苗瓊晨,聶 晶,吳慧珍,錢(qián)鳴蓉,孫彩霞,李祖光*
(1.浙江工業(yè)大學(xué) 化學(xué)工程學(xué)院,杭州310014; 2.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)研究所,杭州310021)
蜂蜜作為人們?nèi)諠u喜愛(ài)的養(yǎng)生產(chǎn)品越來(lái)越受歡迎,但由于養(yǎng)蜂過(guò)程中,蜂農(nóng)為了防止蜜蜂患上腐臭病、白血病等細(xì)菌性疾病,會(huì)使用大量抗生素來(lái)防治,這可能會(huì)導(dǎo)致蜂蜜抗生素殘留超標(biāo)而影響蜂蜜質(zhì)量[1-3],給食用者帶來(lái)不同程度的身體損害[4-6];蜜蜂在采蜜過(guò)程中可能會(huì)采集到被農(nóng)藥污染的蜜源,造成蜂產(chǎn)品中出現(xiàn)農(nóng)藥殘留。三唑類(lèi)農(nóng)藥作為一代新的殺菌劑,廣泛應(yīng)用于糧食作物、蔬菜和水果中[7],由于其親脂性的特性,其積聚在各種生物組織以及在生態(tài)系統(tǒng)中進(jìn)行傳輸而會(huì)對(duì)食物鏈造成污染[8]。目前,針對(duì)蜂產(chǎn)品中農(nóng)藥殘留檢測(cè)的主要對(duì)象是有機(jī)磷殺蟲(chóng)劑和擬除蟲(chóng)菊酯類(lèi)農(nóng)藥,尚未制定三唑類(lèi)農(nóng)藥在蜂產(chǎn)品中的限量標(biāo)準(zhǔn),因此建立對(duì)蜂蜜中抗生素及三唑類(lèi)農(nóng)藥殘留的監(jiān)測(cè)對(duì)保證蜂蜜產(chǎn)品的安全具有十分重要的現(xiàn)實(shí)意義。
QuEChERS方法是一種快速高效的前處理分析方法,QuEChERS方法應(yīng)用在蜂蜜中農(nóng)藥及獸藥殘留檢測(cè)方面已有文獻(xiàn)[9-15]報(bào)道。本工作在傳統(tǒng)QuEChERS方法的凈化步驟上進(jìn)行了改進(jìn),利用帶磁性的凈化吸附劑來(lái)除雜,免去離心的步驟,加快了蜂蜜樣品的凈化處理過(guò)程,并且磁性凈化劑還可以回收利用,符合綠色環(huán)保的要求。本工作對(duì)各個(gè)影響因素進(jìn)行了優(yōu)化,在優(yōu)化條件下采用高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法對(duì)蜂蜜中15種三唑類(lèi)農(nóng)藥及15種抗生素(包括2種四環(huán)素類(lèi),4種大環(huán)內(nèi)酯類(lèi)和9種喹諾酮類(lèi))殘留進(jìn)行測(cè)定,可為蜂產(chǎn)品中30種農(nóng)藥和抗生素的快速篩選提供科學(xué)的分析檢測(cè)技術(shù)。
Thermo TSQ Quantum型液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀,配Survey液相操作系統(tǒng);AL 204型電子分析天平;KQ-50E型超聲波清洗器。
混合標(biāo)準(zhǔn)溶液:稱(chēng)取15種三唑類(lèi)農(nóng)藥包括聯(lián)苯三唑醇、糠菌唑、苯醚甲環(huán)唑、氟環(huán)唑、腈苯唑、三氟苯唑、氟喹唑、氟硅唑、己唑醇、腈菌唑、多效唑、戊菌唑、戊唑醇、三唑酮和滅菌唑,15種抗生素包括2種四環(huán)素類(lèi)(金霉素、四環(huán)素),4種大環(huán)內(nèi)酯類(lèi)(交沙霉素、羅紅霉素、替米考星和泰樂(lè)菌素)和9種喹諾酮類(lèi)(氧氟沙星、環(huán)丙沙星、洛美沙星、達(dá)氟沙星、奧比沙星、恩諾沙星、雙氟沙星、沙拉沙星和司帕沙星)等標(biāo)準(zhǔn)品適量,用甲醇溶解,分別配制成100.0mg·L-1的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液,于-4℃避光保存。使用時(shí)用甲醇稀釋至5.00mg·L-1,配成混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,于-4℃避光保存。
Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液:將0.1mol·L-1檸檬酸溶液1L與0.2mol·L-1磷酸氫二鈉溶液625mL混合,再用氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH至4.0,稱(chēng)取乙二胺四乙酸二鈉60.5g放入上述混合溶液中,使其溶解,搖勻。
氯化鈉、乙酸鈉、無(wú)水硫酸鎂、無(wú)水硫酸鈉均為分析純;乙腈、甲醇、乙酸乙酯均為色譜級(jí);試驗(yàn)用水為去離子水。
1)色譜條件 Luna C18色譜柱(150mm×2.00mm,3μm),柱溫30 ℃;進(jìn)樣量5μL;流量0.2mL·min-1;流動(dòng)相 A 為0.1%(體積分?jǐn)?shù),下同)甲酸溶液,B為乙腈。梯度洗脫程序:0.0~0.1min時(shí),B為80%,保持5min;5.0~12.0min時(shí),B由80%降至10%;12.0~18.0min時(shí),B由10%升至80%。
2)質(zhì)譜條件 電噴霧正離子源(ESI+),毛細(xì)管溫度350℃;噴霧電壓4 000V;鞘氣流量0.7L·h-1;輔助氣 流 量 0.2L·h-1;碰 撞 氣 為氬氣(0.2Pa);多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)模式。
30種化合物的其他質(zhì)譜參數(shù)見(jiàn)表1,其中“*”為定量離子。
表1 質(zhì)譜參數(shù)Tab.1 MS parameters
表1(續(xù))
稱(chēng)取蜂蜜樣品1.000 0g于50mL離心管中,加入 pH 4.0 的 Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液6mL,渦旋30s,再加入乙酸-乙腈(1+19)混合溶液18mL繼續(xù)渦旋30s,之后依次加入氯化鈉2g,無(wú)水硫酸鈉4g,快速搖勻,振蕩2min后,以7 000r·min-1轉(zhuǎn)速離心5min后靜置。取上清液6mL轉(zhuǎn)移至已加入磁性C18和N-丙基乙二胺(PSA)各20mg的20mL樣品瓶中,振蕩30s后,使用外部磁力將固液兩相進(jìn)行分離,將液體倒入10mL玻璃管內(nèi)經(jīng)氮?dú)獯蹈珊?,?mL初始流動(dòng)相0.1%甲酸溶液-乙腈(2+8)混合液復(fù)溶后,過(guò)0.22μm膜,按儀器工作條件進(jìn)行測(cè)定。
50μg·kg-1的30種農(nóng)藥及抗生素的色譜圖見(jiàn)圖1。
2.2.1 緩沖溶液及其酸度
蜂蜜中含糖量較高,對(duì)樣品前處理造成干擾,因此,為了緩解蜂蜜樣品黏稠狀態(tài),需要加入適當(dāng)?shù)娜芤簛?lái)稀釋樣品,從而有利于化合物的提取[16]。試驗(yàn)選擇較為常用的水溶液和Mcllvaine緩沖溶液來(lái)稀釋樣品。結(jié)果表明:在Mcllvaine緩沖液稀釋作用下,提取效率明顯提高,同時(shí)考慮到提取目標(biāo)物中含有能和金屬離子產(chǎn)生螯合作用的四環(huán)素類(lèi)抗生素,試驗(yàn)選擇Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液為蜂蜜樣品的稀釋溶液。
考慮到目標(biāo)物大都屬于兩性化合物,試驗(yàn)還考察了不同 酸 度 (pH 分 別為 3,4,5,6,7,8)的Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液對(duì)提取效率的影響[15],見(jiàn)圖2。
圖1 15種三唑類(lèi)藥物(1~15)和15種抗生素(16~30)的色譜圖Fig.1 Chromatograms of 15triazoles(1-15)and 15antibiotics(16-30)
