韓 丹,童亞楠,賈銀平,唐夢(mèng)靈,曹劉素,張竹君,潘 渠
(1.成都醫(yī)學(xué)院 病原生物學(xué)教研室, 四川 成都 610500;2.陸軍軍醫(yī)大學(xué)(第三軍醫(yī)大學(xué)) 醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)系臨床微生物及免疫學(xué)教研室, 重慶 400038)
結(jié)直腸癌(colorectal cancer,CRC)是全球第三大癌位居癌相關(guān)死亡原因的第二。腫瘤的復(fù)發(fā)且發(fā)生轉(zhuǎn)移是導(dǎo)致治療失敗和死亡的主要原因[1- 2]。大量研究證實(shí)長(zhǎng)鏈非編碼 RNA(long non-coding RNA,lncRNA)在腫瘤的發(fā)生發(fā)展、侵襲和轉(zhuǎn)移的過(guò)程里發(fā)揮了十分重要的作用。其中長(zhǎng)度為379 bp,位于人 6 號(hào)染色體的lncRNA EVADR 是與結(jié)直腸癌有密切相關(guān)性的 lncRNA。值得注意的是 EVADR 的高表達(dá)提示預(yù)后不良,其表達(dá)水平與結(jié)直腸癌患者生存時(shí)間呈負(fù)相關(guān)[3]。而 lncRNA EVADR 在結(jié)直腸癌發(fā)生發(fā)展中的作用及調(diào)控機(jī)制目前尚不清楚。因此,本研究構(gòu)建過(guò)表達(dá) EVADR 的結(jié)直腸癌細(xì)胞通過(guò)利用慢病毒技術(shù),觀察其對(duì)結(jié)直腸癌細(xì)胞增殖和遷移能力的影響,并通過(guò)實(shí)驗(yàn)研究其對(duì)上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial to mesenchymal transition,EMT)及參與調(diào)節(jié)分子表達(dá)的影響,深入探討結(jié)直腸癌細(xì)胞增殖及轉(zhuǎn)移中 EVADR 的潛在作用機(jī)制,為結(jié)直腸癌的早期診斷和治療提供科學(xué)理論和實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1.1 主要試劑:慢病毒表達(dá)載體的構(gòu)建和包裝(上海漢恒生物科技有限公司);嘌呤霉素;DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清和胰蛋白酶(Gibco公司);Primer Script RT Reagent Kit (TaKaRa公司);SYBR-GREEN Real-time PCR MIX (Toyobo公司);Trizol(Invitrogen公司); ECL Western blot substrate (Pierce公司);PVDF 膜(GE公司);兔抗 E-cadherin (24E10) 和兔抗 β-actin(Cell Signaling公司);HRP 標(biāo)記的山羊抗兔抗體(北京中杉金橋生物技術(shù)公司);Transwell小室(BD 公司);CCK- 8試劑盒(東仁化學(xué)科技有限公司)。
1.1.2 細(xì)胞:人結(jié)直腸癌細(xì)胞系 HCT116 和 LOVO(中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù))。
1.2.1 HCT116和LOVO 細(xì)胞的培養(yǎng)與慢病毒感染:人結(jié)直腸癌 HCT116和LOVO細(xì)胞培養(yǎng)環(huán)境為含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)。取增生至對(duì)數(shù)期的 HCT116和LOVO細(xì)胞,分別按 1×105個(gè)/孔接種于24孔板,待細(xì)胞匯合率為50%左右,加入MOI=15病毒液同時(shí)加入終濃度為6 mg/L的Polybrene,感染24 h后更換新鮮完全培養(yǎng)液,繼續(xù)37 ℃培養(yǎng),感染48 h后加入1 mg/L的 Puromycin 篩選7 d,獲得穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的細(xì)胞系。實(shí)驗(yàn)組設(shè)置:HCT116-EVADR和LOVO-EVADR (轉(zhuǎn)染lncRNA EVADR的靶向組),HCT116-NC和LOVO-NC (轉(zhuǎn)染GFP的陰性對(duì)照組)。
1.2.2 CCK- 8法檢測(cè)細(xì)胞增殖:將 HCT116、LOVO兩組(NC組和EVADR組)穩(wěn)定轉(zhuǎn)染后對(duì)數(shù)增殖期細(xì)胞按 3×105個(gè)/孔接種 96 孔板,每組設(shè)置5個(gè)復(fù)孔,同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照為不含細(xì)胞的培養(yǎng)基,培養(yǎng)環(huán)境為:37 ℃、5% CO2、95%濕度,24 h后分別在培養(yǎng)孔加入 10 μL CCK- 8 檢測(cè)試劑,37 ℃孵育2 h,酶標(biāo)儀上測(cè)定吸光度于A450處,以吸光度值為縱坐標(biāo),時(shí)間為橫坐標(biāo),繪制細(xì)胞增殖曲線。
1.2.3 Transwell小室法檢測(cè)各組細(xì)胞遷移能力:將穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的 HCT116、LOVO兩組(NC組和EVADR組)細(xì)胞以 1×105個(gè)/孔加入孔徑為 8 μm的Transwell小室,用來(lái)進(jìn)行細(xì)胞遷移能力的檢測(cè)。其上層小室培養(yǎng)液加入不含血清的 DMEM 培養(yǎng)基,下層小室加入含10%胎牛血清的培養(yǎng)基。常規(guī)培養(yǎng)18 h后,將上下室培養(yǎng)基吸盡,棉簽干凈擦拭上室細(xì)胞。10% 甲醛固定細(xì)胞后用結(jié)晶紫染色,倒置顯微鏡250倍下分別計(jì)數(shù)5個(gè)視野的穿膜細(xì)胞均數(shù)。
