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      智利酒果花色苷提取工藝研究

      2018-03-01 11:58:19蔣江紅
      生物化工 2018年1期
      關(guān)鍵詞:花色智利樹(shù)脂

      蔣江紅

      (深圳勁創(chuàng)生物技術(shù)有限公司,廣東深圳 518057)

      智利酒果是智利巴塔哥尼亞高原原始土地上野生常綠樹(shù)產(chǎn)出的一種小的可食用黑紫色漿果,直徑4~6mm,含4~8角種子。果實(shí)類似于黑莓的味道,在西班牙被稱為maqui(馬其)或maque,當(dāng)?shù)厝送ㄟ^(guò)食用它來(lái)緩解疲勞、“解毒”、和減肥,以保持身體健康;并用于治療糖尿病和心臟病等慢性病。在抗氧化上,與其他幾種具抗氧化作用的超級(jí)漿果相比,智利酒果是迄今為止發(fā)現(xiàn)抗氧化值(ORAC值)最高的漿果,其提取物中花色苷的氧自由基吸收能力排在第一位[1]。

      智利酒果花色苷主要有飛燕草素-3-桑布雙糖苷-5-葡萄糖苷、飛燕草素-3,5-雙葡萄糖苷、飛燕草素-3-桑布雙糖苷、飛燕草素-3-葡萄糖苷、矢車菊素-3-桑布雙糖苷-5-葡萄糖苷、矢車菊素-3,5-雙葡萄糖苷、矢車菊素-3-桑布雙糖苷、矢車菊素-3-葡萄糖苷共8種[1]。有關(guān)智利酒果花色苷提取的研究,國(guó)內(nèi)尚未有相關(guān)的文獻(xiàn)發(fā)表。由于花色苷連接的糖鍵易受酸堿度和溫度的影響而水解,筆者采用酸醇提取法對(duì)智利酒果中花色苷的提取工藝進(jìn)行研究,采用不同的樹(shù)脂進(jìn)行純化[2],旨在確定智利酒果中花色苷的最佳提取工藝,為智利酒果的利用開(kāi)發(fā)提供參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      智利酒果,采購(gòu)自智利;Agilent 1260 HPLC、Buchi旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);SHB-Ⅲ循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司);78HW-1數(shù)顯磁力攪拌器(杭州儀表電機(jī)有限公司);真空烘箱、酸度計(jì)、電子天平;其他化學(xué)試劑為化學(xué)純。

      1.2 提取方法

      1.2.1 工藝流程

      冰凍智利酒果100.00g→加入75%乙醇水打漿→提取→過(guò)濾→重復(fù)提取2次→過(guò)濾→提取液回收乙醇→水沉→過(guò)濾→上柱純化→解析→回收乙醇→濃縮干燥→HPLC檢測(cè)[3-4]。

      1.2.2 智利酒果花色苷提取單因素實(shí)驗(yàn)

      1.2.2.1 不同比例溶劑提取實(shí)驗(yàn)

      選取pH為2,25%、50%、75%三種濃度的乙醇溶液進(jìn)行提取,各提取2次,料液比為1∶6,溫度25~28℃,提取時(shí)間為3 h。提取液過(guò)濾,合并濾液,回收乙醇,取1mL定容到100mL,利用高效液相測(cè)總花色苷含量。

      1.2.2.2 不同料液比提取實(shí)驗(yàn)

      采用料液比為1∶10、1∶8、1∶6 、1∶4,pH為2的乙醇水為提取溶劑,其他步驟同1.2.2.1。

      1.2.2.3 不同提取時(shí)間實(shí)驗(yàn)

      采用提取時(shí)間分別為1、2、4、6 h,其他步驟同1.2.2.1。

      1.2.2.4 不同pH值提取溶液提取實(shí)驗(yàn)

      采用pH值分別為1.5、3.0、4.5、6進(jìn)行提取,其他步驟同1.2.2.1。

      1.3 純化實(shí)驗(yàn)

      1.3.1 純化樹(shù)脂的篩選

      將各提取液去酒精后,分別經(jīng)D101、LSA-10、LSA-7、LX-28、AB-8型大孔樹(shù)脂純化,75%乙醇溶液作為洗脫劑,收集液體經(jīng)真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮、干燥。

      1.3.2 不同濃度解吸液的對(duì)比

      分別采用25%、50%、75%乙醇-水溶液進(jìn)行洗脫,至流出液色淡,停止收集洗脫液,將收集液體經(jīng)真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮、干燥。

      2 結(jié)果和討論

      2.1 不同乙醇濃度對(duì)智利酒果中總花色苷提出量的影響

      從圖1可見(jiàn),分別用25%、50%、75%三種濃度的乙醇溶液進(jìn)行提取時(shí),總花色苷的得率隨乙醇濃度增高而增大,75%乙醇得率最高,提取效果最好。

