李夢媛,韋榮飛,楊星九,朱瑞敏,高 苒
(中國醫(yī)學科學院醫(yī)學實驗動物研究所,北京 100121)
IL-37是IL-1家族細胞因子,曾經被命名為IL-1F7[1],在人體多種組織、器官中都有表達;在多種人源細胞系中也能夠檢測到IL-37,如THP-1、U937、A431、IMTLH、KG -1、HL60、HPBMC、HPT4和NHDC細胞等[2-4]。小鼠體內并未發(fā)現(xiàn)IL-37同類細胞因子的表達[5],因此小鼠及其來源的細胞系能夠排除背景干擾,作為較理想的對象應用于IL-37的研究。IL-37共有6個外顯子,IL-37b是IL-37五種亞型a~e中序列最長的一個,全長的IL-37b共有218個氨基酸,含有外顯子1、2、4、5、6[6],并在1號外顯子處有caspase-1酶切位點,能夠經其切割轉變?yōu)槌墒煨问降腎L-37b[7],下文中分別將二者命名為FL-IL-37b(full-length-IL37b)與M-IL-37b(mature-IL-37b)。目前,大量研究已證明IL-37b具備生物學活性,能夠作為炎癥抑制因子在多種炎癥性疾病中發(fā)揮功能,同時,這些疾病引起的炎癥反應也能夠上調IL-37b的表達[8-12]。本實驗中構建的IL-37b真核表達載體旨在為人類炎癥性疾病病理機制的研究提供基礎,并為疾病的治療方案提供潛在的新方法。
含有全長IL-37b編碼區(qū)基因的質粒pUBC 2(+)以及載體質粒pEGFP N1由本實驗室制備保存。
T4連接酶、限制性內切酶購自NEB公司;DNA分子量marker、PCR Premix Taq購自TaKaRa公司;RAW 264.7細胞購自中國醫(yī)學科學院基礎醫(yī)學研究所;IL-37抗體購自Abcam公司;HRP標記的山羊抗兔IgG購自中杉金橋生物公司;LPS(Lipopolysaccharide)購自Sigma公司;轉染試劑Lipofectamine 2000、TRIzol試劑購自Invitrogen公司;預染蛋白分子量marker、反轉錄試劑盒、8孔腔室載玻片等購自Thermo公司;質粒提取試劑盒購自Qiagen公司;SYBR green real-time PCR Master Mix購自Toyobo公司;熒光定量PCR儀專用96孔板與封板膜購自ABI公司;實時熒光定量PCR儀為ABI Step One Plus Real-Time PCR System;共聚焦顯微鏡為Leica Microsystems;引物合成與DNA測序服務由英濰捷基(上海)公司提供。
1.2.1 IL-37b基因的克隆與pEGFP N1/IL-37b真核表達載體的構建
全長與成熟形式的IL-37b基因模板來自本實驗室制備的含IL-37b全長編碼區(qū)基因的質粒pUBC/IL-37b。以該質粒為模板,通過PCR技術對FL-IL-37b與M-IL-37b編碼區(qū)基因進行擴增。上、下游引物序列見表1,下劃線為EcoR I和Xho I酶切位點,PCR反應條件為:95℃ 3 min;95℃ 30 s,58℃ 30 s,72℃ 45 s,擴增30個循環(huán);72℃延伸10 min,預計目的基因片段大小分別為654 bp、519 bp。采用瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR產物,并對目的條帶DNA進行回收,用于連接構建真核表達載體。用限制性內切酶EcoR I和Xho I分別對目的基因的PCR產物與表達載體pEGFP N1進行雙酶切,再次進行瓊脂糖凝膠電泳,通過膠回收純化收集酶切產物,于16℃環(huán)境過夜連接,構建表達載體。次日,將連接產物轉化大腸桿菌DH5α,吸取約200 μL轉化液均勻涂布于具有卡那霉素抗性的LB平板上,在37℃培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)過夜。次日,挑選若干菌落進行PCR,通過瓊脂糖凝膠電泳鑒定結果后,將陽性克隆進行DNA測序,鑒定IL-37b基因片段是否正確插入,陽性克隆質粒命名為pEGFP N1/IL37b。
表1 IL-37b基因引物序列
1.2.2 RAW 264.7細胞的培養(yǎng)與表達載體的轉染
將RAW 264.7細胞制成濃度為每毫升5×104個的細胞懸液,分別接種于8孔腔室載玻片與12孔細胞培養(yǎng)板,37℃培養(yǎng)至細胞貼壁。按照轉染試劑Lipofectamine2000說明書步驟將pEGFP N1/IL-37b質粒轉染至8孔腔室載玻片與培養(yǎng)板的細胞中。轉染完畢更換培養(yǎng)基后加入工作濃度為500 ng/mL的LPS,繼續(xù)培養(yǎng)16~18 h。
