mL,水浴酶解時間為100 min,調(diào)節(jié)溶液pH分別為4.0、4.5、5.0、5.5、6.0,酶解pH對劍麻總皂苷提取率的影響見圖3。

    圖3 提取液pH對提取率的影響Fig.3 Effects of pH on extraction rate

    試驗結(jié)果顯示,溶液的pH對總皂苷提取率影響很大。當(dāng)溶液pH在4.0~5.0時,總皂苷的提取率隨著pH的升高而增加,在溶液pH為5.0時,總皂苷的提取率達到最大值。繼續(xù)增加溶液的pH,總皂苷的提取率開始下降??梢娮罴讶芤簆H為5.0。

    2.1.4酶解時間對提取率的影響。準(zhǔn)確稱取0.500 0 g劍麻粉末于50 mL圓底燒瓶中,在固液比為1∶20,pH 5.0,纖維素酶質(zhì)量濃度為0.15 mg/mL,50 ℃恒溫水浴酶解,酶解時間分別為30、60、90、120、150 min,纖維素酶酶解反應(yīng)時間對劍麻總皂苷提取率的影響見圖4。

    圖4 酶解時間對提取率的影響 Fig.4 Effects of time of enzymatic hydrolysis on extraction rate

    隨著酶解時間的增加,劍麻總皂苷提取率在增加,超過120 min時,提取率下降,這與黃山等[9]酶解法提取絞股藍總皂苷的結(jié)果吻合。可能是隨著酶解時間的增加,酶解液糊化,影響劍麻總皂苷提取。最佳酶解時間為90~120 min。

    2.1.5固液比對提取率的影響。準(zhǔn)確稱取0.500 0 g劍麻葉粉末于50 mL圓底燒瓶中,在溶液的pH為5.0,水浴酶解溫度為50 ℃,纖維素酶質(zhì)量濃度為0.15 mg/mL,水浴酶解時間為100 min,固液比分別為1∶18、1∶20、1∶22、1∶24、1∶26,按“1.3.2”項下方法制備樣品溶液,固液比對劍麻總皂苷提取率的影響見圖5。

    圖5 固液比對提取率的影響Fig.5 Effects of solid-liquid ratio on extraction rate

    固液比在1∶18~1∶26對總皂苷提取率的影響較為平緩,考慮節(jié)省試劑及減少后續(xù)濃縮的能耗、工作量等因素,選取固液比1∶20。

    2.2正交試驗優(yōu)化提取工藝為考察各個因素對總皂苷提取率的交互作用,選取單因素試驗中對總皂苷提取率影響較大的酶質(zhì)量濃度、酶解溫度、酶解時間、酶解pH 4個因素進行考察,每個因素設(shè)3個水平,采用L9(34)正交設(shè)計表,正交試驗的因素水平見表1,正交試驗的結(jié)果見表2。

    表1 正交試驗因素與水平

    表2 正交試驗結(jié)果

    正交試驗結(jié)果顯示,在選定的因素水平中,影響程度依次為:D>B>C>A,即酶解液pH>酶解溫度 >酶解時間>酶質(zhì)量濃度,極差分析中最佳提取工藝是A2B1C1D3,即酶質(zhì)量濃度為0.18 mg/mL,酶解溫度為45 ℃,pH 5.5,酶解時間為100 min,料液比1∶20。該條件在正交試驗中沒有出現(xiàn),需驗證。

    方差分析表明,酶解液的pH、酶解溫度對劍麻總皂苷的提取率影響極顯著,酶解時間影響顯著,酶質(zhì)量濃度在選定的水平范圍內(nèi)影響不顯著。

    2.3最佳工藝條件下驗證試驗為確定最佳提取工藝的穩(wěn)定性,在A2B1C1D3下平行做3次驗證試驗,提取率分別為19.21%、18.95%和19.45%,平均提取率19.20%。相對標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD1.8%。

    2.4加樣回收率精密度為進一步驗證方法的精密度,進行加標(biāo)回收試驗。分別吸取10、20、30、40、50 μL已知濃度的樣品溶液,再加入0.1 mL熊果酸標(biāo)準(zhǔn)溶液,按標(biāo)準(zhǔn)曲線項下的方法測定其吸光度,并計算總皂苷濃度,以計算其回收率和回收率的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差。結(jié)果見表3。

    表3 加樣回收率精密度

    由表3可見,加標(biāo)平均回收率為91.1%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為1.52%,因此可保證用該方法處理樣品的誤差小,試驗可靠性高。

    3 討論

    植物中的總皂苷等分布在植物的細(xì)胞壁內(nèi),細(xì)胞壁主要由纖維素構(gòu)成。利用酶解反應(yīng)的高效、專一性,選擇纖維素酶解反應(yīng)破壞細(xì)胞壁,以便提取皂苷類成分。劍麻總皂苷中含有多種甾體皂苷[10-11],甾體皂苷極性大,因此,破壁后的酶解物用95%乙醇提取。提取物總皂苷測定時利用甾體皂苷在無水條件下,遇某些酸類可產(chǎn)生與三萜皂苷相類似的顏色反應(yīng),故用五環(huán)三萜類的熊果酸標(biāo)準(zhǔn)品作標(biāo)準(zhǔn)對照品,選用顯色靈敏的香草醛-高氯酸反應(yīng),進行顯色。因為要求無水條件下,所以選擇極性比無水乙醇大的甲醇定容。

    選取對酶解反應(yīng)影響較大的酶解時間、酶解溫度、酶的質(zhì)量濃度、固液比、溶液的pH進行單因素試驗,結(jié)果顯示,除固液比外,其他4個因素對提取率的影響較大,固液比的影響較為平緩,因此,選固液比1∶20。正交試驗極差分析及方差分析結(jié)果顯示,對劍麻總皂苷提取率的影響順序為酶解液pH>酶解溫度 >酶解時間>酶質(zhì)量濃度,酶解液的pH、酶解溫度對劍麻總皂苷的提取率影響極顯著,酶解時間影響顯著,酶質(zhì)量濃度在選定的水平范圍內(nèi)影響不顯著。這與文獻[12]的研究相吻合。

    在優(yōu)選出的最佳提取工藝下A2B1C1D3,即酶質(zhì)量濃度為0.18 mg/mL,酶解溫度為45 ℃,pH 5.5,酶解時間為100 min,料液比1∶20,驗證試驗劍麻總皂苷的平均提取率為19.20%。加標(biāo)回收率顯示,平均回收率在91.1%,RSD為1.52%,說明該方法比較準(zhǔn)確,可用于皂苷類成分提取的檢測。

    纖維素酶解法提取劍麻總皂苷,綠色環(huán)保,可為纖維素酶解法提取劍麻總皂苷的工業(yè)化提供參考。

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