唐 耀 陳小麗
(福州市動物園管理處,福州,350012)
福州動物園2008年由大夢山麓搬遷至新園,靈長類動物由原來的11種增加至目前的15種,動物的數(shù)量明顯上升,新園的飼養(yǎng)環(huán)境也有所改變。但近年來靈長類動物的寄生蟲感染情況多發(fā),且成為困擾野生動物健康的一大因素。本次試驗,通過普查確定福州動物園靈長類動物寄生蟲的感染情況,對獸醫(yī)今后的工作具有良好的指導(dǎo)意義。
1.1.1 福州動物園靈長類動物樣本
2011年9月~2014年8月,從福州動物園采集的各種靈長類動物糞便樣本共182份。采集樣本為福州動物園圈養(yǎng)的各種野生靈長類動物。黑猩猩(Pantroglodytes)、白頰長臂猿(Nomascusleucogenys)、黑葉猴(Trachypithecusfrancoisi)、赤猴(Erythrocebuspatas)、東非狒狒(Papioanubis)、埃及狒狒(Papiohamadryas)、川金絲猴(Rhinopithecusroxellana)、松鼠猴(Saimirisciureus)、獼猴(Macacamulatta)、山魈(Mandrillussphinx)、黑帽懸猴(Cebusapella)、熊猴(Macacaassamensis)、環(huán)尾狐猴(Lemurcatta)、懶猴(Loristardigradus)、婆羅洲猩猩(Pongopygmmaeus)等(表1)。
1.1.2 糞便樣本
采集動物排出的新鮮糞便,按前、中、后不同部位約10 g左右,置于干凈的自封袋中,填好標簽記錄。每天采集糞便樣本10份左右,保證樣本新鮮。
1.2.1 麥克馬斯特法(漂浮法)
麥克馬斯特法[1]:稱取2 g被檢糞便于一小燒杯中,加入10 mL飽和鹽水,攪勻,再加入50 mL飽和鹽水混勻。用80目銅篩網(wǎng)過濾。將濾液混勻后,用吸管將糞液加入麥氏計數(shù)板的2個計數(shù)室內(nèi),直至糞液充滿計數(shù)室,置計數(shù)板于顯微鏡載物臺上,靜置1~2 min后,按圖 1中虛線順序,對該2個室內(nèi)的蟲卵或卵囊計數(shù)。按以下公式求出其被檢糞便中的蟲卵
EPG或卵囊OPG值(每克糞便中的蟲卵數(shù)或卵囊數(shù))。
EPG=2個計數(shù)室內(nèi)的蟲卵或卵囊總數(shù)×150
圖1 在顯微鏡下,蟲卵或卵囊計數(shù)順序(虛線)Fig.1 Under the microscope,count-sequential forthe number of eggs or sac(dashed line)
1.2.2 幼蟲培養(yǎng)法
幼蟲培養(yǎng)法[2]:本試驗選取了東非狒狒、白頰長臂猿、川金絲猴和黑帽懸猴4種動物糞便進行培養(yǎng)。具體方法為:試管內(nèi)加入蒸餾水2 mL,將濾紙條(寬度略大于試管)縱折后攤平,挑取糞便約0.5 g涂在濾紙條中段,將涂有糞樣的濾紙條直插入試管,使與水接觸,但不能沒及有糞部分;放入28℃溫箱中培養(yǎng)5~6 d或31℃溫箱中培養(yǎng)4 d后,取出試管,沿管壁加入45℃溫水,使淹沒涂有糞樣的濾紙部分,1 h后,取出濾紙棄去,再靜置1 h,棄去上清液,吸取沉渣部分鏡檢。
1.2.3 蟲卵及幼蟲鑒定方法
對照圖示參照醫(yī)學寄生蟲圖鑒進行鑒定[3]。
福州動物園飼養(yǎng)的靈長類動物15種108頭(只)中,寄生蟲的感染率分別為赤猴鞭蟲40%;赤猴食道口屬線蟲60%;長臂猿鞭蟲33%;金絲猴鞭蟲25%;山魈食道口屬線蟲100%;豚尾猴(Macacanemestrina)鞭蟲100%;黑葉猴鞭蟲66.7%;另外環(huán)尾狐猴、綠狒狒、黑帽懸猴以及獼猴[4]屬于群養(yǎng)動物,無法獲得獨立糞便,不計算感染率。靈長類動物感染的寄生蟲種中,鞭蟲的感染率為60%(9/15)(表1)。
表1 福州動物園靈長類動物消化道寄生蟲感染情況
Tab.1 Primates infected digestive tract parasites in the Fuzhou Zoo
續(xù)表1
注:*為人畜共患寄生蟲
Note:*For parasitic zoonoses
