電刺激影響牛肉成熟過程中嫩度的信號通路分析

沈瑾

摘要 牛肉品質(zhì)的好壞，最重要的指標是嫩度。介紹了牛肉成熟機制研究進展，包括在牛肉成熟過程中嫩度的影響因素和加快牛肉成熟的技術(shù)，討論了電刺激影響嫩度的分子機理，主要通過糖酵解代謝途徑、鈣激活中性蛋白酶途徑、溶酶體途徑、氧化應(yīng)激途徑影響嫩度。電刺激影響牛肉成熟過程中嫩度的信號通路表明，牛肉的嫩度與氧化和凋亡有密不可分的聯(lián)系。

關(guān)鍵詞 牛肉成熟；嫩度；電刺激；信號通路

中圖分類號 S879.2 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611（2017）07-0083-04

The Signal Pathway Analysis of Tenderness as a Result of Electrical Stimulation in the Process of Beef Maturation

SHEN Jin （Xintai Agricultural Bureau，Xintai，Shandong 271200）

Abstract Tenderness is an important indicator for evaluation of beef quality.This paper introduces research progress of beef mature mechanism，including the factors affecting meat tenderness and technology accelerating meat mature，discusses the molecular mechanism of tenderness as a result of ES.Meat tenderness is affected mainly by glycolytic metabolic pathway，calpains pathway，lysosomal pathway，oxidative stress pathway as a result of electrical stimulation.The pathways indicate that meat tenderness is closely related to oxidation and apoptosis.

Key words Beef maturation；Tenderness；Electrical stimulation；Signal pathway

肉類產(chǎn)業(yè)的發(fā)展經(jīng)歷了3個過程。第1個過程主要是為了滿足消費者的需求而進行的肉類生產(chǎn)，利用增大畜禽養(yǎng)殖數(shù)量的方法來增加肉類的供應(yīng)量；第2個過程是利用先進的管理技術(shù)加快畜禽生長，提高產(chǎn)肉率；第3個過程是聚焦肉類品質(zhì)的改善，來滿足消費者日益增長的肉制品需求。當前，肉類產(chǎn)業(yè)正處于第3個過程的初期，科學(xué)家們也越來越重視肉類品質(zhì)改善以及食用安全的研究。

牛肉品質(zhì)的好壞，最重要的指標是嫩度[1]。大量的試驗調(diào)查證實，嫩度的優(yōu)劣可以被消費者分辨出來，而且他們很愿意購買優(yōu)質(zhì)牛肉[2]。嫩度直接決定著牛肉食用品質(zhì)的優(yōu)劣[3]。美國肉牛協(xié)會（NCBA）將研究牛肉嫩度的改善方法和提高嫩度的一致性作為提高牛肉市場份額的重要任務(wù)[4-5]。所以，我國牛肉要提高在世界牛肉市場的份額，改變依賴進口優(yōu)質(zhì)牛肉的被動局面，必須將改善牛肉嫩度作為核心任務(wù)。

1 牛肉成熟機制研究進展

剛屠宰后的熱鮮肉具有可接受的嫩度，尸僵期嫩度最差[6]，隨著成熟時間的延長嫩度逐漸得到改善[7]，而不同動物品種和個體間成熟的速度和進程并不相同，從而造成肉的最終嫩度極不均一[8]。

1.1 成熟過程中影響肉嫩度的因素

研究表明，結(jié)締組織構(gòu)成及含量、肌節(jié)長度[9]、肌內(nèi)脂肪含量、骨架蛋白降解程度[10]等方面是成熟過程中影響肉嫩度的主要因素。其中，骨架蛋白是一個關(guān)鍵因素。

肌纖維是構(gòu)成肌肉的基本結(jié)構(gòu)，是決定肌肉嫩度的關(guān)鍵因素。肌原纖維在I帶和Z盤結(jié)合處（靠近Z盤的I帶上）的斷裂，直接與肉的嫩化有關(guān)。肌原纖維由多種蛋白構(gòu)成，骨架蛋白的降解能提高肉的嫩度，前期研究已證實肌聯(lián)蛋白（Titin）、伴肌動蛋白（Nebulin）、肌鈣蛋白T（Troponin-T）、肌間線蛋白（Desmin）等蛋白與嫩度密切相關(guān)[11]。

