李 娟,田保華,劉旦梅,裴雁曦*
(1.山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,太原 030006;2.太原理工大學(xué),太原 030024)
硫化氫(Hydrogen sulfide,H2S),一直以來(lái)被認(rèn)為是一種有毒氣體,并且具有臭雞蛋氣味。然而在氣體信號(hào)分子一氧化氮(NO)和一氧化碳(CO)之后,H2S也成為了氣體信號(hào)分子的一員[1],雖然其研究起步較晚,但發(fā)展迅速[2]。起初,H2S被證明在動(dòng)物體內(nèi)有多種生理功能。近年來(lái),已經(jīng)有許多研究報(bào)道證明植物內(nèi)源H2S也有多種生理生化功能,如在種子的萌發(fā)[3]、根形態(tài)的建成、植物的光合作用和細(xì)胞程序性死亡等生理過(guò)程中都發(fā)現(xiàn)有H2S的參與[3-5];此外H2S在對(duì)植物抗逆性方面也扮演著重要的角色,如抵抗干旱脅迫[6]、溫度脅迫、重金屬脅迫[7-8]等??傊?,植物整個(gè)生長(zhǎng)、發(fā)育、成熟和衰老的過(guò)程都有H2S的參與。
三磷酸腺苷(Adenosine triphosphate,ATP)是生物細(xì)胞中的一種活性物質(zhì),三磷酸腺苷酶(Adenosine triphosphatase,ATPase)在ATP分解釋放出能量過(guò)程中扮演著重要的角色。ATPase主要包括F型、P型、V型和ABC型四類(lèi)[9]。主要定位于植物細(xì)胞的葉綠體內(nèi)膜和線粒體內(nèi)膜,還有少部分存在于微生物中,其活性受環(huán)境以及各種因素的影響。ATP是生命活動(dòng)的主要物質(zhì),ATPase在植物細(xì)胞的生長(zhǎng)、氣孔開(kāi)閉、跨膜運(yùn)輸以及抵御非生物脅迫等方面有重要作用[10]。
P型ATPases作為ATPase家族中的一個(gè)成員,在植物響應(yīng)重金屬脅迫方面有著重要的作用。它們可以通過(guò)氨基酸序列中的天冬氨酸殘基的磷酸化循環(huán)使一些陽(yáng)離子進(jìn)行跨膜運(yùn)輸。P型ATPase主要包括P1A-ATPase和 P1B-ATPase,HMA 是 P1B-ATPase亞家族中一員,亞家族根據(jù)其金屬特征可分為Zn2+/Cd2+/Pb2+/Co2+組和Cu+/Ag+組。對(duì)于Cd脅迫產(chǎn)生毒害作用的關(guān)鍵步驟是根部吸收并向地上部分運(yùn)輸,因此削弱Cd向上運(yùn)輸,從而阻止Cd進(jìn)入木質(zhì)部和韌皮部是一個(gè)研究熱點(diǎn)[10-11,13],但是,不同物種的HMA家族對(duì)Cd脅迫的響應(yīng)存在差異。
目前,對(duì)于Cd脅迫處理下ATPase和H2S的關(guān)系,以及H2S與具有金屬轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白活性的P1B-ATPase亞家族中HMA的關(guān)系尚無(wú)相關(guān)研究報(bào)道,本研究以谷子幼苗為材料,研究H2S在植物響應(yīng)重金屬Cd的過(guò)程中,H2S與ATPase及HMA之間的關(guān)系。
晉谷21號(hào)由山西農(nóng)科院谷子所提供。
選用萌發(fā)后生長(zhǎng)5 d的幼苗作為實(shí)驗(yàn)材料。種子消毒處理:將種子放于相應(yīng)的離心管,75%的乙醇洗1 min,棄掉乙醇后用濃度為6%的次氯酸鈉洗10 min,最后用無(wú)菌水清洗3次。然后將消毒后的種子播種于培養(yǎng)皿中,23℃黑暗浸泡24 h。并且每天換10 mL新的1/4 Hoagland營(yíng)養(yǎng)液,保持水分[17]。
在進(jìn)行脅迫處理時(shí),選取生長(zhǎng)一致的谷子幼苗分為4組。其中3組分別用5 mmol·L-1CdCl2(Cd)、50 μmol·L-1NaHS(H2S)、50 μmol·L-1NaHS 與 5 mmol·L-1CdCl2(H2S+Cd)進(jìn)行處理,另外1組未處理的幼苗作為對(duì)照(CK)。所有實(shí)驗(yàn)進(jìn)行三次重復(fù),其中H2S處理采用熏蒸法處理,將50 μmol·L-1NaHS置于小蓋子中放入培養(yǎng)皿中進(jìn)行H2S處理。分別處理24 h后取樣,然后測(cè)定ATPase的活性以及HMA基因的表達(dá)量。
可溶性蛋白含量和可溶性糖含量測(cè)定參照李合生[18]的方法。