川金絲猴體內(nèi)檢出的鞭蟲卵[3,5-6](圖2-A):蟲卵紡錘形,大小24.757 ~55.833 μm,卵殼較厚而光滑,兩端呈瓶口狀,各具一透明栓,栓高4.978 μm,內(nèi)含卵細胞。東非狒狒體內(nèi)的類圓線蟲卵(圖2-B):蟲卵橢圓形,淺灰色,大小29.525 ~64.092 μm,內(nèi)含幼蟲。東非狒狒體內(nèi)的纖毛蟲卵[3,7](圖2-C):蟲卵呈亞圓形,直徑大小56.554 μm,外被兩層囊膜,內(nèi)含1個蟲體,發(fā)育過程中有滋養(yǎng)體和包囊兩種形態(tài)。埃及狒狒體內(nèi)的鞭蟲卵(圖2-D):蟲卵紡錘形,褐色,大小27.575 ~58.762 μm,卵殼較厚而光滑,兩端呈瓶口狀,各具一透明栓,栓高5.723 μm,內(nèi)含卵細胞。長臂猿體內(nèi)的鞭蟲卵(圖2-E):蟲卵紡錘形,褐色,大小28.015 ~59.152 μm,卵殼較厚而光滑,兩端呈瓶口狀,各具一透明栓,栓高4.994 μm,內(nèi)含卵細胞。赤猴體內(nèi)檢出的鞭蟲卵(圖2-F):蟲卵紡錘形,褐色,大小25.220 ~53.933 μm,卵殼較厚而光滑,兩端呈瓶口狀,各具一透明栓,栓高6.353 μm,內(nèi)含卵細胞。赤猴體內(nèi)的食道口屬線蟲(圖2-G):蟲卵長橢圓形,大小38.477 ~99.561 μm。環(huán)尾狐猴體內(nèi)的類圓線蟲卵[3,8](圖2-H):蟲卵橢圓形,大小30.217 ~50.439 μm,內(nèi)含一折刀狀幼蟲。獼猴體內(nèi)的鞭蟲卵(圖2-I):蟲卵紡錘形,大小28.002 ~60.352 μm,卵殼較厚而光滑,兩端呈瓶口狀,各具一透明栓,栓高5.710 μm,內(nèi)含卵細胞。獼猴體內(nèi)的纖毛蟲卵(圖2-J):蟲卵呈亞圓形,淡紫色,大小57.478 ~58.839 μm。山魈體內(nèi)的食道口屬線蟲卵[3](圖2-K):蟲卵呈橢圓形,大小36.265 ~89.655 μm。黑帽懸猴體內(nèi)的鞭蟲卵[3](圖2-L):蟲卵紡錘形,大小22.333 ~56.789 μm,卵殼較厚而光滑,兩端呈瓶口狀,各具一透明栓,栓高5.461 μm,內(nèi)含卵細胞。黑帽懸猴體內(nèi)的鉤蟲卵(圖2-M):蟲卵橢圓形,大小42.578 ~76.649 μm。鉤蟲卵大小一般為56~78 μm×36~40 μm,和受精蛔蟲卵相近或略長,短橢圓形,兩端鈍圓或一端稍扁平,卵殼薄,無色透明,新鮮卵內(nèi)含2~8個灰色顆粒細胞。豚尾猴鞭蟲卵(圖2-N),蟲卵紡錘形,29.695 ~62.962 μm。黑葉猴鞭蟲卵(圖2-O),蟲卵紡錘形,32.956 ~57.319 μm。
圖2 靈長類動物腸道寄生蟲蟲卵Fig.2 Gastrointestinal parasite eggs of primate animals 注:A 川金絲猴鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Rhinopithecus roxellana,F(xiàn)loating method(400×)B 東非狒狒類圓線蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Strongyloides in Papio anubis,F(xiàn)loating method(400×)C 東非狒狒纖毛蟲卵,沉淀法(400×)Eggs of Balantidium coli in Papio anubis,precipitation(400×)D 埃及狒狒鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Papio hamadryas,F(xiàn)loating method(400×)E 長臂猿鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Nomascus leucogenys,F(xiàn)loating method(400×)F 赤猴鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Erythrocebus patas,F(xiàn)loating method(400×)G 赤猴食道口屬線蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Oesophagostomum