1.2.4 實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)lncRNA EVADR和間質(zhì)化標(biāo)志物 Snail、Slug、ZEB1和ZEB2的表達(dá):穩(wěn)定轉(zhuǎn)染后檢測(cè)兩組細(xì)胞(NC組和EVADR組) lncRNA EVADR表達(dá)水平。Trizol 收集2組細(xì)胞,提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。每個(gè)樣品設(shè)3個(gè)復(fù)孔,所有反應(yīng)均重復(fù)3次。用SYB Green染料法檢測(cè)lncRNA表達(dá)水平,總反應(yīng)體系10 μL(SYBR Green 5 μL,上下游引物各 0.5 μL,cDNA 模板2 μL,DEPC-H2O 2 μL)。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性30 s,95 ℃變性5 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個(gè)循環(huán)。實(shí)時(shí)定量 PCR引物用 Primer Premier 5.0設(shè)計(jì),于上海生工生物工程有限公司合成。反應(yīng)引物見(jiàn)表 1。lncRNA EVADR的表達(dá)水平以 2-△△Ct計(jì)算,以 β-actin作為內(nèi)參。
表1 EVEDR、Snail、 Slug、 ZEB1、 ZEB2 real time-PCR引物
1.2.5 Western blot 檢測(cè)蛋白的表達(dá):收集穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的 HCT116和LOVO兩組(NC組和EVADR組)細(xì)胞于冰上用冷PBS液清洗細(xì)胞3次,加入蛋白酶抑制劑,離心后棄除沉淀,BCA 法測(cè)定蛋白質(zhì)含量。加入上樣緩沖液后,98 ℃蛋白變性 5 min;8% SDS-PAGE 膠電泳,用濕轉(zhuǎn)膜法轉(zhuǎn)至PVDF膜上,封閉液室溫環(huán)境下封閉2 h,一抗4 ℃孵育過(guò)夜(稀釋倍數(shù):E-cadherin 1∶10 000,β-actin 1∶1 000),二抗室溫 1.5 h (稀釋倍數(shù):1∶4 000)。在化學(xué)與熒光成像儀下加ECL發(fā)光液曝光,結(jié)果處理用Image Lab 軟件分析。
慢病毒感染 HCT116和LOVO細(xì)胞3 d后,熒光顯微鏡下觀察,干擾效率大于90%(圖1)。感染 HCT116和LOVO的最佳 MOI 值為15。
HCT116 cells infected with EVEDR-GFP lentivirus in fluorescence images (A) and microscopy images (B); LOVO cells infected with EVEDR-GFP lentivirus in fluorescence images (C) and microscopy images (D)圖1 慢病毒感染HCT116,LOVO細(xì)胞的熒光強(qiáng)度Fig 1 Fluorescence intensity of HCT116 and LOVO cells after lentivirus infection (×40)
blank.no lentivirus infection; lentivirus control.NC-lentivirus infection; lentivirus EVEDR.EVEDR-lentivirus infection; *P<0.05 compared with blank and lentivirus control group圖2 qPCR驗(yàn)證HCT116細(xì)胞和LOVO細(xì)胞中EVEDR的過(guò)表達(dá)效果Fig 2 Effect of overexpression of lncRNA EVEDR after lentivirus infection by qPCR (±s, n=3)
與 HCT116-NC和LOVO-NC相比,HCT116-EVADR和LOVO-EVADR中l(wèi)ncRNA EVADR表達(dá)水平均顯著升高(P<0.05)(圖2)。
與 HCT116-NC和LOVO-NC細(xì)胞組對(duì)比,HCT116-EVADR和LOVO-EVADR細(xì)胞組增殖能力明顯增強(qiáng)(P<0.001)(圖3)。
HCT116和LOVO細(xì)胞過(guò)表達(dá)lncRNA EVADR后,與HCT116-NC和LOVO-NC細(xì)胞組對(duì)比,HCT116-EVADR和LOVO-EVADR細(xì)胞組穿過(guò)Transwell微孔濾膜的細(xì)胞數(shù)量顯著升高(P<0.05)(圖4)。
與 HCT116-NC和LOVO-NC細(xì)胞組對(duì)比,HCT116-EVADR和LOVO-EVADR細(xì)胞組中上皮化標(biāo)志物E-cadherin表達(dá)明顯減少(圖5),而間質(zhì)化標(biāo)志物Snail、Slug、ZEB1 和 ZEB2表達(dá)增多(圖6)。