由圖2可知:農(nóng)藥和抗生素的回收率隨緩沖溶液酸度增大基本呈現(xiàn)先升后降的趨勢(shì),其中三唑類(lèi)農(nóng)藥和四環(huán)素類(lèi)抗生素表現(xiàn)較為明顯,各類(lèi)藥物在Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液pH為4時(shí)均出現(xiàn)了較為理想的回收率。蜂蜜樣品的pH控制在3.2~4.5之間時(shí),加入緩沖鹽可以保持蜂蜜樣品的酸堿穩(wěn)定性,試驗(yàn)選擇Na2EDTA-Mcllvaine緩沖溶液的酸度為pH 4.0。
2.2.2 提取劑
圖2 緩沖溶液的酸度對(duì)提取回收率的影響Fig.2 Effect of acidity of buffer solution on extraction recovery
在QuEChERS方法對(duì)抗生素的提取試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),乙腈為提取劑時(shí),蛋白質(zhì)等共提物比較少,且乙腈比丙酮、甲醇更易與水分離[17];試驗(yàn)還考察了乙腈、甲醇、丙酮等溶劑對(duì)三唑類(lèi)農(nóng)藥的提取效率,結(jié)果表明乙腈對(duì)三唑類(lèi)農(nóng)藥的提取效率較高。試驗(yàn)進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)在乙腈溶液中加入5%(體積分?jǐn)?shù))乙酸溶液,農(nóng)藥和抗生素的回收率均較高,試驗(yàn)選擇乙酸-乙腈(1+19)混合溶液作為提取劑。
2.2.3 鹽析劑和吸水劑
QuEChERS方法常用的鹽析劑有乙酸鈉、氯化鈉,常用的吸水劑有無(wú)水硫酸鎂、無(wú)水硫酸鈉??紤]到硫酸鎂中的Mg2+和四環(huán)素類(lèi)藥物可能會(huì)結(jié)合生成螯合物,從而影響四環(huán)素類(lèi)藥物的提取,而乙酸鈉水解作用下會(huì)影響緩沖體系的酸度,試驗(yàn)選擇氯化鈉為鹽析劑,無(wú)水硫酸鈉為吸水劑。
2.3.1 除雜吸附劑
在QuEChERS方法中,較為常用的除雜吸附劑主要有C18和PSA,C18可除去脂類(lèi)等非極性物質(zhì),PSA可除去極性有機(jī)酸、脂肪酸、糖類(lèi)等物質(zhì)。傳統(tǒng)的凈化過(guò)程是加入不帶磁性的C18和PSA來(lái)除雜吸附,再離心分離,所需凈化劑量較大,且離心分離需要較長(zhǎng)時(shí)間。試驗(yàn)分別考察了無(wú)磁性C18和PSA、磁性C18和PSA對(duì)試驗(yàn)過(guò)程的影響。結(jié)果表明:使用無(wú)磁性C18和PSA時(shí),傳統(tǒng)離心步驟以及吸取上清液轉(zhuǎn)移至少需要10min;磁性吸附劑只需要1min即可完成吸附雜質(zhì)和傾倒提取液2步,其主要依靠外部磁場(chǎng)來(lái)完成,方便快捷。試驗(yàn)選擇使用磁性C18和PSA來(lái)進(jìn)行除雜吸附。
2.3.2 磁性C18和PSA用量
試驗(yàn)考察了磁性C18和PSA用量(二者分別加入10,20,30,40,50mg)對(duì)各類(lèi)藥物回收率的影響,其結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 吸附劑用量對(duì)回收率的影響Tab.2 Effect of the amounts of adsorbent on recovery
由表2可知:在磁性C18和PSA加入量分別為20mg時(shí),藥物回收率達(dá)到最高;增加磁性C18和PSA的用量,藥物回收率呈下降趨勢(shì),這可能是由于加入的吸附劑量過(guò)大,磁性吸附劑對(duì)目標(biāo)物有一定吸附及包裹,使藥物在分離過(guò)程中被保留而降低其回收率。試驗(yàn)選擇磁性C18和PSA的用量分別為20mg。