Titin廣泛存在于動物的骨骼肌和心肌中，位置位于Z線及M線間，其N未端與Z盤結(jié)合，多肽鏈從I帶一直延伸到A帶，在I帶與粗絲結(jié)合伸縮性較強，而在A帶伸縮性較弱，因此Titin被稱為彈性微絲，具有調(diào)節(jié)粗絲長度，穩(wěn)定粗絲，保持肌節(jié)完整性的作用。Nebulin的C末端與Z盤結(jié)合，使細絲和Z盤牢固連接，從而穩(wěn)定細絲的空間穩(wěn)定性[12]。Desmin為中間絲蛋白[13]，環(huán)繞肌原纖維Z線，從而連接相鄰肌原纖維[14]。牛宰后儲存過程中Desmin被降解[15-16]，整個骨骼肌細胞有序性及完整性[17]被破壞，牛肉嫩度提高[18]。Troponin-T是鈣蛋白酶（μ-calpain）的底物，Troponin-T的降解可能是宰后蛋白水解的指標。牛肉中純化得到的Troponin-T能被μ-calpain降解，產(chǎn)生30 kD的多肽[19]。此外，用蛋白質(zhì)印跡法免疫印跡試驗（western blot）證明，在成熟牛肉中發(fā)現(xiàn)的30 kD的多肽是Troponin-T的產(chǎn)物，且宰后時間與2條主要條帶30 kD和28 kD的出現(xiàn)密切相關(guān)[20]。Troponin-T是介導(dǎo)肌動蛋白-肌球蛋白相互作用的復(fù)合物的一部分。宰后肌鈣蛋白T的降解，以及在 Ⅰ 帶與其他蛋白相互作用的減弱，可能導(dǎo)致中肌原纖維在 Ⅰ 帶區(qū)域出現(xiàn)斷裂，產(chǎn)生肌原纖維的小片化。然而，由于肌鈣蛋白T是骨骼肌的基本部分，它在宰后嫩化過程中的作用還有待于進一步研究[21]。

1.2 加快肉品成熟的技術(shù)

肉的嫩度主要取決于肌動蛋白（Actin）和肌球蛋白（Myosin）的結(jié)合狀況、肌纖維中骨架蛋白的完整程度及結(jié)締組織的構(gòu)成、性質(zhì)及含量，所有用來提高肉嫩度的方法都與這些蛋白質(zhì)的變化有關(guān)。

1.2.1 基因調(diào)控及重組嫩化。目前已經(jīng)完成了編碼鈣激活酶（Calpain）和鈣激活酶抑制蛋白（Calpaststin）的基因克隆和染色體定位，利用反義技術(shù)等基因調(diào)控手段，可以增加處在生長發(fā)育階段鈣激活酶抑制蛋白的含量，降低鈣激活酶的活性，降低肌肉中蛋白質(zhì)代謝速度，提高瘦肉產(chǎn)量。在動物屠宰前使用調(diào)控手段提高肌肉中鈣激活酶的含量或降低鈣激活酶抑制蛋白含量的方法促進肉的嫩化。

1.2.2 電刺激嫩化。

肉牛屠宰放血后，施以電刺激處理，可以快速降低肉的pH，影響肉的pH/溫度窗口和Calpains酶系的活性，從而達到肉快速嫩化的目的[22-23]。

電刺激是指使用特定電壓、時間和頻率，對屠宰后的胴體進行的操作[24]。電刺激的電流經(jīng)過神經(jīng)系統(tǒng)（宰后4～6 min）或者直接使肌膜去極化，從而引起肌肉收縮[25]。在此過程中，糖酵解速率提高約100倍[26]，pH加速降低，肉在較高溫度下進入尸僵狀態(tài)，避免了冷收縮的發(fā)生[27]。

電刺激的參數(shù)對作用效果有很大的影響，這些參數(shù)包括電壓、電流、波形、頻率、實施時間、電極類型、電極的位置等。

1749年，Benjamin Franklin首次對宰后火雞進行電刺激，然而直到1951年，美國人Harsham&Deatherage（美國專利號2，544，681）和Renschler（美國專利號2，544，724）才首次申請專利[28]。新西蘭工業(yè)首先應(yīng)用電刺激改善羊肉品質(zhì)，隨后，在世界范圍內(nèi)的肉類屠宰加工業(yè)都進行了一項技術(shù)革新，即利用電刺激技術(shù)來改善肉類品質(zhì)[29]。電刺激最早用來避免肉類冷收縮導(dǎo)致的韌化作用[30]，后來，電刺激作為肉類快速成熟技術(shù)，用來縮短肉類成熟時間，加速肉類嫩化過程[31]。并且，電刺激還可以改善肉色，避免產(chǎn)生熱環(huán)。