The effect on proliferation of HCT116 cells(A) and LOVO cells(B);*P<0.001 compared with lentivirus control圖3 過(guò)表達(dá)lncRNA EVEDR對(duì)HCT116細(xì)胞和LOVO細(xì)胞增值的影響Fig 3 Effect of lncRNA EVEDR overexpression on proliferation of HCT116 cells and LOVO cells (±s, n=6)
The transwell cell assay of HCT116 cells(A) and LOVO cells(B);*P<0.001 compared with lentivirus control圖4 Transwell 小室檢測(cè)過(guò)表達(dá)lncRNA EVEDR后HCT116細(xì)胞和LOVO細(xì)胞遷移能力
the expression level of E-cadherin in EVEDR-Lentivirus infection group of HCT116 cells(B) and LOVO cells(D) were lower than NC-Lentivirus infection group of HCT116 cells(A) and LOVO cells(C);*P<0.05 compared with lentivirus control
The relative mRNA level of BMT transcription factors in HCT116 cells(A) and LOVO cells(B); *P<0.05 compared with lentivirus control
中國(guó)每年新增結(jié)直腸癌患者高達(dá)33萬(wàn)例,死亡人數(shù)就有16萬(wàn)例。其中20%的患者確診時(shí)因?yàn)橐殉霈F(xiàn)轉(zhuǎn)移而失去了手術(shù)的最佳時(shí)機(jī),約有50%的患者術(shù)后第2年就因?yàn)槟[瘤的復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移而死亡[4]。因此,闡明結(jié)直腸癌發(fā)生發(fā)展機(jī)制對(duì)其早期診斷和綜合防治具有重要的臨床意義。
近年來(lái)越來(lái)越多的研究發(fā)現(xiàn) lncRNA在結(jié)直腸癌中起著重要的調(diào)控作用,其有望成為新的腫瘤標(biāo)志物和治療靶點(diǎn)。lncRNA是一類(lèi)長(zhǎng)度大于200 nt的非蛋白編碼RNA,占到非編碼 RNA的80%以上[5- 6]。在前期研究中,本研究收集25例結(jié)直腸癌患者臨床標(biāo)本,采用高通量基因芯片檢測(cè)分析腫瘤組織及對(duì)應(yīng)癌旁組織中l(wèi)ncRNA表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn) EVADR差異最為顯著。已有報(bào)道表明EVADR與結(jié)直腸癌密切相關(guān),EVADR高表達(dá)提示預(yù)后不良,其表達(dá)水平與癌患者生存時(shí)間呈負(fù)相關(guān)[3]。本研究通過(guò)在結(jié)直腸癌細(xì)胞中穩(wěn)定過(guò)表達(dá) EVADR,結(jié)果發(fā)現(xiàn)與 HCT116-NC和LOVO-NC細(xì)胞組對(duì)比,HCT116-EVADR和LOVO-EVADR細(xì)胞組增殖和遷移能力均有不同幅度的增高,并且過(guò)表達(dá) EVADR 的結(jié)直腸癌細(xì)胞上皮化標(biāo)志物 E-cadherin 表達(dá)明顯減少,而間質(zhì)化標(biāo)志物 Snail、Slug、ZEB1和ZEB2 表達(dá)增多。E-cadherin 表達(dá)的降低標(biāo)志細(xì)胞發(fā)生上皮間質(zhì)化(EMT),腫瘤分化程度低,并且更加容易發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移,提示患者預(yù)后不良[7- 9],而 lncRNA是從Snail和Slug基因的下游區(qū)域產(chǎn)生,可增加這兩種 EMT 誘導(dǎo)物的表達(dá)[10]。這就表明,lncRNA EVADR很有可能通 EMT調(diào)節(jié)了結(jié)直腸癌細(xì)胞的遷移。
上皮細(xì)胞發(fā)生 EMT 時(shí),細(xì)胞基質(zhì)、基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)和細(xì)胞間的連接黏附成分均會(huì)降低,細(xì)胞骨架的重構(gòu)蛋白明顯增多[7- 8]。已有研究陸續(xù)發(fā)現(xiàn)多種 lncRNA 通過(guò)靶向 Snail、ZEB 和Twist 等轉(zhuǎn)錄因子以及E-cadherin 等重要的細(xì)胞連接蛋白來(lái)調(diào)控 EMT的發(fā)生和發(fā)展,HOTAIR在結(jié)直腸癌中促進(jìn)EMT進(jìn)程可能通過(guò)Snail,顯著促進(jìn)結(jié)直腸癌細(xì)胞遷移和轉(zhuǎn)移[11],BANCR可能通過(guò)影響 MEK 信號(hào)通路來(lái)誘導(dǎo)結(jié)直腸癌細(xì)胞 EMT 作用[12]。此外,最新的結(jié)果表明被 TGF- β活化的lncRNA-ATB通過(guò)上調(diào)ZEB1和ZEB2,誘導(dǎo)肝癌細(xì)胞的EMT并促進(jìn)侵襲和轉(zhuǎn)移[13- 14],這些當(dāng)前的研究提供了非編碼RNA在上皮可塑性生物調(diào)解中起重要和復(fù)雜作用的證據(jù),并且可以作為治療癌的潛在有效靶標(biāo)候選物。由于lncRNA種類(lèi)繁多,還有許多 EMT 相關(guān)lncRNA尚未被認(rèn)識(shí)和研究,在結(jié)直腸癌中的作用尚未闡明,深入研究 EMT 相關(guān) lncRNA 在腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移中的作用和機(jī)制,可以進(jìn)一步認(rèn)識(shí)和改善腫瘤治療。
