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    酯化紅曲霉的分離純化及其在固態(tài)發(fā)酵中的應用研究

    2018-03-01 00:33:47單淑芳黃躍勇張國強
    釀酒科技 2018年2期
    關鍵詞:三角瓶紅曲麩皮

    單淑芳,丁 咚,趙 穎,徐 君,黃躍勇,張國強

    (安徽口子酒業(yè)股份有限公司,安徽淮北 235100)

    紅曲霉屬于真菌門、子囊菌亞門、不整子囊菌綱、散囊菌目、紅曲科(Monascaceae)、紅曲屬(Monascus),是腐生真菌,能產生紅色色素,可用做食品加工中天然紅色色素的來源,如在紅腐乳、飲料、肉類加工中用的紅曲米,就是用紅曲霉制作的[1-4]。近代發(fā)酵工業(yè)用它生產葡萄酒、酒精發(fā)酵和紅曲色素,以及用于調節(jié)血脂、降低血壓等系列功能性紅曲制品等[5]。

    高溫季節(jié)中的酒醅,由于環(huán)境氣溫高,一般都存在酸度高、殘余淀粉高、乳酸菌和雜菌數(shù)量多、繁殖快的現(xiàn)象,大量微生物侵入發(fā)酵體系中,影響酵母及有益菌的正常繁殖和發(fā)酵,從而導致曲酒產量和質量明顯下降。酯化紅曲是由紅曲霉等多種產酯功能菌混合培養(yǎng)制成,是復合菌劑、生物酶和活菌體的生態(tài)混合體[6]。紅曲霉具有嗜酸的特性,尤其是嗜乳酸,能夠利用乳酸為碳源繁殖發(fā)酵,解除了酸對微生物細胞的毒害作用,因而在白酒生產中能降低酒醅中乳酸和乳酸乙酯的含量;紅曲霉本身可以代謝產生己酸乙酯合成酶,加快白酒中己酸乙酯的生成速度,提高酯化率,從而達到提高優(yōu)質酒率的目的[2]。

    為了改進安徽口子酒傳統(tǒng)大曲的生化性能,提高白酒的優(yōu)質品率,我公司以酯化紅曲為含菌源,分離出酯化力強的功能菌種。以此為試驗菌株,經固態(tài)純種培菌發(fā)酵,按一定比例添加到制曲原料中,制成強化大曲,或是直接與大曲混合,添加到酒醅中進行發(fā)酵。

    1 材料與方法

    1.1 材料、儀器

    原料:紅曲,某企業(yè)取樣。

    儀器設備:立式恒溫生化培養(yǎng)箱,螺旋管蒸餾器,顯微鏡,高壓滅菌鍋,玻璃量筒,玻璃燒杯,三角瓶,試管,吸管,培養(yǎng)皿,酒精燈,涂布棒,安捷倫6820氣相色譜儀等。

    1.2 試驗培養(yǎng)基

    1.2.1 分離純化培養(yǎng)基

    麥芽汁培養(yǎng)基:麥芽浸膏30 g 、瓊脂15 g、水1000 mL、pH5.5左右、121℃滅菌15 min。

    改良麥芽汁培養(yǎng)基:麥芽浸膏30 g、瓊脂15 g、酒精10%vol、水1000 mL、乳酸調pH3.5左右、121℃滅菌15 min。

    1.2.2 試管斜面培養(yǎng)基

    PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂15 g、水1000 mL、pH值自然。

    1.2.3 液體種子培養(yǎng)基

    麥芽汁液體培養(yǎng)基:麥芽汁浸膏30g,水1000 mL,pH值自然。

    1.2.4 三角瓶培養(yǎng)基

    大米培養(yǎng)基:大米用蒸餾水浸泡24 h(米∶水=1∶1),按每瓶50 g干料裝入500 mL三角瓶。

    全麩皮培養(yǎng)基:按1∶1比例加入蒸餾水拌濕的大片麩皮,拌濕至手捏成團,松手即散為準,按50 g干料裝入500 mL三角瓶。

    大米和麩皮混合培養(yǎng)基:干料大米∶麩皮為2∶1,浸泡24 h的大米和按1∶1比例加入蒸餾水拌濕的大片麩皮,按每瓶50 g干料裝入500 mL三角瓶內,混勻。