剪取1 g谷子幼苗,加入2倍(體積∶質(zhì)量)體積預(yù)冷的研磨緩沖液(50 mmol·L-1Tris-MES,250 mmol·L-1甘露醇,1.5%PVP,0.5%BSA,1 mmol·L-1DTT,pH 7.0),在冰上研磨,然后在4℃冷凍離心機(jī)下5000 r·min-1離心3 min,取上清測(cè)定ATPase的活性[19]。
H+-ATPase、Ca2+-ATPase、Mg2+-ATPase 活性的測(cè)定:反應(yīng)體系為1 mL,Ca2+-ATPase和Mg2+-ATPase的反應(yīng)體系中包括Tris-Mes 50 mmol·L-1(pH 6.5)、ATPNa23.0 mmol·L-1、(NH4)2MoO41.0 mmol·L-1、NaN31.0、NaNO350 mmol·L-1、EDTA-Na20.1 mmol·L-1;H+-ATPase的反應(yīng)體系除Ca2+-ATPase、Mg2+-ATPase體系中所包含的試劑,還包括CaCl23.0 mmol·L-1、MgCl25.0 mmol·L-1。以上三種酶反應(yīng)均由 50 μL 的 60 mmol·L-1ATP-Na2進(jìn)行啟動(dòng),水浴37℃下反應(yīng)30 min,最后終止反應(yīng)進(jìn)而測(cè)定無(wú)機(jī)磷的含量。
谷子幼苗HMA家族蛋白進(jìn)化分析,用NCBI網(wǎng)站中 BlastP(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)查找與HMA蛋白同源性高的序列,然后用 ClustalW(http://www.ebi.a(chǎn)c.uk/clustalw/)對(duì)所找的同源序列進(jìn)行排序并分析,用MEGA 5.0軟件的最大簡(jiǎn)約法(MP)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),校驗(yàn)參數(shù)為BootStrap,重復(fù)1000次。
分別取各處理組的谷子幼苗,用RNAiso Plus試劑進(jìn)行RNA的提取,用反轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄,具體操作方法按照試劑的說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。以cDNA為模板,用谷子ACTIN基因作為內(nèi)參,用熒光定量PCR儀進(jìn)行檢測(cè),最后分析各處理組基因表達(dá)水平的變化,每個(gè)實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。表1為用于Real-time PCR的引物,表2為Real-time PCR反應(yīng)體系。
用Excel和SPSS 12.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理與分析,然后用t檢驗(yàn)進(jìn)行顯著性分析和圖表的制作。
如圖1所示,與對(duì)照組相比,Cd處理、H2S處理以及H2S+Cd處理的可溶性蛋白含量略微降低,降幅分別為4.2%、3.1%和1.5%,三種不同處理對(duì)谷子幼苗的可溶性蛋白含量幾乎沒(méi)有影響;Cd處理可溶性糖的含量明顯降低,而H2S+Cd處理則可以緩解Cd脅迫所引起的可溶性糖含量的降低。糖是調(diào)節(jié)滲透脅迫的小分子物質(zhì)。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,H2S可以通過(guò)增加谷子幼苗可溶性糖的含量進(jìn)而緩解重金屬Cd導(dǎo)致的滲透脅迫的損傷。
圖1 H2S處理對(duì)Cd脅迫下谷子幼苗可溶性蛋白和可溶性糖含量的影響Figure 1 Effects of H2S on soluble protein and soluble sugar contents in foxtail millet seedlings under Cd stress
表2 Real-time PCR反應(yīng)體系Table 2 Real-time quantitative PCR reaction system
如圖2所示,與對(duì)照組比較,Cd處理的Ca2+-ATPase、Mg2+-ATPase和H+-ATPase活性顯著降低;H2S處理的Mg2+-ATPase活性高于對(duì)照,而H+-ATPase和Ca2+-ATPase的活性與對(duì)照相比沒(méi)有顯著變化;與Cd處理組相比,H2S+Cd處理的H+-ATPase和Ca2+-ATPase的活性顯著上升,Mg2+-ATPase的活性也有所升高,但并不顯著。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,H2S可以提高Cd脅迫下谷子ATPase活性,增加ATP等生物能量的生成,從而增強(qiáng)根系的主動(dòng)吸收,進(jìn)而緩解Cd脅迫對(duì)谷子幼苗的損傷。