spp.in Erythrocebus patas,F(xiàn)loating method(400×)H 環(huán)尾狐猴類圓線蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Strongyloides in Lemur catta,F(xiàn)loating method(400×)I 獼猴鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Macaca mulatta,F(xiàn)loating method(400×)J 獼猴纖毛蟲卵,沉淀法(400×)Eggs of Balantidium coli in Macaca mulatta,precipitation(400×)K 山魈食道口屬線蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Oesophagostomum spp.in Mandrillus sphinx,F(xiàn)loating method(400×)L 黑帽懸猴鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Cebus apella,F(xiàn)loating method(400×)M 黑帽懸猴鉤蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Hookworm in Cebus apella,F(xiàn)loating method(400×)N 豚尾猴鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Macaca nemestrina,F(xiàn)loating method(400×)O 黑葉猴鞭蟲卵,漂浮法(400×)Eggs of Trichuris trichiura in Trachypithecus francoisi,F(xiàn)loating method(400×)
運用幼蟲培養(yǎng)方法,獲得2種靈長類動物幼蟲,分別是東非狒狒類圓線蟲幼蟲和黑帽懸猴鉤蟲幼蟲,具體如下。
東非狒狒類圓線蟲幼蟲[3-4](圖3-c):本蟲的生活史為世代交替,寄生于動物小腸內(nèi)的雌蟲營孤雌生殖。此蟲蟲卵隨動物糞便排出體外,在外界孵出第1期幼蟲,稱為桿蟲型或桿狀蚴,這種幼蟲食道短,有2個膨大部。直接發(fā)育為具有感染性的第3期幼蟲,稱為絲蟲型幼蟲或絲狀蚴,這種幼蟲的食道長,呈柱狀,無膨大部。
黑帽懸猴鉤蟲幼蟲[3-4](圖3-d):蟲體呈淡黃色,桿狀,前端略圓,微端細尖。
c 東非狒狒類圓線蟲幼蟲(40×)c Larvae of Papio anubis Strongyloides(40×)
d 黑帽懸猴鉤蟲桿狀幼蟲(40×)d Larvae of Cebus apella Hookworm(40×)
感染強度(EPG)所列的數(shù)據(jù)為同種動物單次最高的紀錄,分別從春秋兩季中選取。從表2可以看出,靈長類動物春秋兩季的寄生蟲感染強度差別不大,以環(huán)尾狐猴的感染強度最高,達18 750個/g,環(huán)尾狐猴屬于群體飼養(yǎng),采取3~4個點的糞便進行檢查,可能其某個體當中EPG還要更高。以金絲猴(八妹)18 300個/g次之。其他靈長類動物寄生蟲感染強度見表2。
表2 福州動物園靈長類動物消化道寄生蟲感染強度
Tab.2 Primates infected digestive tract parasites intensity in the Fuzhou zoo
注:EPG1表示秋季EPG;EPG2表示春季EPG
Note:EPG1 represents fall EPG;EPG2 represents spring EPG
運用麥克馬斯特法,獲得感染寄生蟲動物驅(qū)蟲前后感染強度,選取EPG較高的野生動物為樣本,選用高效、低毒、方便的驅(qū)蟲藥進行驅(qū)蟲試驗,藥物選擇甲苯咪唑和丙硫苯咪唑,按照丙硫苯咪唑[5-7]8~10 mg/kg;甲苯咪唑[5-6]按5 mg/kg計算口服??诜?qū)蟲藥后15 d,采集動物新鮮糞便再次運用麥克馬斯特法進行復(fù)檢。運用甲苯咪唑和丙硫苯咪唑驅(qū)蟲,試驗動物中,蟲卵轉(zhuǎn)陰率可達100%(表3)。