1.2.3 超高壓嫩化。

對尸僵前的肌肉加壓可提高肉的嫩度。很多學(xué)者均報道了100～300 MPa的壓力對肉進行高壓處理有助于肉嫩度的提高[32]，但關(guān)于高壓對肉嫩化的作用機理還有待完善[33]。試驗發(fā)現(xiàn)，高壓可以瞬間提高肌漿中鈣離子的濃度，從而激活鈣激活酶，降解肌纖維中的結(jié)構(gòu)蛋白，導(dǎo)致肌原纖維完整性破壞，提高肉的嫩度。

1.2.4 注射氯化鈣。Calpain的激活需要充足的鈣離子，但是宰后肌肉內(nèi)的鈣離子濃度太低，因此，加入外源鈣離子可以使Calpain充分激活，從而使肉產(chǎn)生最大嫩化效應(yīng)。最常使用的是動脈或者肌肉注射氯化鈣溶液技術(shù)來提高鈣離子濃度，改善肉品質(zhì)。

1.2.5 超聲波處理。

超聲波最早在改善肉品嫩度中的應(yīng)用是美國農(nóng)業(yè)調(diào)查所的Morse Solomon和John Long在1992年利用小塊的高能炸藥在水中爆炸所產(chǎn)生的超聲波處理肉，破壞了肉內(nèi)蛋白及聯(lián)接鍵，降低了肉品硬度，從而達到嫩化作用。試驗證實，超聲波可以較好地改善肉的嫩度。

2 電刺激影響嫩度的分子機理

2.1 通過糖酵解代謝途徑影響嫩度

動物屠宰后，肌肉中的能量代謝系統(tǒng)從開始的有氧代謝轉(zhuǎn)為無氧代謝，ATP主要來源于糖原降解為乳酸及磷酸肌酸中磷酸轉(zhuǎn)移給ADP [34]。肌酸激酶能夠催化ATP與ADP間磷酸基團的可逆轉(zhuǎn)移。前期研究中，確定了20多種肉質(zhì)標記蛋白，主要有骨架蛋白質(zhì)比如肌聯(lián)蛋白（Titin）、伴肌動蛋白（Nebulin）、肌鈣蛋白（Troponin-T）；代謝酶比如肌酸激酶（Creatine Kinase）、丙酮酸激酶（Pyruvate Kinase）、糖原磷酸化酶（Glycogen Phosphorylase）等。在屠宰后24 h的可溶性蛋白質(zhì)組分中發(fā)現(xiàn)了肌酸激酶[35]，豬宰后總蛋白[36]及牛肉可溶性蛋白質(zhì)中[37]肌酸激酶片段的豐度增加。目前，代謝酶作為肉品質(zhì)標記的研究還不多，但根據(jù)前期已有蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)表明，代謝酶將會成為很好的肉類標記蛋白。

研究認為，電刺激能夠加速宰后的糖酵解[38]，而且發(fā)現(xiàn)有些代謝酶例如肌酸激酶和磷酸丙糖異構(gòu)酶因為電刺激而導(dǎo)致表達改變[39]。電刺激處理使牛肉中蛋白水解酶的活性增加，也使許多關(guān)鍵的代謝酶水解，且這種水解和嫩化有關(guān)系[40]。并且，電刺激對嫩度的影響是通過pH與溫度的相互作用來完成的。改變胴體的溫度要比改變pH難，因此，在實際應(yīng)用中，可以考慮在最佳的pH和溫度下進行電刺激來提高牛肉的嫩度。電刺激加速胴體內(nèi)糖酵解途徑，防止肌肉快速冷卻時的冷收縮，使胴體內(nèi)能量大量消耗，ATP轉(zhuǎn)化ADP為磷酸鹽，釋放出鈣離子，乳酸積累，形成高溫低pH環(huán)境，嫩度提高。

2.2 通過鈣蛋白酶途徑影響嫩度 物理性破壞提高牛肉嫩度的機理，可能是破壞牛肉本身提高成熟的能力，或者是物理破壞引起的某種方式，又或者是引起肌漿網(wǎng)中過量鈣離子的釋放，從而引起攣縮帶的出現(xiàn)，導(dǎo)致肌原纖維的超微結(jié)構(gòu)改變[41]。而攣縮帶肌節(jié)的斷裂有可能是因為物理破壞，也有可能是因為肌原纖維超微結(jié)構(gòu)的降解，使蛋白酶更多地暴露，加快了蛋白質(zhì)的降解[42]。