圖2 H2S對(duì)Cd脅迫下谷子幼苗ATPase活性的影響Figure 2 Effect of H2S on ATPase enzyme activity in foxtail millet seedlings under Cd stress
表1 Real-time PCR特異性引物Table 1 Primers used for Real-time quantitative PCR
從擬南芥序列庫(kù)中查找出8個(gè)HMAs的家族相關(guān)蛋白,分別命名為AtHMA1-8,接下來(lái),通過(guò)比對(duì)的方法又從谷子數(shù)據(jù)庫(kù)中找出11條相關(guān)基因。對(duì)這19條HMA基因編碼蛋白按距離法(Neighbor-joining method)構(gòu)建了它們的進(jìn)化樹(shù),如圖3所示在擬南芥中有4個(gè)基因?qū)儆贑u+/Ag+亞家族,分別為AtHMA5-8,而谷子中該亞家族中有6個(gè)成員;對(duì)于Zn2+/Co2+/Cd2+/Pb2+亞家族,擬南芥中有蛋白AtHMA1-4 4個(gè)成員,而谷子中含有5個(gè)成員并且其中的2個(gè)與AtHMA1親緣關(guān)系很近,將其命名為SiHMA1-1、SiHMA1-2。由以下分析結(jié)果可得出,家族分類(lèi)結(jié)果與其功能基本是一致的。
為了研究H2S緩解Cd脅迫的分子機(jī)理,直接參照擬南芥HMA家族基因序列設(shè)計(jì)引物,并通過(guò)qRT-PCR在谷子中擴(kuò)增出目的片段,對(duì)Cd脅迫下,H2S對(duì)谷子Zn2+/Co2+/Cd2+/Pb2+亞組中 HMA1-4的表達(dá)量進(jìn)行了分析,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖4顯示,Cd處理 組 SiHMA1-1、SiHMA1-2、SiHMA2、SiHMA3 和SiHMA4顯著上調(diào),與之相比,H2S+Cd處理組5個(gè)基因的表達(dá)量則均有顯著的下調(diào)。綜上結(jié)果表明,H2S可能通過(guò)調(diào)節(jié)谷子幼苗中起金屬轉(zhuǎn)運(yùn)作用的HMAs家族基因的表達(dá)量,來(lái)緩解Cd脅迫對(duì)谷子幼苗的損傷。
圖3 谷子和擬南芥HMAs家族系統(tǒng)樹(shù)Figure 3 Phylogenetic analysis of the foxtail millet seedlings and Arabidopsis HMAs family proteins
ATP是一種高能磷酸化合物,是細(xì)胞各項(xiàng)生命活動(dòng)的能量供應(yīng)。而根系的主要功能之一為吸收水分和無(wú)機(jī)鹽,這一過(guò)程則需要ATPase催化ATP水解進(jìn)而提供能量。位于細(xì)胞質(zhì)膜上的H+-ATPase、Ca2+-ATPase、Mg2+-ATPase是較為重要的ATP酶類(lèi),其活性可直接反映出細(xì)胞質(zhì)膜的作用,并且質(zhì)膜H+-ATPase所構(gòu)成的跨膜質(zhì)子梯度,是根部吸收營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的重要驅(qū)動(dòng)力。已有研究報(bào)道1 mmol·L-1CdCl2能夠顯著抑制根系的質(zhì)膜H+-ATPase活性。這表明1 mmol·L-1CdCl2可以將細(xì)胞質(zhì)膜的功能破壞,同時(shí)也對(duì)根系主動(dòng)吸收的能力有所抑制[19];同時(shí)也有研究報(bào)道,不同濃度的CdCl2脅迫處理對(duì)龍葵和長(zhǎng)春花等幼苗的H+-ATPase、Ca2+-ATPase 活性影響比較顯著[22-23]。本研究發(fā)現(xiàn),在CdCl2脅迫下Ca2+-ATPase、Mg2+-ATPase和H+-ATPase的活性顯著被抑制,而H2S處理則可以緩解這一現(xiàn)象,這與H2S可以緩解Al對(duì)小麥ATPase活性的抑制[24]這一研究報(bào)道相一致。盡管Cd脅迫對(duì)ATPase的影響有眾多研究,但并無(wú)一致的結(jié)果,因此在這方面還值得進(jìn)一步深入研究。
