南明君,顧婷婷,周 洋,賈楠楠,王 旭
(遼寧科技大學(xué) 化學(xué)工程學(xué)院,鞍山114051)
生物聚合離子膜(BPICM)是聚合離子膜的一種,是由帶相反電荷的生物聚合離子材料通過(guò)靜電作用而形成。BPICM不僅具備聚合離子膜的制作簡(jiǎn)單、穩(wěn)定性強(qiáng)、選擇性高和滲透性強(qiáng)等特點(diǎn),還具有良好的生物相容性。BPICM已被用于催化反應(yīng)膜和生物大分子識(shí)別膜等生物感應(yīng)界面的構(gòu)筑[1-6]。由于DNA具有特異的分子識(shí)別能力以及一定的導(dǎo)電性,且DNA分子是帶負(fù)電荷的聚合陰離子,可以與帶正電荷的天然聚合陽(yáng)離子材料形成DNA BPICM,本課題組已經(jīng)成功地將DNA BPICM應(yīng)用于電化學(xué)生物傳感器分子識(shí)別界面的構(gòu)筑[5-6]。由于DNA BPICM本身不具備電化學(xué)活性,利用一些電化學(xué)電子媒介體分子(鐵氰化鉀、亞甲基藍(lán)等)及具有催化活性的過(guò)渡金屬離子(Cu2+、Ni2+等)與DNA的特異性結(jié)合作用,可以將這些分子固定在BPICM表面,從而實(shí)現(xiàn)DNA BPICM作為電化學(xué)活性和催化活性界面的構(gòu)筑[1-2,4]。
人體內(nèi)許多生化反應(yīng)產(chǎn)物含有過(guò)氧化氫,當(dāng)過(guò)氧化氫含量過(guò)多時(shí)可以加速細(xì)胞老化,DNA損傷,誘發(fā)基因突變。同時(shí),測(cè)定過(guò)氧化氫也是測(cè)定其他產(chǎn)生過(guò)氧化氫中間產(chǎn)物的基礎(chǔ)。目前過(guò)氧化氫主要的測(cè)定方法包括高效液相色譜法、熒光光度法和電化學(xué)法等。電化學(xué)法由于具有靈敏度高、響應(yīng)快速、成本較低的特點(diǎn),廣泛應(yīng)用在過(guò)氧化氫的檢測(cè)中[7-19]。近些年,各種納米材料修飾電極,如碳納米管、石墨烯、納米金屬及其氧化物等[7-14]被用于過(guò)氧化氫的高敏感度檢測(cè),但納米材料的增加對(duì)人體以及環(huán)境又帶來(lái)一定的危害[7-11]。
本工作利用DNA與天然聚合陽(yáng)離子-殼聚糖形成DNA-CTS BPICM,通過(guò)形成DNA-金屬離子配合物將鐵離子固定在玻碳電極表面,形成DNAFe/CTS BPICM修飾電極,研究了該修飾電極的電活性和催化活性。在此基礎(chǔ)上,發(fā)展了一種基于生物材料的過(guò)氧化氫電化學(xué)傳感器。
CHI 832型電化學(xué)分析儀;三電極系統(tǒng):玻碳圓盤(pán)電極(GCE,直徑3mm)為工作電極,銀/氯化銀(飽和氯化鉀)電極為參比電極,鉑絲電極(直徑1mm)為輔助電極;ΣIGMA/HD型掃描電子顯微鏡(SEM)。
鮭魚(yú)精DNA溶液:1.00g·L-1。
三氯化鐵溶液:3.00mmol·L-1。
殼聚糖(CTS)溶液:0.50g·L-1。
磷酸緩沖溶液(PBS):0.1mol·L-1磷酸氫二鉀溶液與磷酸二氫鉀溶液配制pH 7.0的磷酸緩沖溶液。
試劑均為分析純,試驗(yàn)用水為二次去離子水。
玻碳電極分別用納米研磨墊以及加研磨粉的研磨墊拋光3min,成鏡面,在水中超聲除去電極表面的雜質(zhì),再用水沖洗后置于室溫干燥。將1.00g·L-1DNA溶液與1.00mmol·L-1三氯化鐵溶液振蕩混合后,得DNA-Fe(Ⅲ)配合物(DNA-Fe)。移取DNA-Fe 20μL滴涂于經(jīng)拋光的GCE表面,然后滴加0.50g·L-1CTS溶液10μL,罩在1L燒杯下,于室溫(約20℃)下干燥22h,用水沖去表面吸附的雜質(zhì),在4℃保存,制得 DNA-Fe/CTS修飾電極??瞻讓?duì)比的DNA/CTS修飾電極以相同方法制備。
以各修飾電極為工作電極、銀/氯化銀為參比電極及鉑電極為輔助電極。置于pH 7.0的PBS 10mL中,在試驗(yàn)前通入氮?dú)?0min,進(jìn)行循環(huán)伏安法(CV)和安培-時(shí)間曲線(xiàn)法(i-t)檢測(cè)。
DNA-Fe/CTS BPICM 制備過(guò)程同電極制備。掃描電子顯微鏡(SEM)分析之前,在電極表面鍍一層10nm的鉑金。用同樣的方法制備表征DNA/CTS BPICM。
DNA/CTS BPICM 和 DNA-Fe/CTS BPICM的SEM圖片見(jiàn)圖1。
圖1 DNA/CTS BPICM 與DNA-Fe/CTS BPICM 的SEM 圖片F(xiàn)ig.1 SEM images of DNA/CTS BPICM and DNA-Fe/CTS BPICM