    1.3 試驗工藝

    紅曲酯化酶?分離?純化?母菌?斜面?液體種子?大三角瓶?紅曲擴大生產?紅曲應用于生產

    1.4 試驗方法

    1.4.1 紅曲酯化酶的微生物分離、純化

    分離方法:稀釋涂布平板法。

    純化方法:平板劃線法。

    1.4.2 菌種的初步鑒定

    用肉眼觀察菌落的生長、顏色、表面形態(tài)、質地、邊緣形狀等,用顯微鏡觀察菌絲、孢子和子實體結構的形態(tài)。

    1.4.3 紅曲霉的斜面培養(yǎng)

    培養(yǎng)條件:在無菌條件下接入紅曲霉菌種,置入生化培養(yǎng)箱內,35℃培養(yǎng)7~8 d。

    1.4.4 液體種子培養(yǎng)

    三角瓶液體培養(yǎng)基在無菌條件下接入試管斜面菌種,置入生化培養(yǎng)箱內,以35℃、150 r/min振蕩培養(yǎng)7 d。

    1.4.5 三角瓶培養(yǎng)[2]

    上述3種培養(yǎng)基置于0.1MPa壓力下滅菌30min,取出冷卻至室溫搖散,使其充分吸收三角瓶壁的冷凝水,根據培養(yǎng)基的干濕情況補充含適量乳酸和乙醇的無菌水,繼續(xù)潤料30 min。

    用微量移液器吸取10 mL液體種子至三角瓶固體培養(yǎng)基內,將接種好的三角瓶搖勻,然后把物料堆積在瓶的一角,以利升溫,放入32~35℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    當大部分物料上可看到菌絲生長時,搖瓶1次,使附在瓶壁上的冷凝水被物料吸收,然后把物料攤開,再繼續(xù)培養(yǎng),隨時觀察曲料的干濕程度,視情況加入無菌水調濕度。

    經過一段時間的培養(yǎng),菌種發(fā)育成熟,紅曲色澤深紅,發(fā)酵均勻,無雜菌污染,有紅曲特有的曲香味。

    將曲料倒出,在40~45℃下進行烘干或在太陽下曝曬,曬干后,用粉碎機粉碎,干凈塑料袋裝好,放在干燥陰涼處保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.4.6 酯化力測試

    用吸管吸取1.5 mL(約1.5%)己酸于500 mL三角瓶中,再加入25 mL(約25%)無水乙醇,稍加振蕩后加入75 mL蒸餾水,充分混勻,再稱取紅曲粉10 g(絕干曲)于三角瓶中,搖勻后用塞子塞上,置于35℃恒溫箱內保溫酯化7 d。將酯化7 d后的試樣倒入500 mL蒸餾燒瓶中,量取50 mL30%乙醇溶液充分洗滌盛裝酯化液的三角瓶,將洗液一并倒入蒸餾燒瓶中蒸餾,取蒸餾液50 mL,用色譜儀分析蒸餾液中己酸乙酯含量。

    1.4.7 氣相色譜條件

    色譜柱:DNP不銹鋼填充柱(3 m×3 mm),柱溫:93℃,進樣口溫度:200℃,檢測器溫度:200℃,載氣:高純氮,柱頭壓0.3 MPa,氫氣壓力:0.06 MPa,空氣壓力:0.05 MPa,進樣量為0.3 μL。

    1.4.8 紅曲擴大生產[2]