表3 靈長類動物驅(qū)蟲效果對比觀察
Tab.3 Primates insect repellent effect
Lim等[9]對馬來西亞動物園的靈長類、有蹄類、貓科動物的197份糞便樣本進行調(diào)查,結(jié)果顯示寄生蟲的感染率分別為54.5%、45.7%、89.3%,其中靈長類主要感染結(jié)腸小袋纖毛蟲、隱孢子蟲、鉤蟲。本次調(diào)查中,福州動物園15種靈長類動物,有8種動物感染鞭蟲,感染率達53.3%;2種動物感染類圓線蟲[10];2種動物感染小袋纖毛蟲;2種動物感染食道口屬線蟲;其中山魈感染的鉤蟲在靈長類動物極為少見,且對人類危害極大,需引起同行的重視。另外此次運用幼蟲培養(yǎng)法,首次培養(yǎng)出東非狒狒類圓線蟲及山魈鉤蟲桿狀幼蟲,對獸醫(yī)同行具有重大的指導(dǎo)意義。
感染寄生蟲的野生動物中,環(huán)尾狐猴類圓線蟲卵EPG達18 750個/g;其次是川金絲猴的鞭蟲卵EPG達18 300個/g。靈長類動物高感染率及感染強度跟我們長期的飼養(yǎng)環(huán)境相關(guān),福州動物園靈長類動物的飼養(yǎng)方式主要為土地與室內(nèi)水泥地兩種相結(jié)合。室外土地均設(shè)置一些豐容項目或者灌木喬木相結(jié)合的綠化環(huán)境。且圈養(yǎng)野生動物的籠舍長期飼養(yǎng)同一種動物,導(dǎo)致消毒工作不徹底,從而助長了土源性寄生蟲的長期寄生[3,11-12]。
隨著飼養(yǎng)管理水平的提高,動物園工作者開始著手進行各種動物的豐容工作,特別是食物豐容,飼料通過各種豐容器具、投喂方式、取食習慣,增加了動物在地面的活動時間,這無形當中增加了食物與地面接觸的機會,從而增加了寄生蟲感染機率。
認真貫徹“預(yù)防為主、防治結(jié)合”原則,堅持定期每季度對寄生蟲進行監(jiān)測及驅(qū)蟲工作,加強地面消毒,更換籠舍泥土,改善投喂方式。同時加強新引進動物的檢查隔離,及驅(qū)蟲后的徹底消毒和復(fù)查等工作。
[1] 陳小麗,唐耀,王璜,等.福州動物園草食動物消化道寄生蟲感染情況及驅(qū)蟲效果調(diào)查[J].畜牧與獸醫(yī),2015,47(4):76-79.
[2] 楊光友,張志和.野生動物寄生蟲病學[M].北京:科學出版社,2013:12-15.
[3] 李朝品,高興政.醫(yī)學寄生蟲圖鑒[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2012:39-186.
[4] 林開鉛,李友松,程由注,等.福建省實驗動物體內(nèi)外寄生蟲調(diào)查研究初報[J].福建畜牧獸醫(yī),2003,25(5):2-3.
[5] 呂向輝,陳旭旭,袁英群,等.圈養(yǎng)川金絲猴、獼猴腸道寄生蟲感染及其形態(tài)觀察[J].經(jīng)濟動物學報,2010,14(2):92-95.
[6] 曹杰,何國聲,徐梅倩,等.野生動物園動物寄生蟲調(diào)查[J].野生動物,2005,26(6):46-47.
[7] 汪明.獸醫(yī)寄生蟲學[M].3版.北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2006:79-81.
[8] 蔡娟,喬繼英,張旭,等.陜西圈養(yǎng)珍稀野生動物腸道寄生蟲感染及其形態(tài)觀察[J].動物學雜志,2009,44(3):63-69.
[9] Lim Y A L,Ngui R,Shukri J,et al.Intestianl parasites in various animals at a zoo in Malaysia[J].Veterinary Parasitology,2008,157(1/2):154-159.
[10] 李家誠,曹杰,何國聲,等.野生動物寄生蟲的研究進展[J].中國獸醫(yī)寄生蟲病,2007,15(5):45-48.
[11] 索勛.高級寄生蟲學實驗指導(dǎo) [M].北京:中國農(nóng)業(yè)科學技術(shù)出版社,2005:20-31.
[12] 劉唐美.園養(yǎng)野生動物寄生蟲重復(fù)感染原因的調(diào)查[J].山西科技,2006(3):106-107.