由圖1可知:DNA/CTS BPICM顯示較為光滑的表面,固定了DNA-Fe(Ⅲ)配合物之后顯示為較粗糙的顆粒狀表面。
裸 電 極 上 FeCl3、DNA-Fe/GCE、DNA-Fe/CTS/GCE的循環(huán)伏安圖見(jiàn)圖2。
圖2 Fe/GCE、DNA-Fe/GCE和DNA-Fe/CTS/GCE的循環(huán)伏安圖Fig.2 CV-grams of Fe/GCE,DNA-Fe/GCE and DNA-Fe/CTS/GCE
結(jié)果表明:在-0.4~0.5V內(nèi),裸電極上三氯化鐵的CV掃描曲線(xiàn)出現(xiàn)了一對(duì)氧化還原峰(勢(shì)電位為-0.03V),由文獻(xiàn)[20]可知此氧化還原峰來(lái)自于Fe3+/Fe2+電對(duì);當(dāng)與DNA共存時(shí),此氧化還原峰發(fā)生負(fù)移(勢(shì)電位為-0.064V),峰電流增大,根據(jù)文獻(xiàn)[21]提出的,勢(shì)電位發(fā)生負(fù)移,表明Fe3+與DNA形成DNA-Fe配合物;DNA-Fe/CTS/GCE循環(huán)伏安曲線(xiàn)出現(xiàn)了一對(duì)明顯的氧化還原峰(圖2、圖3),氧化還原峰電位分別為Epa=-0.036V,Epc=-0.095V,勢(shì)電位為-0.065 5V。
在相同條件下,裸GCE和DNA/CTS/GCE都沒(méi)有明顯的氧化還原峰,說(shuō)明DNA和CTS都沒(méi)有明顯的電化學(xué)活性,此氧化還原峰來(lái)源于DNA-Fe配合物在電極表面的氧化還原反應(yīng),表明DNA-Fe配合物被成功地固定在電極表面,見(jiàn)圖3。
對(duì)DNA-Fe/CTS修飾電極連續(xù)掃描50圈,試驗(yàn)結(jié)果表明:其氧化還原峰電流變化不明顯,表現(xiàn)了較好的穩(wěn)定性。ΔEp=│Epa-Epc│=0.059V,與文獻(xiàn)[22]所給59mV相符,表明該反應(yīng)為單電子轉(zhuǎn)移,|Ipa/Ipc|≈1說(shuō)明為準(zhǔn)可逆電對(duì)。
試驗(yàn)也考察了掃描速率為5~500mV·s-1時(shí)對(duì)電極的氧化還原峰的影響,見(jiàn)圖4。
圖3 GCE、DNA/CTS/GCE和DNA-Fe/CTS/GCE的循環(huán)伏安圖Fig.3 CV-grams of GCE,DNA/CTS/GCE and DNA-Fe/CTS/GCE
圖4 DNA-Fe/CTS/GCE在不同掃描速率下的循環(huán)伏安圖Fig.4 CV-grams of DNA-Fe/CTS/GCE with different scanning rates
由圖4可知:在所用的掃描速率范圍內(nèi),峰電位與掃描速率無(wú)關(guān),峰電流隨著掃描速率的增大而增大,且峰電流與掃描速率的一次方成正比,表明該電極表面電化學(xué)反應(yīng)受電子轉(zhuǎn)移控制[23],根據(jù)Laviron方程[24],計(jì)算得到的 DNA-Fe配合物在電極表面的電子轉(zhuǎn)移速率為18.10s-1,大于同樣條件下Fe3+在溶液中的電子轉(zhuǎn)移速率(11.79s-1),表明DNA-Fe在電極表面保持較好的電化學(xué)活性。
DNA-Fe/CTS/GCE在不同酸度下的循環(huán)伏安圖見(jiàn)圖5。
由圖5可知:在pH 6.0~8.0時(shí),DNA-Fe的氧化還原電位隨著溶液pH的增加向負(fù)向移動(dòng),表明DNA-Fe與電極表面發(fā)生的電子轉(zhuǎn)移反應(yīng)有質(zhì)子參與;勢(shì)電位與pH呈線(xiàn)性關(guān)系,斜率為-73.9mV。與理論值-59mV(等電子等質(zhì)子)相當(dāng)[24],為單質(zhì)子參與反應(yīng)。
圖5 DNA-Fe/CTS/GCE在不同酸度下的循環(huán)伏安圖Fig.5 CV-grams of DNA-Fe/CTS/GCE at different acidities
圖6 修飾電極對(duì)過(guò)氧化氫響應(yīng)的循環(huán)伏安圖Fig.6 CV-grams showing respense to H2O2 at the modified electrode