    大米和麩皮混合培養(yǎng)基:干料大米∶麩皮為2∶1,浸泡24 h的大米(米∶水=1∶1)和按1∶1比例加入蒸餾水拌濕的大片麩皮,按每6斤干料放入一個匾配料,用紗布包裹放在托盤中,常壓蒸1 h,然后冷卻至35℃,送入培菌室。

    大米培養(yǎng)基:大米用蒸餾水浸泡24 h(米∶水=1∶1),按每6斤干料放入一個匾配料,常壓蒸1 h,然后冷卻至35℃,送入培菌室。

    將托盤中的熟料均勻的鋪在培菌室的匾上,厚度3~4 cm,下鋪2層醫(yī)用紗布(已滅菌),倒出三角瓶液體種曲與物料充分混合,鋪平,接種比例25%,注意接種過程中盡量避免手與物料接觸。

    接種后,保證品溫在30℃左右,每天上下午觀察室溫、品溫及物料的干濕情況,隨時調整室溫,控制品溫不要超過35℃,及時噴灑無菌水。物料色澤深紅,發(fā)酵均勻,無雜菌污染,有曲香味,說明菌種發(fā)育成熟,即可烘干,粉碎。

    2 結果與分析

    2.1 酯化紅曲的微生物分離結果

    此次分離的培養(yǎng)基是麥芽汁培養(yǎng)基和添加了乳酸和乙醇的改良麥芽汁培養(yǎng)基,分離出了紅曲霉、根霉、毛霉、曲霉、青霉等霉菌(見表1),這說明酯化紅曲是由紅曲霉等多種產酯功能菌混合培養(yǎng)制成,是復合菌劑、生物酶和活菌體的生態(tài)混合體。

    表1 酯化紅曲中分離出的霉菌

    2.2 菌落形態(tài)和個體形態(tài)觀察

    圖1、圖2、圖3、圖4是此次從酯化紅曲中分離出來的1號菌株和6號菌株。

    在麥芽汁培養(yǎng)基上培養(yǎng)1號菌株,初期為白色圓形絨毛狀,繼續(xù)培養(yǎng)菌落中央變?yōu)闇\橙色,隨著培養(yǎng)時間的變長,菌落中央的顏色越來越深,呈深橙色,背面顏色更深些,表面絨毛狀氣生菌絲,較易挑取。菌絲有橫隔、分枝,分生孢子著生在菌絲及其分枝的頂端,單生或呈鏈、球形。8號菌株和12號菌株的菌落形態(tài)與1號一致(見圖1和圖3)。

    6號菌株在麥芽汁培養(yǎng)基上培養(yǎng)初期為白色,以后呈紫紅色,色素分泌到培養(yǎng)基中,背面也是紫色。邊緣整齊,輻射狀,有皺折。表面有膜狀蔓延生長物,干燥、不易挑取。菌絲體有橫隔、分枝,閉囊殼為球形,子囊球形。分生孢子著生在菌絲及其分支的頂端,單生或成鏈、球形(見圖2和圖4)。

    這些菌株形態(tài)都與紅曲霉屬菌落特征一致,應屬于紅曲霉屬的兩個種,尤其是6號菌株與紫紅曲霉的形態(tài)特征描述基本一致,如需要確定到種,還需通過分子測序技術進一步鑒定。

    圖1 1號菌株宏觀形態(tài)

    2.3 三角瓶培養(yǎng)紅曲酯化力測定結果

    三角瓶培養(yǎng)選取大米培養(yǎng)基、麩皮培養(yǎng)基和大米、麩皮混合培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)15 d以后,曬干、粉碎,測水分、酯化力,色譜分析結果見表2。

    從實驗結果看,大米培養(yǎng)基和混合培養(yǎng)基上的紅曲霉發(fā)酵產物酯化力相當,都明顯高于純麩皮培養(yǎng)基,可能是麩皮的營養(yǎng)不足以滿足紅曲霉的生長代謝。從4株菌株發(fā)酵產物酯化力來看,相同培養(yǎng)基比較,菌株之間無顯著差異。純麩皮培養(yǎng)的酯化力比外購紅曲略高,純大米和混合培養(yǎng)的酯化力顯著高于外購紅曲。

