β-紫羅蘭酮溫敏脂質(zhì)體的制備工藝及配方優(yōu)化

王一涵，徐迎波，寧 敏，周志磊，梁 蓉，陳 羚，徐菲菲，鐘 芳*

（1.江南大學(xué) 食品學(xué)院，江蘇 無錫214122；2.安徽中煙工業(yè)有限責(zé)任公司 煙草化學(xué)安徽省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，安徽合肥 230088；3.江南大學(xué) 合成與生物膠體教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江蘇 無錫 214122）

β-紫羅蘭酮溫敏脂質(zhì)體的制備工藝及配方優(yōu)化

王一涵1，徐迎波2，寧 敏2，周志磊1，梁 蓉3，陳 羚1，徐菲菲1，鐘 芳*1

（1.江南大學(xué) 食品學(xué)院，江蘇 無錫214122；2.安徽中煙工業(yè)有限責(zé)任公司 煙草化學(xué)安徽省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，安徽合肥 230088；3.江南大學(xué) 合成與生物膠體教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江蘇 無錫 214122）

以合成磷脂DPPC和氫化大豆卵磷脂HSPC為膜材，采用薄膜超聲法和乙醇注入法制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體，并對(duì)其超聲條件及配方進(jìn)行優(yōu)化。優(yōu)化得到的較佳工藝參數(shù)為：超聲功率240 W，超聲時(shí)間4 min。通過單因素實(shí)驗(yàn)優(yōu)化得到的β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體的較佳配方為：DPPC與HSPC摩爾比為8∶2，磷脂質(zhì)量濃度10 mg/mL，β-紫羅蘭酮與Tween80、磷脂的質(zhì)量比為1∶1∶20。該條件下制備的脂質(zhì)體包封率為（60.62±3.48）%，平均粒徑在200 nm左右，在原子力顯微鏡的觀察下為球狀或近似球狀的小囊泡。

β-紫羅蘭酮；脂質(zhì)體；二棕櫚酰磷脂酰膽堿DPPC；氫化大豆卵磷脂HSPC

近年來，各種綜合降焦技術(shù)的使用，致使卷煙香味物質(zhì)大量損失，卷煙香味平淡。如何在降焦減害的同時(shí)保持卷煙的香味風(fēng)格已經(jīng)成為煙草行業(yè)研究的熱點(diǎn)。卷煙加香加料是彌補(bǔ)卷煙香味物質(zhì)損失的一個(gè)重要手段，但許多煙用香料易揮發(fā)、氧化或遇到光熱易分解，影響了香料的使用效果。因此研究有效的加香方式，防止香料的散失，減少香料在卷煙燃吸時(shí)的可變性（如熱解）就顯得尤為重要[1]。

脂質(zhì)體（liposomes）是一種結(jié)構(gòu)和組成均類似于生物膜雙分子層的微型囊泡，具有靶向、緩釋、生物相容性等特點(diǎn)，可以同時(shí)包埋親水性成分和疏水性成分。而新型脂質(zhì)體——溫度敏感型脂質(zhì)體（thermo-sensitive liposomes，TSL）， 不僅能在常溫下保持穩(wěn)定，在達(dá)到相變溫度時(shí)還能快速釋放包埋物。因此其能有效改善香料對(duì)光、熱及環(huán)境的穩(wěn)定性。

卷煙在燃燒時(shí)濾嘴的溫度一般在40℃左右，所以，將脂質(zhì)體的相變溫度設(shè)定在40℃。由于天然卵磷脂為一種混合物，其組成復(fù)雜、相對(duì)分子質(zhì)量分布較廣，通常不表現(xiàn)出明顯的相變溫度[2]；而合成卵磷脂成分單一、純度高，具有良好的溫度敏感性，但是價(jià)格較昂貴，限制了其應(yīng)用范圍。因此，作者采用復(fù)合磷脂技術(shù)，將天然卵磷脂和合成卵磷脂進(jìn)行復(fù)配[3]，對(duì)經(jīng)典溫敏脂質(zhì)體的配方進(jìn)行優(yōu)化，以期在保證良好的溫敏釋放性能前提下，盡量降低成本。β-紫羅蘭酮 （4-（ 2，6，6-三甲基-1-環(huán)己烯基）-3-丁烯-2-酮）是卷煙中一種重要的香味化合物，其揮發(fā)性較強(qiáng)，采用脂質(zhì)體作為載體可以顯著地提高其儲(chǔ)藏穩(wěn)定性，因此作者選擇β-紫羅蘭酮為模型物質(zhì)，探討制備β-紫羅蘭酮TSL的可行性，并系統(tǒng)地研究了影響脂質(zhì)體相變溫度Tm和β-紫羅蘭酮包埋效果的因素。