前期研究表明，細胞骨架蛋白Titin、Nebulin、Desmin和Troponin-T的降解使肌原纖維發(fā)生一系列的物理、化學(xué)和結(jié)構(gòu)的變化，導(dǎo)致肌纖維小片化，破壞了肌纖維結(jié)構(gòu)的完整性，并最終改善了肉嫩度[43]。電刺激后骨架蛋白：肌間線蛋白（Desmin）、肌鈣蛋白-T （Troponin T α-異構(gòu)體）、肌球蛋白結(jié)合蛋白H（Myosin binding protein H）表達下調(diào)。電刺激的電流經(jīng)過神經(jīng)系統(tǒng)或者直接使肌膜去極化，從而引起肌肉收縮，溫度升高，pH加速降低，可能是由于改變了Calpain/Calpastatin的比例[44]，或者是由于提高肌肉鈣離子濃度激活了Calpains蛋白酶體系，從而導(dǎo)致蛋白質(zhì)的降解加速，肉嫩度提高。

2.3 通過溶酶體途徑影響嫩度 溶酶體位于肌細胞的肌漿中，在哺乳動物的細胞降解機制中起重要作用。溶酶體水解酶大多數(shù)是可溶性的，主要包括糖苷酶、核酸酶、磷酸酯酶、蛋白酶、脂肪酶等，少數(shù)整合在膜上，將生物大分子水解為可吸收利用的小分子。如果酸性水解酶從溶酶體釋放出來，就會破壞哺乳動物的細胞結(jié)構(gòu)要素。

過氧化物氧化還原酶Prx6是溶酶體中一類重要的水解酶，Prx6是一個雙功能蛋白，同時具有過氧化物氧化還原酶和溶酶體組織蛋白酶的活性[45-46]。Prx6在細胞內(nèi)調(diào)控機體生長和代謝過程、肌原纖維斷裂過程、宰后肌肉嫩化過程。溶酶體內(nèi)的酶都是酸性水解酶，反應(yīng)的最適pH約為5.0，溶酶體的膜上有質(zhì)子泵，將H+泵入溶酶體，使pH降低。當細胞pH下降到5.0，酸性水解酶被激活，使溶酶體膜水解裂開，釋放出溶酶體酶，導(dǎo)致細胞自溶。當細胞中pH接近中性時，Prx6在肌漿中發(fā)揮過氧化物氧化還原酶活性，當細胞中pH為5.0左右時，Prx6在溶酶體中發(fā)揮鈣離子依賴的磷脂酶A2 活性，利用溶酶體途徑來調(diào)控肉類中骨架蛋白的降解[47]。電刺激后pH不斷下降，直到pH為5.4左右，鈣離子濃度升高，Prx6主要發(fā)揮鈣離子依賴的磷脂酶 A2 活性，溶酶體水解酶從破裂的溶酶體膜中釋放出來，水解肌肉蛋白，改善嫩度。

另外，電刺激通過溶酶體途徑影響嫩度也有可能是由于凋亡酶的作用。因為在細胞凋亡中，溶酶體可以消化內(nèi)吞的凋亡小體，釋放大量溶酶體水解酶進行壞死和自噬性細胞死亡。然而更多研究表明，溶酶體不僅可以消化內(nèi)吞的凋亡小體，它所釋放出的水解酶也可以引起溶酶體信號途徑的凋亡，并且，電離輻射、細胞因子缺失、熱等外界因素可引起內(nèi)源性途徑，提高線粒體膜的通透性，釋放細胞色素C等凋亡相關(guān)蛋白，激活凋亡酶誘導(dǎo)細胞凋亡。

2.4 通過氧化應(yīng)激途徑影響嫩度 氧化應(yīng)激，指的是生物體受到外界傷害性刺激后產(chǎn)生活性氧積累，產(chǎn)生細胞毒性，致使生物體內(nèi)組織損傷的過程。生物體免疫應(yīng)答需要適量活性氧，但如果活性氧水平超出抗氧化能力，就會產(chǎn)生氧化應(yīng)答，利用抗氧化作用維持體內(nèi)氧化還原平衡，引發(fā)生物膜脂質(zhì)過氧化、細胞內(nèi)蛋白質(zhì)和酶變性、DNA損傷，從而引起細胞死亡、凋亡和組織損傷，導(dǎo)致疾病的發(fā)生[48]。

