范瑞娟,郭書(shū)海,李鳳梅,吳 波
(1.北方民族大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,銀川 750021;2.中國(guó)科學(xué)院沈陽(yáng)應(yīng)用生態(tài)研究所,沈陽(yáng) 110016;3.國(guó)家民委發(fā)酵釀造工程生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,銀川 750021)
在復(fù)雜的石油烴成分中,烷烴(包括環(huán)烷烴)以及多環(huán)芳烴分布最廣,所造成的環(huán)境問(wèn)題也最嚴(yán)重[1]。生物修復(fù)技術(shù)操作簡(jiǎn)單、處理費(fèi)用低、對(duì)環(huán)境影響小,因而在石油烴類污染土壤的修復(fù)中被廣泛應(yīng)用[2-6]。微生物作為生物修復(fù)的功能主體,其種類、群落組成、活性、數(shù)量等對(duì)有機(jī)物的去除效率和生物利用途徑起著決定性作用。不同的微生物所包含的酶系及其代謝途徑不同,因而所能利用的污染物種類也不同,而石油烴組成成分復(fù)雜,需要將不同種類的菌株進(jìn)行混合,制成微生物降解菌群,以實(shí)現(xiàn)石油烴不同組分最大程度的去除[7-8]。土壤pH和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的比例對(duì)微生物生長(zhǎng)有重要作用,從而對(duì)污染物生物降解產(chǎn)生重要影響,因而有必要對(duì)土壤環(huán)境條件進(jìn)行優(yōu)化,以提高微生物的活性和數(shù)量[9-10]。污染物結(jié)構(gòu)組成和性質(zhì)直接決定了其生物可利用性,然而,由于石油烴類污染物的生物可利用性很差,僅憑微生物修復(fù)技術(shù)很難實(shí)現(xiàn)其高效去除[11]。近年來(lái),人們開(kāi)始使用微生物-電動(dòng)耦合技術(shù)以提高土壤中頑固性有機(jī)物,如石油烴的去除[12-14]。
電動(dòng)技術(shù)對(duì)土壤的修復(fù)作用依賴于一系列的電化學(xué)過(guò)程,包括電遷移、電滲析、電泳以及電化學(xué)氧化在土壤中所誘導(dǎo)的氧化還原反應(yīng)[15-16]。對(duì)于石油烴這種難遷移的疏水性有機(jī)物,在電場(chǎng)作用下主要依靠電化學(xué)氧化的方式得以去除[17],且在一定的范圍內(nèi),電化學(xué)反應(yīng)區(qū)域隨電場(chǎng)強(qiáng)度的增大而擴(kuò)大,從而使污染物的去除率得以提高[18]。另外,在電動(dòng)處理過(guò)程中,土壤中的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)、電子受體、微生物等的遷移率得以促進(jìn),進(jìn)而使污染物的生物可利用性得到加強(qiáng)[19-20]。另有研究表明,在電極附近水的電解作用會(huì)導(dǎo)致極端pH的發(fā)生和土壤含水率的變化,對(duì)微生物的生長(zhǎng)具有負(fù)面影響。如,Lear等[21]研究發(fā)現(xiàn),電場(chǎng)的施加導(dǎo)致陽(yáng)極區(qū)域土壤酸化,使得可培養(yǎng)細(xì)菌和真菌的數(shù)量均有所降低,最終削弱了污染物降解效率。然而,周期性切換電極極性可消除土壤含水率和pH的大幅變化,降低對(duì)微生物的危害[22-24]。
目前,由于缺乏直接的監(jiān)測(cè)手段,大多數(shù)的研究都集中在電場(chǎng)對(duì)生物降解的影響方面,而對(duì)電化學(xué)反應(yīng)的研究較少,但間接的證據(jù)已證明了電化學(xué)反應(yīng)在持久性污染物的去除方面所起的重要作用[25-26]。在微生物-電動(dòng)聯(lián)合修復(fù)中,污染物的去除不僅依賴于微生物的降解作用,還在很大程度上依賴于電化學(xué)氧化作用[27-31]。然而,微生物降解和電化學(xué)氧化分別在去除不同石油烴組分時(shí)的具體作用還不明確。
本文分別以正十六烷、環(huán)十二烷和芘作為直鏈烷烴、環(huán)烷烴和多環(huán)芳烴的代表性污染物,以三者所組成的混合有機(jī)污染物為研究對(duì)象,在二維對(duì)稱電場(chǎng)修復(fù)平臺(tái)上,采用電動(dòng)修復(fù)(EK)、微生物修復(fù)(BIO)和微生物-電動(dòng)聯(lián)合修復(fù)(BIO-EK)的方式,通過(guò)分析不同修復(fù)方式中不同烴類污染物降解的時(shí)空特征和微生物數(shù)量、活性變化,探討微生物降解和電化學(xué)氧化分別在去除不同石油烴組分時(shí)的具體作用。
1.1.1 試驗(yàn)土壤