1 材料與方法

1.1 試劑

二棕櫚酰磷脂酰膽堿（DPPC）：上海艾韋特醫(yī)藥科技有限公司產(chǎn)品；氫化大豆卵磷脂（HSPC）：上海艾韋特醫(yī)藥科技有限公司產(chǎn)品；TritonX100：分析純，國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品；β-紫羅蘭酮：分析純，上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司產(chǎn)品；乙腈：色譜純，上海沃凱化成工業(yè)有限公司產(chǎn)品。

1.2 儀器

旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器（R-205）：上海申順生物科技有限公司產(chǎn)品；超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)：南京菲奇工貿(mào)產(chǎn)品；AL204電子天平：梅特勒-托利多儀器上海有限公司產(chǎn)品；透析袋（截留相對(duì)分子質(zhì)量3 500）：美國Viskase產(chǎn)品；磁力加熱攪拌器（C-MAG HS4）：德國IKA產(chǎn)品；Waters高效液相色譜儀 （waters1525）：美國waters公司產(chǎn)品；Zeta電位及納米粒度分析儀（ZetaPALS）：美國布魯克海文儀器公司產(chǎn)品；差示掃描量熱儀（204 F1）：德國耐馳儀器公司產(chǎn)品；原子力顯微鏡（Multimode8）：德國布魯克科技有限公司產(chǎn)品。

1.3 方法

1.3.1 薄膜超聲法制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體 稱取一定比例的DPPC、HSPC、吐溫80和β-紫羅蘭酮于250 mL圓底燒瓶中，加入20 mL的無水乙醇，50℃水浴至溶，減壓旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去乙醇，形成薄膜.再加入一定量PBS（pH 6.8）緩沖溶液，旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)水化30 min（50℃），迅速冷卻，于探頭式超聲儀上碎冰浴超聲處理（脈沖）。50℃水溶2 h后于4℃靜置過夜，冷凍離心（4 500 g）20 min，置于冰箱中保存[4-5]。

1.3.2 乙醇注入法制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體 稱取一定比例的DPPC、HSPC、吐溫80和β-紫羅蘭酮于10 mL試管中，再加入4 mL無水乙醇，50℃水浴至溶。用移液槍抽吸打勻上述脂質(zhì)溶液后（50℃），快速將其注入50℃ PBS緩沖液中（pH 6.8），攪拌水化30 min，旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去乙醇（50℃），冷卻后在4℃下靜置過夜[4]。

空白脂質(zhì)體的制備：稱取等量脂質(zhì)和吐溫80溶于乙醇，不添加被包埋物質(zhì)，其余步驟與上述脂質(zhì)體的制備相同。

1.3.3 β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體包埋率的測定 總β-紫羅蘭酮濃度：取一定量的脂質(zhì)體混懸液到10 mL容量瓶中，加入等量TritonX-100溶液，漩渦振蕩使脂質(zhì)體解體，用超純水定容后過0.22 μm微孔濾膜，HPLC測定溶液里β-紫羅蘭酮的總濃度Ctol。