1.2.3 Western blot檢測轉染后細胞中IL-37b蛋白的表達
收集12孔培養(yǎng)板中的細胞,用RIPA裂解液裂解并提取蛋白。配制濃度為12%~15%的分離膠,將細胞裂解液進行SDS-PAGE電泳。電泳結束后進行轉膜,將蛋白條帶電轉至PVDF膜上。用5%脫脂奶粉溶液室溫封閉1 h,減少非特異性結合后,按1∶1000的比例用IL-37抗體4℃孵育過夜。次日,用0.1%的PBST洗膜,加入按1∶5000比例稀釋的HRP標記的山羊抗兔IgG,室溫作用1 h。洗膜后加顯影液,觀測蛋白條帶。
1.2.4 共聚焦顯微鏡檢測轉染后細胞中IL-37b的表達與定位
棄去8孔腔室載玻片中的培養(yǎng)基,用PBS洗滌細胞后,用4%多聚甲醛溶液固定細胞10 min。洗去多余的固定液,用0.2%的Triton X-100冰上通透細胞10 min。再次洗滌細胞后,用DAPI避光孵育細胞10 min,對細胞核進行染色。染色后用PBS洗滌細胞一次,除去8孔腔室,留下下方有細胞貼附的載玻片,用中性樹脂封片。待中性樹脂晾干后,在Leica共聚焦顯微鏡下觀察細胞中FL-IL-37b與M-IL-37b的表達情況并拍照記錄。
1.2.5 Real-time PCR檢測轉染細胞中IL-37b的抑制作用
收集12孔細胞培養(yǎng)板中的細胞,按照TRIzol說明書與Thermo反轉錄試劑盒說明書的步驟提取細胞總RNA,并對RNA進行反轉錄,獲得cDNA。通過real-time PCR檢測細胞中IL-6的相對表達量。GAPDH與IL-6基因的引物序列如表2所示,real-time PCR的反應體系如表3所示,反應條件為:保溫,95℃ 3 min;95℃ 30 s,58℃ 30 s,72℃ 30 s,擴增40個循環(huán);熔解曲線為60℃~95℃升溫。
表2 Real-time PCR引物序列
表3 Real-time PCR反應體系
應用GraphPad Prism V.5.0軟件對數據進行t檢驗及統(tǒng)計學分析,計量資料以平均數±標準差(x±s)表示,以P< 0.05為差異有顯著性。
M-IL-37b與FL-IL-37b基因的PCR擴增產物的瓊脂糖凝膠電泳結果如圖1所示,在500~750 bp之間有兩條明亮的條帶,一條接近500 bp,為M-IL-37b基因擴增的產物;另一條約在650 bp附近,為FL-IL-37b基因擴增的產物,與預期的目的基因大小相符。重組質粒單克隆菌落PCR產物瓊脂糖凝膠電泳結果顯示,陽性的菌落在與M-IL-37b與FL-IL-37b基因相近的位置各有一條明亮的特異性條帶。對陽性克隆菌落進行DNA測序,結果顯示IL-37b基因片段正確插入pEGFP N1質粒,堿基無突變,可進行下一步的轉染實驗。
注:M:Marker;1:成熟IL-37b;2:全長IL-37b;3:陰性對照;4:成熟IL-37b陽性克隆菌落;5:全長IL-37b陽性克隆菌落。圖1 PCR產物的瓊脂糖凝膠電泳Note.M:Marker.1:M-IL-37b.2:FL-IL-37b.3:Negative control. 4: Positive colony of M-IL-37b. 5: Positive colony of FL-IL-37b.Fig.1 Agarose gel electrophoresis of the PCR products
2.2.1 Western blot檢測轉染后細胞中IL-37b蛋白的表達
如圖2所示,給予LPS刺激后,轉染的RAW 264.7細胞裂解液的Western blot結果顯示,有兩條特異性的蛋白條帶,位置分別在25 kDa與15 kDa附近,分別為FL-IL-37b與M-IL-37b,條帶大小與預期結果相符[8,13]。證實轉染后的RAW 264.7細胞中有M-IL-37b與FL-IL-37b的表達。
圖2 轉染的RAW 264.7細胞中IL-37b的表達Fig.2 Expression of IL-37b protein in the transfected RAW 264.7 cells
2.2.2 共聚焦顯微鏡檢測轉染后細胞中IL-37b的表達與定位
如圖3所示,綠色為融合了綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)的IL-37b,藍色為DAPI染色的細胞核。轉染后,M-IL-37b主要在細胞核中表達,F(xiàn)L-IL-37b則在細胞質、細胞核中都有表達;LPS能夠在一定程度上誘導IL-37b表達上調。
圖3 帶GFP標簽的IL-37b在RAW 264.7細胞中的表達Fig.3 Expression of IL-37b with GFP tag in the transfected RAW 264.7 cells