    圖2 6號菌株宏觀形態(tài)

    圖3 1號菌株微觀形態(tài)

    圖4 6號菌株微觀形態(tài)

    三角瓶培養(yǎng)選取大米培養(yǎng)基、麩皮培養(yǎng)基和大米、麩皮混合培養(yǎng)基培養(yǎng)。

    ⑤大米培養(yǎng)基上接種的菌株3 d后,全部產紅色素或紫紅色色素。

    表2 三角瓶培養(yǎng)紅曲酯化力測定結果 (mg/100 mL)

    ⑤麩皮及混合培養(yǎng)基1號、8號、12號菌株都長有白色菌絲,6號菌株產少量紫紅色色素。

    ⑤混合培養(yǎng)基長勢良好,布滿白色菌絲,到后期因營養(yǎng)匱乏,漸漸停止生長。

    ⑤麩皮培養(yǎng)基上菌絲長勢較弱,較開始幾天長勢緩慢,瓶壁上有小水珠生成,有可能是菌體自身新陳代謝產生的水分,所以后期不用再噴水,而需排濕。

    ⑤大米培養(yǎng)基到后期菌絲生長旺盛,并產大量紅色或紫色色素,從酯化力來看,大米培養(yǎng)基較適宜于紅曲霉生長,麩皮培養(yǎng)基營養(yǎng)不足以滿足紅曲霉的生長代謝,酯化力較低。隨機選取的4株菌株同培養(yǎng)基之間酯化力也無顯著差異。

    2.4 第一批擴大培養(yǎng)紅曲酯化力測定結果

    根據三角瓶培養(yǎng)的結果可以看出,大米培養(yǎng)基和大米、麩皮混合培養(yǎng)基培養(yǎng)的紅曲酯化力較高,單純麩皮培養(yǎng)基營養(yǎng)匱乏,所以此次擴大培養(yǎng)選取大米培養(yǎng)基和混合培養(yǎng)基培養(yǎng)。培養(yǎng)7 d左右,菌絲在料中基本長透,且已產紅色色素,即已成熟,取出晾干、粉碎,做酯化力測定,色譜分析結果見表3。

    此次培養(yǎng),由于溫濕度沒有控制好,除12號菌株大米培養(yǎng)基正常發(fā)酵沒有污染外,其他所有菌株培養(yǎng)發(fā)酵的培養(yǎng)基全部都有不同程度的腐爛、發(fā)臭,晾干、粉碎后,測其酯化力,12號菌株的大米培養(yǎng)發(fā)酵產物酯化力明顯高于其他培養(yǎng)基發(fā)酵產物。從此次污染的結果也可以看出,污染越嚴重,酯化力越低,說明紅曲霉相對于其他霉菌、細菌在酯化能力上還是起到很大作用的。

    表3 第一批擴大培養(yǎng)紅曲酯化力測定結果(mg/100 mL)

    根據三角瓶培養(yǎng)的結果,第一次擴大培養(yǎng)選取大米培養(yǎng)基和混合培養(yǎng)基培養(yǎng),菌種仍是以上4株菌株。

    在第一次擴大培養(yǎng)過程中,發(fā)現(xiàn)混合培養(yǎng)基保濕性好,前期產熱快,說明紅曲霉在其中代謝生長快,由于沒有及時降低品溫及室溫,中后期菌絲已停止生長,物料發(fā)臭。大米培養(yǎng)基開始水分低,鎖水性差,后期培養(yǎng)過程中很容易蒸發(fā)造成水分散失,因此要頻繁觀察其干濕情況,以免影響生長,到中后期品溫突升,沒有及時降低室溫及品溫,導致此次擴大培養(yǎng)物料大多發(fā)臭,因此酯化力也相當?shù)?,只?2號菌株在大米培養(yǎng)基上培養(yǎng)沒有污染,溫濕度控制適宜紅曲霉生長,酯化力相應的要高些。