游離β-紫羅蘭酮濃度：精密量取脂質(zhì)體混懸液5 mL置于 250 mL燒杯中，用 w（CH3CH2OH）=20%的乙醇水溶液稀釋至200 mL。再量取w（CH3CH2OH）=20%的乙醇水溶液5 mL于已處理的透析袋內(nèi)，把透析袋浸入上述經(jīng)稀釋的脂質(zhì)體混懸液中，同時(shí)以磁力攪拌器攪拌，達(dá)到平衡時(shí)間（12 h）后，取透析袋內(nèi)透析液20 μL進(jìn)樣，HPLC測定計(jì)算游離β紫羅蘭酮的濃度。

式中，Ctol為脂質(zhì)體溶液中β-紫羅蘭酮的總濃度；CFree為脂質(zhì)體溶液中游離β-紫羅蘭酮的濃度。

1.3.4 原子力顯微鏡（AFM）觀察 取適量β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體用超純水稀釋500倍。吸取2 μL樣品滴在新解離的云母表面并鋪展，室溫下干燥24 h。待充分干燥后，將樣品置于原子力顯微鏡的掃描探頭 （Si探針）下，以ScanAsyst模式掃描 （頻率70 kHz，彈簧系數(shù)0.4 N/m），在室溫和大氣環(huán)境下進(jìn)行觀測[6]。

1.3.5 粒徑和Zeta電位的測定 采用激光光散射法測定脂質(zhì)體的粒徑。采用Zeta PALS粒度分析儀，散射角為90°。將準(zhǔn)備好的待測樣品裝入聚苯乙烯比色皿中 （折光指數(shù) 1.33），（25±0.1）℃下保溫 3 min，進(jìn)樣測定，記錄平均粒徑（Dz）和粒徑分布情況（多分散指數(shù) PDI）。

平均粒徑的變化率按照下式計(jì)算：

式中，Dz1為低溫貯存一個(gè)月的平均粒徑；Dz0為制備初期的平均粒徑。

1.3.6 相變溫度的測量 將制得的脂質(zhì)體混懸液4 800 r/min離心20 min移去上層清液，收集下層脂質(zhì)體。稱取5～10 mg脂質(zhì)體鋪于密閉鋁坩堝底部，在加熱范圍為20～60℃的條件下掃描樣品，設(shè)定升溫速率為5℃/min，重復(fù)兩次，測定其DSC圖譜，以空白坩堝作為對(duì)照。

2 結(jié)果與分析

2.1 β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體制備方法的選擇

脂質(zhì)體的制備方法較多，方法不同，制得產(chǎn)品的粒徑、包封率等亦不同。結(jié)合芯材β-紫羅蘭酮不溶于水的特點(diǎn)以及實(shí)驗(yàn)室的具體條件，作者選擇薄膜-超聲和乙醇注入-超聲這兩種制備方法進(jìn)行比較。根據(jù)所用的壁材（DPPC、HSPC和Tween80）和芯材β-紫羅蘭酮的溶解性以及安全性，選擇乙醇作為溶解壁材和芯材的溶劑。

表1 薄膜超聲法和乙醇注入法制備的β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體的性質(zhì)比較Table1 Comparison ofpropertiesofbeta-ionone liposomes prepared by thin-film evaporation and ethanol injection

采用乙醇注入-超聲法制得的樣品較粘稠，且粒徑明顯大于采用薄膜-超聲法制得的樣品，包封率也相對(duì)較低（表1）。試驗(yàn)過程中還發(fā)現(xiàn)薄膜-超聲法制得的樣品長時(shí)間放置比較穩(wěn)定。因此，選擇薄膜-超聲法制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體以進(jìn)一步研究。

2.2 探頭超聲工藝研究

分別考察了脂質(zhì)體制備時(shí)的探頭超聲功率和時(shí)間對(duì)包封率的影響[7]。圖1、2結(jié)果顯示探頭超聲工藝對(duì)結(jié)果影響不大。但超聲時(shí)間過長，超聲探頭會(huì)釋放更多鈦顆粒雜質(zhì)造成污染[8]。結(jié)合粒徑及其變化情況，最終選擇240 W、4 min用于后續(xù)的試驗(yàn)。