用過(guò)的磁性C18和PSA經(jīng)丙酮、甲醇清洗后可重復(fù)使用,在節(jié)省成本方面也具有優(yōu)勢(shì)。試驗(yàn)將用過(guò)一次的磁性C18和PSA依次用丙酮10mL、甲醇10mL浸泡,并超聲洗滌,該過(guò)程重復(fù)2次,回收后烘干。再次作為除雜吸附劑使用時(shí),20mg磁性C18和20mg磁性PSA除雜效果接近首次使用,當(dāng)重復(fù)利用4次后,需要另外增加10mg新的吸附劑即可達(dá)到首次使用的吸附效果。表明磁性C18和PSA重復(fù)使用率較高,降低了吸附劑使用成本。
在空白蜂蜜基質(zhì)樣品溶液中添加混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為0.20,0.50,1.00,2.00,5.00,20.0,50.0,100.0μg·kg-1的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液系列,按試驗(yàn)方法進(jìn)行測(cè)定。以各化合物的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為橫坐標(biāo),對(duì)應(yīng)的峰面積為縱坐標(biāo)繪制基質(zhì)工作曲線。30種化合物的線性范圍、線性回歸方程及相關(guān)系數(shù)見(jiàn)表3。
分別以3倍信噪比和10倍信噪比計(jì)算檢出限(3S/N)和測(cè)定下限(10S/N),其結(jié)果見(jiàn)表3。
表3 線性參數(shù)、檢出限和測(cè)定下限Tab.3 Linearity parameters,detection limits and lower limits of determination
對(duì)空白基質(zhì)分別添加10.0,20.0,50.0μg·kg-1的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),按照試驗(yàn)方法對(duì)每一個(gè)添加水平平行測(cè)定5次,計(jì)算其加標(biāo)回收率和測(cè)定值的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),其結(jié)果見(jiàn)表4。
表4 精密度和回收試驗(yàn)結(jié)果(n=5)Tab.4 Results of tests for precision and recovery(n=5)
表4(續(xù))
由表4可知:30種化合物的回收率在71.1%~116%之間,RSD小于22%。說(shuō)明方法的精密度和準(zhǔn)確度較高。
按試驗(yàn)方法對(duì)12個(gè)蜂蜜樣品進(jìn)行測(cè)定,其中7個(gè)蜂蜜樣品有檢出,其檢出結(jié)果見(jiàn)表5。
表5 樣品分析結(jié)果Tab.5 Analytical results of samples μg·kg-1
由表5可知:三唑類(lèi)農(nóng)藥中苯醚甲環(huán)唑檢出較多,質(zhì)量分?jǐn)?shù)在9.6~44.0μg·kg-1之間,喹諾酮類(lèi)和四環(huán)素類(lèi)藥物也有檢出,但質(zhì)量分?jǐn)?shù)均較低。
本工作建立了同時(shí)測(cè)定蜂蜜樣品中15種三唑類(lèi)農(nóng)藥和15種抗生素藥物的QuEChERS-HPLCMS/MS分析方法,分別對(duì)提取劑、凈化方法、吸附劑及其用量等樣品前處理?xiàng)l件進(jìn)行了優(yōu)化,將磁性材料用于QuEChERS方法,縮短了測(cè)定時(shí)間。方法操作簡(jiǎn)便快速,凈化效果好,適用蜂蜜中農(nóng)藥及抗生素的多殘留檢測(cè)。
[1] 鄺涓,董霞.蜂蜜中氯霉素殘留量檢測(cè)方法研究概況[J].蜜蜂雜志,2007,27(8):38-41.
[2] 張桂鳳,游勇基.蜂產(chǎn)品中四環(huán)素類(lèi)藥物殘留檢測(cè)方法研究進(jìn)展[J].海峽藥學(xué),2010,22(8):4-7.