圖4 H2S對(duì)谷子HMAs家族金屬轉(zhuǎn)運(yùn)基因的表達(dá)調(diào)控Figure 4 The expression levels of the HMAs family of the metal transporter genes under H2S treatment
P型ATPases存在于大部分真核生物中,它們對(duì)生物體的離子運(yùn)輸、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)以及穩(wěn)態(tài)維持,尤其是在應(yīng)對(duì)環(huán)境脅迫的生理過(guò)程中發(fā)揮著重要作用。P型ATPases家族成員中 P1B-ATPases(HMAs)則為植物中的重要金屬轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白。HMAs亞家族分為Cu+/Ag+和Zn2+/Co2+/Cd2+/Pb2+兩個(gè)亞族,研究報(bào)道擬南芥AtHMA1-4屬于Zn2+/Co2+/Cd2+/Pb2+亞族[10]。本研究利用生物信息學(xué)方法,在谷子中預(yù)測(cè)到有5個(gè)編碼基因?qū)儆赯n2+/Co2+/Cd2+/Pb2+亞組。進(jìn)一步的Real-time PCR表達(dá)分析(圖4)表明,H2S處理使得在Cd脅迫下谷子幼苗中 SiHMA1-1、SiHMA1-2、SiHMA2、SiHMA3 和 SiHMA4表達(dá)的上調(diào)有所抑制。由此推測(cè),根細(xì)胞內(nèi)的Cd往地上部分運(yùn)輸時(shí)受H2S抑制,從而將Cd集中于根細(xì)胞的液泡中,進(jìn)而緩解了Cd對(duì)谷子幼苗的損傷。這一結(jié)果與H2S可以下調(diào)龍葵HMA4基因的表達(dá),抑制Zn向地上部分轉(zhuǎn)運(yùn),從而緩解Zn對(duì)龍葵幼苗的毒害[26]結(jié)果相一致。AtHMA3和OsHMA3可使得Zn2+/Co2+/Cd2+/Pb2+儲(chǔ)存于植物液泡當(dāng)中,AtHMA3也是唯一能使Cd在葉片中積累發(fā)生變化的一個(gè)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白[11];而擬南芥HMA家族中的另外兩成員HMA2、HMA4和水稻中OsHMA2的主要功能則是分別把根中Zn和Cd從根細(xì)胞中運(yùn)輸至地上部分[10-11]。從以上分析可以推測(cè),不同物種中的HMAs家族基因及其亞組中的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白都有著功能差異性。
因此,本實(shí)驗(yàn)研究H2S在谷子幼苗響應(yīng)重金屬Cd脅迫機(jī)制中的作用,為進(jìn)一步深入研究谷子對(duì)重金屬Cd的調(diào)控機(jī)制提供理論支持。但是,目前對(duì)HMAs家族的功能及更深的研究尚不清楚。因此,對(duì)谷子中HMAs家族進(jìn)行詳細(xì)的功能分析與基因定位是我們后續(xù)研究的方向。
(1)在Cd脅迫處理下谷子幼苗會(huì)產(chǎn)生一系列生理指標(biāo)和轉(zhuǎn)錄水平的變化,主要表現(xiàn)有可溶性糖和可溶性蛋白含量均降低,三種ATP酶活性下降,以及P1B-ATPase轉(zhuǎn)運(yùn)家族HMAs的基因表達(dá)升高,從而導(dǎo)致谷子幼苗受到不同程度的損傷。
(2)H2S處理則可以增加Cd脅迫下谷子幼苗的可溶性糖含量,提高Cd脅迫下谷子幼苗的三種ATP 酶活性,下調(diào) HMA1、HMA2、HMA3和 HMA4基因的表達(dá),從而提高根系主動(dòng)吸收能力,將Cd集中于根細(xì)胞的液泡中,進(jìn)而緩解Cd對(duì)谷子幼苗的損傷。
[1]裴雁曦.植物中的氣體信號(hào)分子硫化氫:無(wú)香而立,其臭如蘭[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2016,32(7):721-733.PEI Yan-xi.Gasotransmitter hydrogen sulfide in plants:Stinking to high heaven,but refreshing to fine life[J].Chinese Journal of Biochemistry and Molecular Biology,2016,32(7):721-733.