圖6為DNA-Fe/CTS修飾電極對(duì)不同濃度過(guò)氧化氫的電化學(xué)響應(yīng)的循環(huán)伏安圖。當(dāng)溶液中加入過(guò)氧化氫后,DNA-Fe/CTS修飾電極的還原峰電流隨著過(guò)氧化氫濃度的升高而增大,同時(shí)氧化峰電流隨著過(guò)氧化氫濃度的升高而減少。這是由于過(guò)氧化氫的加入使得Fe2+原本在電極表面完成的氧化反應(yīng)轉(zhuǎn)移至溶液中,與過(guò)氧化氫反應(yīng),表明DNA-Fe配合物對(duì)過(guò)氧化氫具有催化活性。電極表面以及溶液中的電化學(xué)反應(yīng)如下:
在此基礎(chǔ)上,利用安培-時(shí)間曲線(xiàn)法考察了修飾電極的還原峰電流增量(ΔI)隨過(guò)氧化氫濃度變化的響應(yīng),見(jiàn)圖7。結(jié)果表明:在-0.20V的工作電位下,隨著溶液中過(guò)氧化氫濃度的增加,DNA-Fe/CTS電極響應(yīng)電流逐漸增大,電極到達(dá)穩(wěn)態(tài)電流的響應(yīng)時(shí)間約為6s。相比之下,裸電極對(duì)過(guò)氧化氫電流較不明顯。表明修飾電極的電化學(xué)響應(yīng)主要來(lái)自于 DNA-Fe/CTS BPICM。
圖7 修飾電極對(duì)過(guò)氧化氫響應(yīng)安培-時(shí)間曲線(xiàn)Fig.7 ΔI-t curve showing response to H2O2at the modified electrode
試驗(yàn)考察了工作電位對(duì)過(guò)氧化氫響應(yīng)的影響,結(jié)果表明:電位在-0.10~-0.35V之間,隨著電位的升高,響應(yīng)電流逐漸增大;電位在-0.20~-0.25V時(shí),響應(yīng)電流逐漸穩(wěn)定。由于在高電位下干擾物質(zhì)會(huì)產(chǎn)生干擾電流,試驗(yàn)選定工作電位為-0.20V。
用DNA-Fe/CTS BPICM修飾電極對(duì)可能干擾物進(jìn)行了檢測(cè)。結(jié)果表明:當(dāng)葡萄糖和尿酸以高于10倍過(guò)氧化氫濃度存在時(shí),兩者都沒(méi)有產(chǎn)生明顯的電流響應(yīng),再添加過(guò)氧化氫后對(duì)電流響應(yīng)仍沒(méi)有影響,說(shuō)明電極對(duì)葡萄糖和尿酸具有較好的抗干擾能力。
試驗(yàn)考察了DNA-Fe/CTS BPICM 修飾電極對(duì)過(guò)氧化氫響應(yīng)的電流隨其濃度的變化情況。結(jié)果表明:過(guò)氧化氫的濃度在0.01~2.0mmol·L-1范圍內(nèi),DNA-Fe/CTS BPICM 修飾電極對(duì)過(guò)氧化氫響應(yīng)的電流與過(guò)氧化氫濃度呈線(xiàn)性關(guān)系,線(xiàn)性回歸方程為y=53.42x+6.985,相關(guān)系數(shù)為0.991 2。檢出限(3S/N)為3μmol·L-1,靈敏度為53.417nA/(mmol·L-1)。
DNA-Fe/CTS BPICM 修飾電極的穩(wěn)定性以及重現(xiàn)性考查結(jié)果表明,5個(gè)電極5次試驗(yàn)測(cè)定的標(biāo)準(zhǔn)偏差為5.6%,具有較好的重現(xiàn)性。電極在4℃下保存,經(jīng)過(guò)30d后其響應(yīng)電流比第一次檢測(cè)降低了12.5%。
表1中對(duì)比了一些納米材料修飾電極對(duì)過(guò)氧化氫的檢測(cè)性能,本試驗(yàn)結(jié)果的線(xiàn)性范圍、檢出限與大多數(shù)無(wú)酶納米材料添加型的修飾電極相當(dāng),但工作電位較低,因此可避免高電位下電活性物質(zhì)的干擾。
表1 過(guò)氧化氫傳感器的檢測(cè)性能對(duì)比Tab.1 Comparison of detection performance of H2O2sensors
本工作利用生物聚合離子膜固定DNA-Fe配合物,構(gòu)筑基于DNA-Fe/CTS BPICM 修飾電極,利用掃描電子顯微鏡、循環(huán)伏安法、安培-時(shí)間曲線(xiàn)法對(duì)聚合離子膜進(jìn)行表征。結(jié)果表明:DNA-Fe/CTS BPICM修飾電極具有良好的電化學(xué)性能,對(duì)過(guò)氧化氫具有很好的催化活性,可以用作以過(guò)氧化氫為中間產(chǎn)物的生化代謝反應(yīng)物檢測(cè),且具有良好的穩(wěn)定性、重現(xiàn)性、生物相容性,有潛在的應(yīng)用價(jià)值。
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理化檢驗(yàn)-化學(xué)分冊(cè)2017年7期