總之,本研究結(jié)果證實(shí)過(guò)表達(dá) lncRNA EVADR促進(jìn)了結(jié)直腸癌 HCT116、LOVO細(xì)胞的增殖和遷移,并且提示EVADR可能通過(guò)調(diào)節(jié)EMT來(lái)實(shí)現(xiàn)腫瘤的遷移作用。該結(jié)果為深入研究結(jié)直腸癌發(fā)生和發(fā)展的分子機(jī)制提供了重要的線索。
[1] Jemal A, Bray F, Center MM,etal. Global cancer statistics[J]. CA Cancer J Clin, 2011, 61:69- 90.
[2] Calon A, Espinet E, Palomo-Ponce S,etal. Dependency of colorectal cancer on a TGF-beta-driven program in stromal cells for metastasis initiation[J]. Cancer Cell, 2012, 22:571- 584.
[3] Gibb EA, Warren RL, Wilson GW,etal. Activation of an endogenous retrovirus-associatedc long non-coding RNA in human adenocarcinoma[J]. Genome Med, 2015,7:22,doi:10.1186/s13073- 015- 0142- 6.
[4] He YJ, Li WL, Liu BH,etal. Identification of differ-ential proteins in colorectal cancer cells treated with caffeic acid phenethyl ester[J]. World J Gastroenterol, 2014, 20:11840- 11849.
[5] Guttman M, Rinn JL. Modular regulatory principles of large non-coding RNAs[J]. Nature, 2012, 482:339- 346.
[6] Ponting CP, Oliver PL, Reik W. Evolution and functions of long non-coding RNAs[J].Cell, 2009, 136:629- 641.
[7] Pena C, Garcia JM, Silva J,etal. E-cadherin and vitamin D receptor regulation by SNAIL and ZEB1 in colon cancer: clinicopathological correlations[J]. Hum Mol Genet, 2005, 14:3361- 3370.
[8] He X, Chen Z, Jia M,etal. Downregulated E-cadherin expression indicates worse prognosis in Asian patients with colorectal cancer: evidence from meta-analysis[J]. PLoS One, 2013,8: e70858.doi:10.1371/journal.pone.0070858.
[9] Behrens J, Mareel MM, Van Roy FM,etal. Dissecting tumor cell invasion:epithelial cells acquire invasive properties after the loss of uvomorulin-mediated cell-cell adhesion[J]. J Cell Biol, 1989, 108:2435- 2447.
[10] Orom UA, Derrien T, Beringer M,etal. Long noncoding RNAs with enhancer-like function in human cells[J]. Cell, 2010, 143:46- 58.
[11] Tsuda M, Masuda T, Tozaki-Saitoh H,etal. P2X4 receptors and neuropathic pain[J]. Front Cell Neurosei, 2013,7:191.doi:10.3389/fncel.2013.00191.
[12] Ohata Y, Ogata S, Nakanishi K,etal. Expression of P2X4R mRNA and protein in rats with hypobarie hypoxia-indueed pulmonary hypertension[J]. Cire J, 2011, 75:945- 954.
[13] Fan Y, Shen B, Tan M,etal. TGF-beta-induced upregulation of malat1 promotes bladder cancer metastasis by associating with suz12, Clin[J]. Cancer Res, 2014, 20:1531- 1541.
[14] Yuan JH, Yang F, Wang J,etal. A long noncoding RNA activated by TGF-beta promotes the invasion-metastasis cascade in hepatocellular carcinoma[J]. Cancer Cell, 2014, 25:666- 681.