試驗(yàn)土壤采自中國(guó)科學(xué)院沈陽(yáng)生態(tài)實(shí)驗(yàn)站附近(41°31′0.19″N,123°22′8.77″E)0~30 cm 土壤,其部分理化性質(zhì)見(jiàn)表1。使用前將土壤自然風(fēng)干并過(guò)篩(<2 mm)。
表1 土壤理化性質(zhì)初始值Table 1 Initial characteristics of the test soil
1.1.2 污染物
分別以正十六烷(純度>98%,東京化成工業(yè)株式會(huì)社)、環(huán)十二烷(純度>99%,東京化成工業(yè)株式會(huì)社)和芘(純度>99%,百靈威科技有限公司)作為直鏈烷烴、環(huán)烷烴和多環(huán)芳烴的代表性污染物。將正十六烷、環(huán)十二烷和芘混入土壤中,使其最終濃度分別為4 744.54、947.22 mg·kg-1和 48.81 mg·kg-1,室溫狀態(tài)下平衡一周。
1.1.3 培養(yǎng)基
牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基:5 g·L-1牛肉膏,10 g·L-1蛋白胨,5 g·L-1NaCl,pH 7.0~7.2。
無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基:1.5g·L-1NaNO3,1.5g·L-1(NH4)2SO4,1.0 g·L-1K2HPO4,0.5 g·L-1MgSO4·7H2O,0.5 g·L-1KCl,0.01 g·L-1FeSO4·7H2O,0.002 g·L-1CaCl2,pH 7.0。
1.1.4 降解菌
以前期所構(gòu)建的微生物降解菌群為供試微生物,該降解菌群包含直鏈烷烴、環(huán)烷烴和芳烴降解能力的6 株菌 B1、B2、B3、B6、B7和 B9,其中 B2和 B3對(duì)直鏈烷烴、環(huán)烷烴和芳烴均具有降解能力,B1、B6、B7和 B9對(duì)直鏈烷烴和環(huán)烷烴具有降解能力,初步鑒定B1、B2、B6和B7分別屬于 Hydrogenophaga sp.、Phenylobacterium sp.、Sphingobium sp.和Bacillussp.,B3和B9屬于Arthrobacter sp.[32]。將細(xì)菌活化后,接入到牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基中,用 10 L發(fā)酵罐發(fā)酵培養(yǎng)(150 r·min-1、35℃),3 d后用低溫離心機(jī)(4℃)進(jìn)行離心(8000 r·min-1、2 min),將離心所得菌體懸浮于無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)基中備用。
試驗(yàn)裝置如圖1所示,包括土壤室(100 cm×100 cm×25 cm)、25根圓柱形不銹鋼電極(20 cm×1 cm)、直流電源、溫度探頭、pH計(jì)、控制系統(tǒng)和實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)系統(tǒng)。25根電極以矩陣的形式排列,電極間距為20 cm;控制系統(tǒng)可對(duì)電極極性按設(shè)定的時(shí)間間隔進(jìn)行陰陽(yáng)極極性的切換,并可將電極極性以行/列轉(zhuǎn)換的形式進(jìn)行旋轉(zhuǎn)切換,以此形成一個(gè)二維的對(duì)稱電場(chǎng);監(jiān)測(cè)系統(tǒng)可對(duì)土壤溫度、pH等參數(shù)進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)。
試驗(yàn)設(shè)計(jì)如表2所示。其中BIO-EK和EK在圖1所示的裝置中進(jìn)行,施加的直流電場(chǎng)為1.0 V·cm-1,每5 min切換一次電極極性,每10 min進(jìn)行一次行與列之間的轉(zhuǎn)換。土壤中所投加的微生物比例和數(shù)量以及土壤pH和C∶N∶P等均按照前期試驗(yàn)結(jié)果來(lái)確定[32]。BIO-EK和BIO污染土壤中按照前期試驗(yàn)所確定的比例 (B1∶B2∶B3∶B6∶B7∶B9=1∶1∶2∶0.5∶1∶2) 及接種量(2%)投加微生物混合菌群后測(cè)得的可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量為 1.0×106CFU·g-1干土;調(diào)節(jié)土壤 pH 為 7.0;綜合考慮土壤中污染物、有機(jī)碳、速效氮和速效磷的濃度,調(diào)節(jié)C∶N∶P 為 100∶5∶1,其中 N 由 NaNO3和(NH4)2SO4提供,P由K2HPO4提供。用蒸餾水調(diào)整土壤的含水量至20%,試驗(yàn)過(guò)程中,定期向土壤箱中噴灑蒸餾水以保持該含水量。將土壤分層鋪放在土壤室內(nèi)并壓實(shí),每個(gè)土壤室中約100 kg。采樣點(diǎn)根據(jù)電場(chǎng)強(qiáng)度分布,每10 d從圖2所示位置(a點(diǎn):電極處;c點(diǎn):兩電極中間;e點(diǎn):對(duì)角線中心)進(jìn)行采樣,將各相同位點(diǎn)的土樣混勻后測(cè)定相應(yīng)指標(biāo),試驗(yàn)共進(jìn)行100 d。