2.3 β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體配方的確定

在確定薄膜-超聲法工藝參數(shù)的基礎(chǔ)上，以相變溫度Tm、包封率、平均粒徑以及平均粒徑的變化程度為指標(biāo)，研究了磷脂的類型及組成、磷脂濃度、β-紫羅蘭酮濃度、Tween80用量等因素對(duì)脂質(zhì)體相變溫度Tm和β-紫羅蘭酮包埋效果的影響。

圖1 探頭超聲功率對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響Fig.1 Effect of different sonication power on encapsulation qualities of beta-ionone liposomes

圖2 探頭超聲時(shí)間對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響Fig.2 Effect of different sonication time on encapsulation qualities of beta-ionone liposomes

2.3.1 配方對(duì)脂質(zhì)體相變溫度的影響

1）磷脂組成對(duì)脂質(zhì)體相變溫度的影響 作者選用的主要磷脂 DPPC、HSPC的相變溫度分別為41.3℃和52.7℃，采用這兩種磷脂分別制備不同摩爾分?jǐn)?shù)DPPC組成的空白脂質(zhì)體，進(jìn)行相變溫度的測定[9]，考察不同磷脂組成對(duì)脂質(zhì)體相變溫度的影響，結(jié)果見表2。

表2 二棕櫚酰磷脂酰膽堿 （DPPC）和氫化大豆卵磷脂（HSPC）復(fù)配比例對(duì)空白脂質(zhì)體相變溫度的影響Table 2 Effect of DPPC to HSPC ratio on the phasetransition temperature of blank liposomes

隨著HSPC加入量的增加，脂質(zhì)體相變溫度Tm逐漸升高，半峰寬也逐漸增大，轉(zhuǎn)變的協(xié)同性下降。初步選定BL-d8h2這一配方的PC組成進(jìn)行下一步的實(shí)驗(yàn)。

2）β-紫羅蘭酮加入量對(duì)脂質(zhì)體相變溫度Tm的影響 包埋物對(duì)脂質(zhì)體Tm的影響分為兩種情況：無影響，即不改變脂質(zhì)體的相變溫度Tm；有影響，即當(dāng)包埋物結(jié)合進(jìn)入脂質(zhì)雙分子層時(shí)，Tm會(huì)明顯下降。例如9%（摩爾分?jǐn)?shù)）替莫卟吩加入到DPPC和DPPG脂質(zhì)體 （Tm41℃）后，其起始相變溫度降到34～35℃[10]。

以配方BL-d8h2為例，考察了不同β-紫羅蘭酮加入量對(duì)脂質(zhì)體相變溫度的影響（表3），結(jié)果發(fā)現(xiàn)包埋β-紫羅蘭酮后，脂質(zhì)體的相變溫度Tm相較于空白脂質(zhì)體有所降低，同時(shí)半峰寬明顯增大。且隨著β-紫羅蘭酮添加量的增加，脂質(zhì)體的相變溫度Tm逐漸降低，半峰寬也逐漸增大。當(dāng)加入量增大到100 mg時(shí)，開始出現(xiàn)相分離。

綜上所述，考慮到卷煙抽吸時(shí)濾嘴的溫度大概在40℃左右，結(jié)合表2初步選擇BL-d8h2（載量10 mg）此種基礎(chǔ)配方，可以在得到合適的相變溫度Tm和半峰寬的同時(shí)，盡量降低成本。

3）Tween80加入量對(duì)脂質(zhì)體相變溫度的影響通常吐溫80的加入可以改變脂質(zhì)體的包埋率，并調(diào)節(jié)脂質(zhì)體膜的通透性，同時(shí)，吐溫80的加入也可能會(huì)對(duì)脂質(zhì)體的相變溫度產(chǎn)生影響[11]?？疾炝送聹?0的對(duì)脂質(zhì)體相變溫度的影響，結(jié)果見表4。隨著Tween80濃度的增加，脂質(zhì)體的相變溫度Tm略微下降，半峰寬增大，轉(zhuǎn)變的協(xié)同性下降，表明不止一種物質(zhì)發(fā)生轉(zhuǎn)變[11]。

表3 β-紫羅蘭酮的加入量對(duì)溫敏脂質(zhì)體相變溫度的影響Table 3 Effect of beta-ionone on the phase-transition temperature of beta-ionone liposomes