動物受到外界刺激后，可以引發(fā)很多條不同的信號傳導(dǎo)途徑，而且這些途徑相互作用，叫做交叉作用?；钚匝鮎OS作為一類第二信使，傳遞應(yīng)激信號，對細胞產(chǎn)生各種作用。適度的ROS水平可以有效激活細胞的氧化還原敏感型信號通路如MAPK、PI3K/Akt等[49-50]，各通路之間可以相互聯(lián)系，MAPK、PI3K/Akt通過磷酸化來調(diào)節(jié)hsf-1、p53、nf-κb[51]等轉(zhuǎn)錄因子，從而誘導(dǎo)一系列氧化還原敏感型基因的表達，控制細胞對生長、凋亡、應(yīng)激等信號的反應(yīng)。

生物體的信號傳遞指的是，細胞在感知到胞外刺激以后，利用細胞內(nèi)信號分子的逐級傳遞，誘導(dǎo)產(chǎn)生一系列細胞質(zhì)和細胞核事件和生理生化反應(yīng)的過程。其中，MAPK級聯(lián)途徑在真核生物細胞內(nèi)的信號傳遞中具有不可忽視的作用[52]。MAPK成員分為MAPK、MAPKK和MAPKKK，在信號傳遞時氨基酸殘基磷酸化逐級被激活。MAPK激活后可能在細胞質(zhì)中激活別的蛋白酶，也可能使細胞骨架磷酸化，也可能在細胞核中利用磷酸化的轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控基因表達。動物細胞中的MAPK信號傳導(dǎo)途徑至少存在4條，而且激酶的激活都要在保守的位點進行雙重磷酸化[53-55]。胞外信號分子作用于至少3種類型受體：酪氨酸蛋白激酶型、組氨酸蛋白激酶型、有7段的跨膜區(qū)域的蛋白受體[56]。在動物中，生長因子、激素等分別在相應(yīng)酪氨酸激酶型受體及7段的跨膜區(qū)域的蛋白受體上作用，引發(fā)了ERK1/ERK2途徑[57]。其中，受到Ras激活ERK1/ERK2途徑很受關(guān)注。目前，國內(nèi)外對于在肉類成熟的氧化應(yīng)激途徑中酶類的研究還很少。

過氧化物氧化還原酶Prx是近年來發(fā)現(xiàn)的可以保護機體細胞免受氧化劑損傷的蛋白質(zhì)家族，可以清除機體內(nèi)的H2O2和烷基過氧化物，通過它的過氧化物酶活性，使細胞避免氧化損傷。除了抗氧化活性外，還參與多種生物學(xué)功能，比如細胞增殖、分化、凋亡[58]、基因表達和細胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等。其中，Prx6位于胞漿，在肺中的含量最高，具有過氧化物酶活性和磷脂酶A2活性。前期研究證明，Prx6具有過氧化物氧化還原酶活性，活性氧（ROS）誘導(dǎo)氧化應(yīng)激，激活Prx6[59-62]，降解活性氧[63]。Yang等[64]用雙向電泳技術(shù)分析大白豬和梅山豬背最長肌的差異表達蛋白，鑒定出Prx6在2個品種間表達存在著顯著差異，在隨后的研究工作中，把Prx6基因當做豬肉品質(zhì)性狀的候選基因，探索了Prx6基因的多態(tài)性與豬肉品質(zhì)性狀之間的關(guān)系。Prx6在pH接近中性時，發(fā)揮過氧化物氧化還原酶活性，通過p38 MAPK級聯(lián)途徑刺激增殖和抑制細胞凋亡。電刺激后pH不斷下降，直到極限pH為5.4左右，肌漿中Ca2+濃度升高，Prx6主要發(fā)揮Ca2+依賴的磷脂酶 A2活性，通過溶酶體途徑使肌肉蛋白水解，在一定程度上抑制了p38 MAPK級聯(lián)途徑，抑制增殖，促進氧化凋亡，嫩度提高。