圖1 試驗(yàn)裝置Figure 1 Schematic of the experimental set-up
圖2 采樣點(diǎn)分布等高線圖Figure 2 Contour plots signifying the distribution of sampling positions
式中:C0為污染物初始含量;Ct為降解后的污染物含量。
1.3.1 土壤中正十六烷、環(huán)十二烷以及芘含量的測(cè)定
土壤中正十六烷、環(huán)十二烷和芘的含量采用氣相色譜法測(cè)定[32]。
1.3.2 正十六烷、環(huán)十二烷和芘降解率的計(jì)算
正十六烷、環(huán)十二烷和芘的降解率按照下面公式進(jìn)行計(jì)算:
表2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 2 Experimental protocol
實(shí)際降解率=處理組降解率-對(duì)照組降解率
1.3.3 脫氫酶活性分析
脫氫酶活性根據(jù) TTC(2,3,5-Triphenyl TetrazoliumChloride,2,3,5-氯化三苯基四氮唑)還原法測(cè)定[33]。其原理是TTC在細(xì)胞呼吸過(guò)程中接受氫以后,可以還原為紅色的 TPF(Triphenyl Formazan,三苯基甲臜),TPF在485 nm處存在吸收峰。
1.3.4 可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量變化
可培養(yǎng)微生物數(shù)量分析采用平板菌落計(jì)數(shù)法[34]。準(zhǔn)確稱取1 g土樣,置于9 mL無(wú)機(jī)鹽培養(yǎng)液中,140 r·min-1振蕩6 h。吸取1 mL菌液,用滅菌的去離子水進(jìn)行梯度稀釋,直至合適的濃度。分別取各稀釋濃度的菌液100 μL均勻涂布于牛肉膏蛋白胨固體平板上,待菌液滲透入培養(yǎng)基內(nèi),將培養(yǎng)皿倒置于30℃恒溫培養(yǎng)箱內(nèi),48 h后統(tǒng)計(jì)菌落數(shù)量,計(jì)算每克土壤中菌落數(shù)量(CFU·g-1土)。
1.4 數(shù)據(jù)處理
圖形繪制采用 SigmaPlot 10.0(Systat Software,USA);方差分析采用 SPSS 17.0(SPSS Software,USA)中“Duncan”法。
2.1.1 正十六烷、環(huán)十二烷和芘含量的變化
圖3為不同處理組中正十六烷、環(huán)十二烷和芘含量隨時(shí)間和空間的變化情況。100 d后,除對(duì)照組外,各處理方式下正十六烷、環(huán)十二烷和芘的濃度均有明顯的下降,且各污染物最大去除均發(fā)生在BIOEK處理組中。在試驗(yàn)進(jìn)行的前10 d,各污染物降解速率最快。
EK處理中,在未添加降解菌,也未進(jìn)行土壤條件優(yōu)化的情況下,正十六烷、環(huán)十二烷和芘也發(fā)生了明顯的降解。由于極強(qiáng)的疏水性,這類有機(jī)污染物很難通過(guò)電滲析、電遷移和電泳的方式得以去除,而當(dāng)土壤中存在“微導(dǎo)體”,即具有電子傳導(dǎo)特性的粒子(如金屬氧化物等)時(shí),在外加電場(chǎng)的情況下,這些粒子能夠誘使污染物發(fā)生電化學(xué)反應(yīng)[35]。因此,間接說(shuō)明EK中污染物的去除在很大程度上依賴于電化學(xué)氧化作用。各污染物最大去除均發(fā)生在BIO-EK處理組中,說(shuō)明在BIO-EK處理過(guò)程中,污染物的降解依賴于微生物降解和電化學(xué)氧化的聯(lián)合作用。所添加的微生物降解菌群包含直鏈烷烴、環(huán)烷烴和芳烴降解能力的不同菌株,其綜合了不同菌在降解石油烴不同組分過(guò)程中所體現(xiàn)出的優(yōu)勢(shì),可實(shí)現(xiàn)不同菌株代謝途徑的互補(bǔ)。前10 d污染物降解速率最大,后期則逐漸降低。對(duì)于EK而言,可能由于初期土壤中積累的中間產(chǎn)物較少,污染物去除速率較大,而隨著中間產(chǎn)物的積累,使得污染物去除速率逐漸降低。對(duì)于BIO-EK和BIO而言,除以上原因之外,還可能由于菌群和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的添加解決了土壤中微生物活性低下和營(yíng)養(yǎng)缺乏的問(wèn)題,使得前10 d污染物降解速率最大,后期隨著營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消耗使得微生物活性和數(shù)量降低,從而導(dǎo)致污染物去除緩慢[36]。