[3] 徐書(shū)法,曹坦,辛廣,等.蜂產(chǎn)品中抗生素殘留檢測(cè)技術(shù)研究概況[J].現(xiàn)代科學(xué)儀器,2009(4):134-140.
[4] 李巖,邵兵,徐鎖洪.動(dòng)物性食品內(nèi)大環(huán)內(nèi)酯類(lèi)抗生素殘留分析[J].中國(guó)衛(wèi)生檢驗(yàn)雜志,2005,15(10):1275-1277.
[5] BLASCO C,PICO Y,TORRES C M,et al.Progress in analysis of residual antibacterials in food[J].TrAC Trends in Analytical Chemistry,2007,26(9):895-913.
[6] 李周敏,邵誠(chéng),方惠群.蜂蜜中殘留抗生素的檢測(cè)方法研究[J].安徽醫(yī)藥,2012,16(5):568-570.
[7] KMELLAR B,ABRANKO L,F(xiàn)ODOR P,et al.Routine approach to qualitatively screening 300pesticides and quantification of those frequently detected in fruit and vegetables using liquid chromatography tandem mass spectrometry(LC-MS/MS)[J].Food Additives and Contaminants:Part A,2010,27(10):1415-1430.
[8] FARAJZADEH M A, MOGADDAM M R A,GHORBANPOUR H.Development of a new microextraction method based on elevated temperature dispersive liquid-liquid microextraction for determination of triazole pesticides residues in honey by gas chromatography-nitrogen phosphorus detection[J].Journal of Chromatography A,2014,1347:8-16.
[9] LIU H Y,LIN S L,F(xiàn)UH M R.Determination of chloramphenicol,thiamphenicol and florfenicol in milk and honey using modified QuEChERS extraction coupled with polymeric monolith-based capillary liquid chromatography tandem mass spectrometry[J].Talanta,2016,150:233-239.
[10] SHENDY A H,AL-GHOBASHY M A,MOHAMMED M N,et al.Simultaneous determination of 200 pesticide residues in honey using gas chromatographytandem mass spectrometry in conjunction with streamlined quantification approach[J].Journal of Chromatography A,2015,1427:142-160.
[11] WANG J,LEUNG D.The challenges of developing ageneric extraction procedure to analyze multi-class veterinary drug residues in milk and honey using ultra-h(huán)igh pressure liquid chromatography quadrupole time-of-flight mass spectrometry[J].Drug Testing and Analysis,2012,4(s1):103-111.
[12] LOMBARDO-AGUI M, GARCLA-CAMPA A A M,GAMIZ-GARCIA L,et al.Determination of quinolones of veterinary use in bee products by ultrahigh performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry using a QuEChERS extraction procedure[J].Talanta,2012,93:193-199.
[13] ZHANG Y Q,LIU X M,LI X,et al.Rapid screening and quantification of multi-class multi-residue veterinary drugs in royal jelly by ultra performance liquid chromatography coupled to quadrupole time-of-flight mass spectrometry[J].Food Control,2016,60:667-676.
[14] LI S S,LIU X G,DONG F S,et al.Chemometricassisted QuEChERS extraction method for the residual analysis of thiacloprid,spirotetramat and spirotetramat's four metabolites in pepper:Application of their dissipation patterns[J].Food Chemistry,2016,192:893-899.
[15] 王偉,石志紅,康健,等.改進(jìn)的QuEChERS結(jié)合LCMS/MS同時(shí)測(cè)定蜂蜜中60種獸藥殘留[J].分析實(shí)驗(yàn)室,2013,32(4):82-88.
[16] KUJAWSKI M W,NAMIESNIK J.Challenges in preparing honey samples for chromatographic determination of contaminants and trace residues[J].TrAC Trends in Analytical Chemistry,2008,27(9):785-793.
[17] TOMASINI D,SAMPAIO M R F,CARDOSO L V,et al.Comparison of dispersive liquid-liquid microextraction and the modified QuEChERS method for the determination of fipronil in honey by high performance liquid chromatography with diode-array detection[J].Analytical Methods,2011,3(8):1893-1900.
理化檢驗(yàn)-化學(xué)分冊(cè)2017年7期