    2.5 第二批擴大培養(yǎng)紅曲酯化力測定結果

    第一次擴大培養(yǎng)只有12號菌株在大米培養(yǎng)基上培養(yǎng)沒有污染,長勢很好,酯化力也很高,其他都已經有污染;總體來看大米、麩皮混合培養(yǎng)基培養(yǎng)的紅曲酯化力不如大米培養(yǎng)基培養(yǎng)的好,所以此次全部選用大米培養(yǎng)基培養(yǎng),色譜分析結果見表4。

    此次擴大培養(yǎng),在第一次失敗的基礎上,總體來說溫濕度控制還不錯,酯化力測試結果都挺高。比較各菌株在大米培養(yǎng)基上的發(fā)酵產物,1號菌株和6號菌株己酸乙酯都在790 mg/100 mL左右,12號菌株和混合菌株己酸乙酯都在850 mg/100 mL左右,相對于同等條件下的外購紅曲均高很多。

    表4 第二批擴大培養(yǎng)紅曲酯化力測定結果(mg/100 mL)

    綜合三角瓶培養(yǎng)和第1次擴大培養(yǎng)的紅曲酯化力發(fā)現(xiàn),大米培養(yǎng)基是較適宜紅曲霉生長的培養(yǎng)基,第2次擴大培養(yǎng)全部選用大米培養(yǎng)基培養(yǎng)。

    大米要蒸透,軟而不黏,剛接種時室溫不能太高,由于培養(yǎng)基溫度高,若室溫也高,加上菌種自身生長代謝產熱,容易導致品溫上升過快,菌絲剛長出又因溫度高而被抑制。漸漸地大米會在高溫環(huán)境中慢慢腐爛,培養(yǎng)基中氧氣漸漸變少,新長出的菌絲也因無氧氣及高溫而被抑制生長。因此,接種后的第2天要根據品溫及時地調整室溫。掌握好這一點,后期主要觀察其干濕情況,調節(jié)干濕度。5~6 d的培養(yǎng),曲外觀色澤鮮紅或白色,手抓起來很輕,有特有的曲香味,即已成熟,取出,晾干,粉碎,做酯化力測試,色譜分析結果顯示,酯化力比外購紅曲要高出2倍多。

    3 結論

    此次試驗以酯化紅曲為含菌源,分離純化出酯化力強的功能菌種紅曲霉。經形態(tài)觀察,初步確定此次分離出的紅曲菌種為兩種紅曲霉。選取其中4株為試驗菌株,在不同的培養(yǎng)底物中,經固態(tài)純種發(fā)酵制成固態(tài)紅曲,從氣相色譜儀測定其酯化力大小來看,大米較適宜于紅曲霉生長代謝。在用大米作為培養(yǎng)底物時,大米要蒸透,軟而不黏,剛接種紅曲霉時,要注意室溫的控制,根據品溫情況及時調節(jié)室溫,掌握好這一點是重中之重,后期主要觀察其干濕情況,調節(jié)干濕度。另外,從三角瓶培養(yǎng)和第2次擴大培養(yǎng)結果看,選取的4株菌株同培養(yǎng)底物之間酯化力無顯著差異。

    接下來的試驗要看在酒醅中能否提高出酒率,達到“增己降乳”的效果,如果一切順利,則本試驗應該針對紅曲霉的培養(yǎng)條件、酯化過程條件控制等方面繼續(xù)進行研究。

    [1]胡曉龍,趙東,葛隱,等.五糧液大曲中產酯化酶紅曲霉的分離及酯化酶的純化[J].釀酒,2011(3):35-38.

    [2]程江紅,何汝良,程江浩,等.酯化紅曲工藝研究及在釀

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