2.1.2 不同位點(diǎn)正十六烷、環(huán)十二烷、和芘降解率隨時(shí)間變化
圖4表示不同采樣點(diǎn)(a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn))土壤中正十六烷、環(huán)十二烷和芘降解率隨時(shí)間的變化情況。
由圖4A、圖4D、圖4G可知,100 d后,BIO-EK中a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)正十六烷降解率分別為79.0%、75.7%和71.4%,EK中a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)降解率分別為38.1%、30.6%和25.4%,而B(niǎo)IO中的平均降解率為40.9%。進(jìn)一步說(shuō)明,在BIO-EK處理過(guò)程中,污染物的降解依賴于微生物降解和電化學(xué)氧化的聯(lián)合作用,而結(jié)合EK和BIO中正十六烷的降解率,可推知在BIO-EK修復(fù)中,對(duì)于正十六烷的去除,微生物降解的貢獻(xiàn)大于電化學(xué)氧化作用,并且可以看出,EK中正十六烷的降解率隨電場(chǎng)強(qiáng)度的減弱而逐漸降低,由此說(shuō)明電化學(xué)氧化作用的貢獻(xiàn)率隨電場(chǎng)強(qiáng)度的減弱而逐漸降低。在一系列脫氫酶的催化作用下,正十六烷被依次氧化成相應(yīng)的醇、醛、酸,生成的正十六酸通過(guò)β-氧化的過(guò)程被繼續(xù)降解,而電場(chǎng)不僅可以促進(jìn)正十六烷的單末端氧化,還可促進(jìn)正十六酸的β-氧化過(guò)程[37]。這可能也是BIO-EK中正十六烷降解效率最高,并且電極附近電化學(xué)氧化的貢獻(xiàn)值較大的重要原因。
由圖4B、圖4E、圖4H可知,100 d后,BIO-EK中a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)環(huán)十二烷降解率分別為93.9%、91.1%和86.8%,EK中a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)降解率分別為51.6%、48.8%和44.2%,BIO中平均降解率為41.5%。表明在BIO-EK處理過(guò)程中,對(duì)于環(huán)十二烷的去除,電化學(xué)氧化的貢獻(xiàn)大于微生物降解作用。BIO-EK中環(huán)十二烷降解效率最高,并且電極附近電化學(xué)氧化的貢獻(xiàn)值較大,可能的原因是,電場(chǎng)可加速環(huán)十二烷的開(kāi)環(huán)進(jìn)程,使其轉(zhuǎn)換成易于被生物降解的線形物質(zhì)[38]。
圖4 BIO、EK和BIO-EK土樣中不同采樣點(diǎn)(a、c和e)正十六烷、環(huán)十二烷和芘降解率隨時(shí)間的變化Figure 4 Degradation extent of n-hexadecane,cyclododecane and pyrene at different positions(a,c and e)in the BIO,EK and BIO-EK tests
由圖 4C、圖 4F、圖 4I可知,100 d后,BIO-EK 中a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)芘的降解率分別為87.9%、82.9%和78.0%,EK中a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)降解率分別為43.0%、36.7%和32.4%,BIO中的平均降解率為44.4%。表明在BIO-EK處理過(guò)程中,對(duì)于芘的去除,微生物降解的貢獻(xiàn)大于電化學(xué)氧化作用,尤其在場(chǎng)強(qiáng)較弱的c點(diǎn)和e點(diǎn)。該結(jié)果與Huang等[28]的研究結(jié)果相似,其研究是以1-D電場(chǎng)為修復(fù)平臺(tái),以單一污染物芘為研究對(duì)象進(jìn)行的。
綜上,在微生物-電動(dòng)聯(lián)合修復(fù)過(guò)程中,微生物降解和電化學(xué)氧化在不同污染物的去除中體現(xiàn)出了互補(bǔ)性,其中正十六烷和芘的去除較多地依賴于微生物的降解作用,而環(huán)十二烷的去除則較多地依賴于電化學(xué)氧化作用。且微生物降解作用在場(chǎng)強(qiáng)較弱的位點(diǎn)貢獻(xiàn)較大,而電化學(xué)氧化作用在場(chǎng)強(qiáng)較強(qiáng)的電極附近貢獻(xiàn)較大。