表4 吐溫80的加入對(duì)溫敏脂質(zhì)體相變溫度的影響Table 4 Effect of Tween80 on the phase-transition temperature of liposomes with different PC composition

2.3.2 配方對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響

1）磷脂組成對(duì)包埋效果的影響 為了考察磷脂組成對(duì)包埋率的影響，制備了不同DPPC組成的β-紫羅蘭酮溫敏脂質(zhì)體，具體組成及性質(zhì)見圖3。結(jié)合PC組成對(duì)相變溫度的影響，最終選用BL-d8h2（質(zhì)量分?jǐn)?shù)80%DPPC+20%HSPC）這一配比的磷脂組成。

2）磷脂質(zhì)量濃度對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響磷脂濃度可影響水化及超聲過程中脂質(zhì)體懸液的粘度及流動(dòng)性，選用不同質(zhì)量濃度的磷脂分別制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體，考察磷脂濃度對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響，結(jié)果見圖4。隨著磷脂質(zhì)量濃度的增加，包埋率增大。繼續(xù)增加磷脂質(zhì)量濃度到20 mg/mL，包埋率基本不變，但粒徑顯著增大到1 000 nm以上。因?yàn)樘岣吡字|(zhì)量濃度后，溶液的粘度變大，易導(dǎo)致旋蒸時(shí)形成的薄膜不均勻，水化形成顆粒很大的多層脂質(zhì)，超聲處理時(shí)不易破碎成均勻的脂質(zhì)體[12]。最終選用的磷脂質(zhì)量濃度為10 mg/mL，在該質(zhì)量濃度下，脂質(zhì)體溶液的流動(dòng)性良好。

圖3 PC組成對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響Fig.3 Effect of PC composition on encapsulation qualities of beta-ionone liposomes

3）β-紫羅蘭酮添加量對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響 脂質(zhì)體是通過將脂溶性芯材鑲嵌在磷脂雙分子層中來實(shí)現(xiàn)對(duì)藥物的包載，芯材和磷脂的相容性及芯材和磷脂的比例顯著的影響脂質(zhì)體的包封率，因此進(jìn)一步考察了β-紫羅蘭酮添加量對(duì)脂質(zhì)體包埋率的影響。由圖5可知，隨著β-紫羅蘭酮添加量的增加，脂質(zhì)體的包埋率升高，但當(dāng)β-紫羅蘭酮添加量大于10 mg后，包埋率開始下降。故選定β-紫羅蘭酮添加量為10 mg。

圖4 磷脂質(zhì)量濃度對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響Fig.4 Effectofconcentration ofphospholipidson encapsulation qualities of beta-ionone liposomes

圖5 β-紫羅蘭酮添加量對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響Fig.5 Effect of beta-ionone on encapsulation qualities of Beta-ionone liposomes

4）Tween含量對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響 選用不同比例的Tween80與磷脂用于制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體，以確定輔助壁材Tween80的合適添加量。由圖6可知，在一定范圍內(nèi)提高Tween80含量能夠有效地降低脂質(zhì)體的粒徑大小。這是因?yàn)門ween 80具有一條較長的疏水鏈和3條比較短的親水鏈，在脂質(zhì)體雙分子層中摻入的Tween 80物理吸附于雙分子層表面，其聚氧乙烯基從雙分子層中伸出，形成有一定厚度的親水相，具有空間位阻效應(yīng)。當(dāng)兩個(gè)立體穩(wěn)定的脂質(zhì)體接近時(shí)，由于存在水溶性鏈，脂質(zhì)體間的化學(xué)位能降低，脂質(zhì)體之間進(jìn)入大量的水而分離[13]。研究也表明，吸附于脂質(zhì)體雙分子層外表面的Tween 80增加了脂質(zhì)體的曲率，而吸附于雙分子層內(nèi)表面的Tween 80的作用與之相反[14]。由于有較多的Tween 80吸附于雙分子層的外表面，因此，在脂質(zhì)體雙分子層中摻入Tween 80有助于減少脂質(zhì)體的初始粒徑大小。但Tween 80的添加量并非越高越好，表面活性劑濃度達(dá)到一定值時(shí)，磷脂將被逐漸增溶成混合膠束，脂質(zhì)體的雙分子層結(jié)構(gòu)將遭到破壞，因此導(dǎo)致包埋率降低[15]。綜上，結(jié)合包埋率，確定Tween80的添加量為10 mg。