如圖4所示,real-time PCR結果顯示轉染pEGFP N1/IL-37b質粒的RAW 264.7細胞對于LPS刺激引起的促炎性細胞因子IL-6的表達有抑制作用,與轉染空質粒載體的對照組相比差異顯著,并且FL-IL-37b對于IL-6的抑制作用稍強于M-IL-37b。證實轉染的IL-37b能夠穩(wěn)定表達并在細胞內發(fā)揮炎癥抑制作用。
注:與LPS組比較,*P<0.05,**P<0.01。圖4 LPS刺激轉染的RAW 264.7細胞中IL-6的表達(n=3)Note.Compared with the LPS group,*P<0.05;**P<0.01.Fig.4 Expression of IL-6 mRNA in the transfected RAW 264.7 cells stimulated by LPS
Bulau等[7]研究發(fā)現(xiàn),IL-37b的1號外顯子能夠編碼caspase-1酶切位點,IL-37b前體分子需要caspase-1切割修飾才能成為成熟分子移入細胞核參與轉錄調控;突變導致caspase-1失活后,IL-37b不能進入細胞核,并且對炎癥反應的抑制作用降低。成熟形式的IL-37b進入細胞核后,能夠與Smad 3 (mothers against decapentaplegic homolog 3)結合形成功能性復合物影響基因轉錄,并抑制Toll樣受體(Toll-like receptor, TLR)誘導表達促炎癥性細胞因子,從而抑制樹突狀細胞的活化以及相應的免疫應答反應[8,14]。成熟形式的IL-37b的向細胞外分泌同樣需要caspase-1的作用,但LPS誘導的巨噬細胞分泌IL-37b前體分子的過程不依賴caspase-1[7,14]。用相應的中和抗體中和IL-37b轉基因小鼠體內的IL-37b,并注射LPS誘導感染性休克,小鼠血清中IL-6的表達顯著升高,表明IL-37b的作用受到抗體拮抗,因而證實IL-37b能夠分泌到細胞外發(fā)揮作用,說明其在細胞內外環(huán)境中具有雙向功能[7]。
同為IL-1家族細胞因子的IL-18與其受體IL-18R結合形成的復合物能夠誘導IFN-γ表達。IL-37b與IL-18有很高的同源序列,無論是全長還是成熟形式的IL-37b都能夠與IL-18R的α鏈產生結合,且成熟形式IL-37b的結合能力較全長形式更強。但IL-18與IL-18Rα的結合能力比IL-37b成熟分子更強,因此IL-37b不能拮抗IL-18的功能。IL-18BP(IL-18 binding protein)是IL-18的天然抑制劑,能夠抑制IL-18與IL-18R的結合;成熟形式的IL-37b可以與IL-18BP結合,增強IL-18BP對IL-18信號轉導的抑制,從而抑制IFN-γ的表達[15-16]。近年來也有研究顯示IL-37b發(fā)揮作用需要IL-1家族細胞因子受體IL-1R8參與,IL-1R8可能與IL-18Rα一樣作為IL-37b的受體參與免疫應答。此外,IL-37b還能夠通過抑制STAT1-4、c-Jun、p38 MARK、ERK等信號分子的磷酸化來調控促炎信號的傳導[17]。
本實驗中構建的真核表達載體pEGFP N1/IL-37b含有SV40和CMV啟動子及GFP標簽,能夠穩(wěn)定表達外源基因并有利于檢測基因的轉染效率。同時,GFP有利于檢測全長與成熟形式的IL-37b在不同細胞器中的定位。實驗中采用的RAW 264.7細胞系小鼠來源的單核巨噬細胞,自身并無IL-37表達,能夠排除以人源細胞系作為研究對象產生的背景干擾。LPS在體內與體外都能夠誘導大量促炎性細胞因子的表達[8],同時,在LPS刺激細胞后,IL-37b mRNA和蛋白的表達水平上調,表明LPS能夠使IL-37b mRNA趨于穩(wěn)定[16]。Western blot與共聚焦顯微鏡觀測結果顯示構建的FL-IL-37b與M-IL-37b的真核表達載體轉染后經LPS誘導均可表達FL-IL-37b與M-IL-37b,其中M-IL-37b主要在定位于細胞核中,F(xiàn)L-IL-37b則在細胞質、細胞核中都有表達。Real-time PCR結果顯示轉染后的細胞中LPS誘導的IL-6的表達降低,表明轉染后FL-IL-37b與M-IL-37b能夠在細胞中發(fā)揮炎癥抑制作用。上述結果與已報導的文獻中的數據相符,證實構建的pEGFP N1/IL-37b能夠穩(wěn)定的表達相應的IL-37b,為進一步研究IL-37b在炎癥反應中的發(fā)揮的作用及其細胞內外機制提供了便利。
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