[2]程雙妮,葉迦寧,金東寧,等.硫化氫在番茄耐受鎘脅迫過(guò)程中的作用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2017,45(5):140 -143.CHENG Shuang-ni,YE Jia-ning,JIN Dong-ning,et al.The fuction of hydrogen sulfide in tomato under cadmium stress condition[J].Journal of Anhui Agricultural Sciences,2017,45(5):140-143.
[3]Zhang H,Hu L Y,Hu K D,et al.Hydrogen sulfide promotes wheat seed germination and alleviates oxidative damage against copper stress[J].Journal of Integrative Plant Biology,2008,50(12):1518-1529.
[4]Zhang H,Tang J,Liu X P,et al.Hydrogen sulfide promotes root organogenesis in Ipomoea batatas,Salix matsudana and Glycine max[J].Journal of Integrative Plant Biology,2009,51(12):1086-1094.
[5]Zhang H,Hu S L,Zhang Z J,et al.Hydrogen sulfide acts as a regulator of flower senescence in plants[J].Postharvest Biology&Technology,2011,60(3):251-257.
[6]Jin Z P,Shen J J,Qiao Z J,et al.Hydrogen sulfide improves drought resistancein Arabidopsisthaliana[J].BiochemBiophysResCommun,2011,414(3):481-486.
[7]Fang H H,Liu Z Q,Pei Y X,et al.Hydrogen sulfide interacts with calcium signaling to enhance the chromium tolerance in Setaria italica[J].Cell Calcium,2014,56(6):472-481.
[8]Zhang H,Hu L Y,Li P,et al.Hydrogen sulfide alleviated chromium toxicity in wheat[J].Biologia Plantarum,2010,54(4):743-747.
[9]鄧 林,陳少良.ATPase與植物抗鹽性[J].植物學(xué)通報(bào),2005,22(增刊):11-21.DENG Lin,CHEN Shao-liang.ATPase and salt resistance in plants[J].Chinese Bulletin of Botany,2005,22(Suppl):11-21.
[10]Lin Y F,Aarts M G M.The molecular mechanism of zinc and cadmium stress response in plants[J].Cellular&Molecular Life Sciences,2012,69(19):3187-3206.
[11]Takahashi R,Bashir K,Ishimaru Y,et al.The role of heavy-metal ATPases,HMAs,in zinc and cadmium transport in rice[J].Plant Signaling&Behavior,2012,7(12):1605-1607.
[12]Zorrig W,Abdelly C,Berthomieu P,et al.The phylogenetic tree gathering the plant Zn/Cd/Pb/Co P1B-ATPases appears to be structured according to the botanical families[J].Comptes Rendus-Biologies,2011,334(12):863-871.
[13]Fang X L,Wang L,Deng X,et al.Genome-wide characterization of soybean P1B-ATPases gene family provides functional implications in cadmium responses[J].Bmc Genomics,2016,17(1):1-15.
[14]Zhang Z C,Yu Q,Du H Y,et al.Enhanced cadmium efflux and rootto-shoot translocation are conserved in the hyperaccumulator Sedum alfredii(Crassulaceae family)[J].FEBS Lett,2016,590(12):1757-1764.