脫氫酶活性是表征微生物活性的一個(gè)重要指標(biāo),是生物細(xì)胞內(nèi)催化有機(jī)物氧化(脫氫),并將電子傳遞給最終電子受體的氧化還原酶,而這個(gè)電子傳遞的過(guò)程是土壤微生物呼吸途徑的一個(gè)重要部分[39]。因此,本研究選擇脫氫酶作為評(píng)價(jià)土壤微生物活性的指標(biāo)。
BIO-EK和BIO處理中,土壤脫氫酶活性和可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量隨時(shí)間和空間變化情況如圖5所示。BIO-EK處理組中,前期脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量逐漸上升,至40 d達(dá)到最大值,而后則逐漸下降,但100 d后脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量仍高于初始值。a點(diǎn)、c點(diǎn)和e點(diǎn)之間脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量均沒(méi)有顯著性差異(P>0.05)。BIO處理組中,10 d時(shí)脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量達(dá)到最大(P<0.01),隨之逐漸降低至與初始脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量相似。整體來(lái)看,BIO-EK中脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量明顯高于BIO中(P<0.01)。
圖5 BIO-EK及BIO處理土壤中脫氫酶活性和可培養(yǎng)細(xì)菌數(shù)量變化Figure 5 Changes of dehydrogenase activity and culturable bacterial numbers in the BIO-EK and BIO tests
可能由于試驗(yàn)初期對(duì)土壤中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的比例和pH進(jìn)行了調(diào)節(jié),土壤環(huán)境有利于微生物的生長(zhǎng),從而使得前期脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量逐漸上升,隨著營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消耗,導(dǎo)致脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量的降低。由于電場(chǎng)方向的周期性改變,使得土壤中不同位點(diǎn)pH均一,營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)分散均勻,故脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量在空間上沒(méi)有明顯的差異[40],與前期研究結(jié)果一致[31]。BIO-EK中脫氫酶活性和細(xì)菌數(shù)量高于BIO中,可能的原因是,當(dāng)向土壤中施加電場(chǎng)時(shí),陽(yáng)極附近由于水的電解作用所產(chǎn)生的氧氣會(huì)促進(jìn)微生物細(xì)胞的呼吸速率,并間接提高土壤氧化還原水平,從而引起微生物活性和數(shù)量的增加[41],且電場(chǎng)方向的周期性改變?cè)鰪?qiáng)了微生物與營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)之間的傳質(zhì)性[42],也有可能引起微生物活性和數(shù)量的增加。
在微生物-電動(dòng)聯(lián)合修復(fù)混合烴污染土壤的過(guò)程中,微生物降解作用和電化學(xué)氧化作用在不同烴類成分的去除中表現(xiàn)出較為明顯的互補(bǔ)性,其中正十六烷和芘的去除較多地依賴于微生物的降解作用,而環(huán)十二烷的去除則較多地依賴于電化學(xué)氧化作用,且微生物降解作用在場(chǎng)強(qiáng)較弱的位點(diǎn)貢獻(xiàn)較大,而電化學(xué)氧化作用在場(chǎng)強(qiáng)較強(qiáng)的電極附近貢獻(xiàn)較大。研究結(jié)果有望為石油烴類污染物的微生物-電動(dòng)修復(fù)過(guò)程調(diào)控提供一定的理論基礎(chǔ)。
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