2.4 納米脂質(zhì)體表面形貌的觀察

在原子力顯微鏡下觀察脂質(zhì)體的表面形貌（見圖7），呈球狀或近似球狀的小囊泡，分布均勻且顆粒間彼此分散。

圖6 Tween80添加量對(duì)脂質(zhì)體包埋效果的影響Fig.6 Effect of Tween 80 on encapsulation qualities of Beta-ionone liposomes

圖7 β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體的的原子力顯微鏡圖像Fig.7 Atomic force microscopy（AFM） imagines of betaionone liposome composed of beta-ionone/Tween

3 結(jié)語

薄膜-超聲法比較適合制備β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體，優(yōu)化得到的較佳制備工藝參數(shù)為：超聲功率240 W，超聲時(shí)間4 min。通過單因素試驗(yàn)優(yōu)化得到的β-紫羅蘭酮脂質(zhì)體的較佳配方為：DPPC與HSPC物質(zhì)的摩爾比為 8∶2，磷脂質(zhì)量濃度 10 mg/mL，β-紫羅蘭酮與Tween80、磷脂的質(zhì)量比為 1∶1∶20。 該條件下制備的脂質(zhì)體包封率為（60.62±3.48）%，粒徑分布在200 nm左右，在AFM原子力顯微鏡的觀察下為球狀或近似球狀的小囊泡。

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Optimization of Preparation and Formula for Beta-Ionone Liposome

WANG Yihan1，XU Yingbo2，NING Min2，ZHOU Zhilei1，LIANG Rong3， CHEN Ling1，XU Feifei1， ZHONG Fang*1
（1.School of Food Science and Technology，Jiangnan University，Wuxi 214122，China；2.Key Laboratory of Tobacco Chemistry，China Tobacco Anhui Industrial Co.，LTD，Hefei 230088，China ；3.Key Laboratory of Synthetic and Biological Colloids，Ministry of Education，Jiangnan University，Wuxi 214122，China）

To prepare beta-ionone liposomes bythin-film evaporation and ethanol injection using DPPC （1，2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholine） and HSPC （hydrogenated soy phosphatidylcholine） as membrane materials，as well as optimize its preparation formula.The results showed that the optimal preparation condition and formula of beta-ionone liposomes was as follows：the molar ratio of DPPC to HSPCwas 8∶2，the concentration of phosphatidylcholine （PC）was 10 mg/mL，the mass ratio of beta ionone toPCs was 1∶20，the ratio of Tween80 to PCs was 1∶20，the ultrasonic power was 240 W，the time was 4 min.Under these conditions，entrapment efficiency of beta-ionone liposomes was 60.62%±3.48%.The diameters of beta-ionone liposomes were about 200nm，the appearances ofbeta-ionone liposomes were completely or approximately globular vesicles underatomic force microscope（AFM）.

beta-ionone，liposomes，DPPC（1，2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholine），HSPC（hydrogenated soy phosphatidylcholin）

TQ 914.1

A

1673—1689（2017）10—1022—07

2015-10-27

國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目（31171686）；煙草化學(xué)安徽省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室2013年開放課題資助項(xiàng)目（0920140109010）。

*通信作者：鐘 芳（1972—），女，河南新鄉(xiāng)人，工學(xué)博士，教授，博士研究生導(dǎo)師，主要從事食品物性、食品膠體研究。

E-mail：fzhong@jiangnan.edu.cn

王一涵，徐迎波，寧敏，等.β-紫羅蘭酮溫敏脂質(zhì)體的制備工藝及配方優(yōu)化[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào)，2017，36（10）：1022-1028.