      圖1 不同乙醇濃度對(duì)提取智利酒果中花色苷的影響

      2.2 不同料液比對(duì)智利酒果中總花色苷提出率的影響

      從圖2可知,隨著料液比增加,總花色苷提出率增加;當(dāng)料液比達(dá)1∶6后,再繼續(xù)增加料液比,總花色苷提出量沒(méi)有明顯的增加。

      圖2 不同料液比對(duì)提取智利酒果中花色苷的影響

      2.3 不同提取時(shí)間對(duì)智利酒果中總花色苷提出率的影響

      從圖3可知,提取時(shí)間分別為1、2、4、6 h時(shí),總花色苷提出率先隨時(shí)間增加而增加,提取時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng)時(shí),總花色苷提出率反而下降,在設(shè)定的幾個(gè)提取時(shí)間中,最佳提取時(shí)間為4 h。提取時(shí)間過(guò)短或過(guò)長(zhǎng),提出率均較低。可能是提取時(shí)間短時(shí),提取不充分,末完全提出;當(dāng)提取時(shí)間過(guò)長(zhǎng)時(shí),花色苷降解或氧化,導(dǎo)致提出率下降。

      圖3 不同提取時(shí)間對(duì)提取智利酒果中花色苷的影響

      2.4 不同pH值提取溶液對(duì)智利酒果中總花色苷提出率的影響

      從圖4可知,采用pH值分別為1.5、3.0、4.5、6進(jìn)行提取,pH值對(duì)花青素的提出率有較明顯的影響。當(dāng)pH值為1.5時(shí),提出率最大,說(shuō)明強(qiáng)酸條件下,對(duì)花色苷的提出率有利。

      圖4 不同pH值提取溶液對(duì)提取智利酒果中花色苷的影響

      2.5 不同樹(shù)脂純化篩選的結(jié)果

      從圖5可知,本實(shí)驗(yàn)篩選的幾種樹(shù)脂,得到的總花苷含量為19.33%-26.64%,用LSA-10進(jìn)行純化得到總花色苷含量為26.64%,純度最高,說(shuō)明采用LSA-10進(jìn)行純化效果較好,以下實(shí)驗(yàn)將選用它來(lái)進(jìn)行純化。

      圖5 不同樹(shù)脂對(duì)純化智利酒果總花色苷含量的影響

      2.6 不同濃度洗脫液的對(duì)比

      從圖6可知,分別采用25%、50%、75%乙醇-水溶液進(jìn)行洗脫,采用75%的乙醇洗脫得到的總花色苷含量最高,說(shuō)明75%乙醇洗脫效果較好。

      圖6 不同濃度洗脫液對(duì)洗脫智利酒果總花色苷的影響

      3 討論和結(jié)語(yǔ)

      本實(shí)驗(yàn)在提取智利酒果花色苷的研究中,對(duì)提取用乙醇濃度、提取料液比、提取時(shí)間和pH值等4個(gè)提取條件的篩選中,發(fā)現(xiàn)提取溶液的醇濃度、料液比和pH值對(duì)花色苷的提出率影響較大,采用75%乙醇溶液作提取溶劑,料液比達(dá)1∶6,pH值為1.5時(shí),提取效果最佳。通過(guò)對(duì)D101、LSA-10、LSA-7、LX-28、AB-8型等8種樹(shù)脂的篩選,發(fā)現(xiàn)LAS-10樹(shù)脂比較適合用于智利酒果花色苷成分的純化;經(jīng)對(duì)洗脫液濃度初篩,75%乙醇濃度的洗脫液洗脫效果較好。

      采用本實(shí)驗(yàn)篩選出的提取和純化條件進(jìn)行提取純化,得到智利酒果提取物為紫黑色粉末,總花色苷含量為34.64%。本實(shí)驗(yàn)得到的結(jié)果為進(jìn)一步開(kāi)發(fā)具高抗氧化成分花色苷的智利酒果提取物提供有意義的參考作用。

      [1]Escribanobailón M T,Alcaldeeon C,Mu?oz O,et al.Anthocyanins in berries of Maqui (Aristotelia chilensis (Mol.) Stuntz).[J].Phytochemical Analysis Pca,2006,17(1):8.

      [2]Pouget MP,Lejeune B,Vennat B,et al.Extraction,Analysis and Study of the Stability of HibiscusAnthocyanins[J].Lebensm Wiss Technol,1990,2:103-105.

      [3]Paola-Naranjo RD,Sánchez-Sánchez J,González-Paramás AM,et al.Liquid Chromatographic-Mass Spectrometric Analysis of Anthocyanin Composition of Dark Blue Pollen from Echium plantagineum [J].J Chromatogr A,2004,1054(1-2):205-210.

      [4]Prior RL,Cao G,Martin A,et al.Antioxidant Capacity as Influenced by Total Phenolic and Anthocyanin Content,Maturity,and Variety of Vaccinium species[J].J Agric Food Chem,1998,46(7):2586-2593.

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