[15]Jin Z P,Pei Y X.Physiological implications of hydrogen sulfide in plants:Pleasant exploration behind its unpleasant odour[J].Oxid Med Cell Longev,2015,Artical ID 397502.
[16]Guo H M,Xiao T Y,Zhou H,et al.Hydrogen sulfide:A versatile regulator of environmental stress in plants[J].Acta Physiologiae Plantarum,2016,38(1):1-13.
[17]田保華,張彥潔,張麗萍,等.鎘/鉻脅迫對(duì)谷子幼苗生長(zhǎng)和NADPH氧化酶及抗氧化酶體系的影響[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2016,35(2):240-246.TIAN Bao-hua,ZHANG Yan-jie,ZHANG Li-ping,et al.Effects of cadmium or chromium on growth and NADPH oxidase and antioxidant enzyme system of foxtail millet seedlings[J].Journal of Agro-Environment Science,2016,35(2):240-246.
[18]李合生.植物生理生化實(shí)驗(yàn)原理和技術(shù)[M].北京:高等教育出版社,2006.LI He-sheng.Technology of plant physiological and biochemical[M].Beijing:China Higher Education Press,2006.
[19]邵小杰,楊洪強(qiáng),冉 昆,等.水楊酸對(duì)鎘脅迫下葡萄根系質(zhì)膜ATPase和自由基的影響[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(7):1441-1447.SHAO Xiao-jie,YANG Hong-qiang,RAN Kun,et al.Effects of salicylic acid on plasma membrane ATPase and free radical of grape root under cadmium stress[J].Scientia Agricultura Sinica,2010,43(7):1441-1447.
[20]Forbush B.Assay of Na,K-ATPase in plasma membrane preparations:Increasing the permeability of membrane vesicles using sodium dodecyl sulfate buffered with bovine serum albumin[J].Analytical Biochemistry,1983,128(1):159-163.
[21]陳國(guó)忠,李文均,徐麗華,等.16S rRNA二級(jí)結(jié)構(gòu)的研究進(jìn)展及其在系統(tǒng)分類(lèi)中的應(yīng)用[J].微生物學(xué)雜志,2005,25(5):54-57.CHEN Guo-zhong,LI Wen-jun,XU Li-hua,et al.Advanced in 16S rRNA secondary structure and its application in systematic classification[J].Journal of Microbiology,2005,25(5):54-57.
[22]劉柿良,楊容孑,馬明東,等.土壤鎘脅迫對(duì)龍葵(Solanum nigrum L.)幼苗生長(zhǎng)及生理特性的影響[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2015,34(2):240-247.LIU Shi-liang,YANG Rong-jie,MA Ming-dong,et al.Effects of soil cadmium on growth and physiological characteristics of Solanum nigrum L.plants[J].Journal of Agro-Environment Science,2015,34(2):240-247.
[23]劉柿良,潘遠(yuǎn)智,楊容孑,等.外源一氧化氮對(duì)鎘脅迫下長(zhǎng)春花質(zhì)膜過(guò)氧化、ATPase及礦質(zhì)營(yíng)養(yǎng)吸收的影響[J].植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2014,20(2):445-458.LIU Shi-liang,PAN Yuan-zhi,YANG Rong-jie,et al.Effects of exogenous NO on mineral nutrition absorption,lipid peroxidation and ATPase of plasma membrane in Catharanthus roseus tissues under cadmium stress[J].Journal of Plant Nutrition and Fertilizer,2014,20(2):445-458.
[24]Dawood M,Cao F B,Jahangir M M,et al.Alleviation of aluminum toxicity by hydrogen sulfide is related to elevated ATPase,and suppressed aluminum up take and oxidative stress in barley[J].Journal of Hazardous Materials,2012,209/210(1):121-128.
[25]Li L,Zhou W H,Dai H X,et al.Selenium reduces cadmium uptake and mitigates cadmium toxicity in rice[J].Journal of Hazardous Materials,2012,235/236(2):343-351.
[26]Liu X,Chen J,Wang G H,et al.Hydrogen sulfide alleviates zinc toxicity by reducing zinc uptake and regulating genes expression of antioxidative enzymes and metallothioneins in roots of the cadmium/zinc hyperaccumulator Solanum nigrum L.[J].Plant&Soil,2015,400(1):1-16.