另外，哺乳動物中，磷脂酰乙醇胺結(jié)合蛋白PEBP蛋白有雙重作用，包括脂質(zhì)結(jié)合及使絲氨酸蛋白酶受到抑制[65]。PEBP4是PEBP家族的一員，不僅抑制Raf-1-MEK1/2-ERK1/2-MAPK途徑[66-67]，而且抑制能夠活化AKT的JNK途徑，ATK能夠推動細胞侵襲和轉(zhuǎn)移[68-70]。Raf 激酶抑制蛋白（Raf kinase inhibit or protein，RKIP），屬于PEBP家族，酵母雙雜交的試驗證明，RKIP和PEBP4可以抑制Raf-1激酶活性，在MAPK級聯(lián)信號傳導(dǎo)途徑中使Raf-1及MEK1失活[71-72]。PEBP與Raf-1相互起作用，抑制Ras-MAPK級聯(lián)信號傳導(dǎo)。牛屠宰后胴體內(nèi)產(chǎn)生活性氧，激活MAPK級聯(lián)途徑，PEBP與Raf-1相互起作用，抑制Ras-MAPK信號傳導(dǎo)途徑。電刺激加速PEBP抑制MAPK級聯(lián)途徑，抑制增殖，加速氧化凋亡，提高嫩度。

氧化應(yīng)激能夠激活PI3K/Akt信號通路。PI3K（phosphoinositide 3-kinase）具有Ser/Thr激酶和磷脂酰肌醇激酶活性[73]。Akt又稱PKB（protein kinase B），也是一種Ser/Thr激酶。近年的研究表明，細胞可被內(nèi)外因素誘導(dǎo)啟動PI3K/Akt傳導(dǎo)途徑，促進細胞增殖、分化、轉(zhuǎn)移，抑制細胞凋亡[74-75]。研究表明， PI3K和JAK2也參與Prx6的激活[76]。

3 展望

電刺激通過糖酵解代謝途徑、鈣激活中性蛋白酶途徑、溶酶體途徑、氧化應(yīng)激途徑影響嫩度的信號通路表明，牛肉嫩化與氧化、凋亡有密切聯(lián)系；電刺激抑制氧化應(yīng)激，抑制增殖，加速氧化凋亡，加快嫩化。具體的機制還需要進一步的試驗驗證，比如對牛肉中基因進行分離及遺傳效應(yīng)分析，基因的敲除或者過表達、加抑制劑，啟動子克隆和轉(zhuǎn)錄因子的研究，可以進行基因結(jié)構(gòu)、時空表達譜、多態(tài)性及性狀關(guān)聯(lián)分析等方面的研究，建立其與嫩度的關(guān)系，從而指導(dǎo)生產(chǎn)。從基因水平上，進一步研究代謝通路及基因網(wǎng)絡(luò)， 具有非常重要的理論意義。

參考文獻

[1] SHACKELFORD S D，WHEELER T L，MEADE M K，et al.Consumer impressions of tender select beef[J].Journal of animal science，2001，79（10）：2605-2614.

[2] LUSK J L，F(xiàn)OX J A，SCHROEDER T C，et al.In-store valuation of steak tenderness[J].American journal of agricultural economics，2001，8（3）：539-550.

[3] BOLEMAN S J，BOLEMAN S L，MILLER R K，et al.Consumer evaluation of beef of known categories of tenderness[J].J Anim Sci，1997，75（6）：1521-1524.

[4] MORGAN J B，SAVELL J W，HALE D S，et al.National beef tenderness survey[J].Journal of animal science，1991，69（8）：3274-3283.

[5] GEORGE M H，TATUM J D，BELK K E，et al.An audit of retail beef loin steak tenderness conducted in eight U.S. cities[J].Journal of animal science，1999，77（7）：1735-1741.

[6] KOOHMARAIE M，GOLL D E.Letter to the editor：Initial toughness of meat-the response[J].Meat science，1998，49（3）：361-363.

[7] GOLL D E，GEESINK G H，TAYLOR R G，et al.Does proteolysis cause all postmortem tenderization or are changes in the actin/myosin interaction involved[C]//Danish meat research institute，Centre for ad-vanced food studies.Proceedings of the 41st international congress of meat science and technology.San antonio，USA，1995，41：537-550.

[8] KERTH C R.Electrical stimulation effects on tenderness of five muscles from Hampshire×Rambouillet crossbred lambs with the callipyge phenotype[J].J Anim Sci，1999，77（11）：2951-2955.

[9] DAVIS G W，SMITH G C，CARPENTER Z L，et al.Tenderness variations among beef steaks from carcasses of the same USDA quality grade[J].Journal of animal science，1979，49：103-114.

[10] BELEW J B，BROOKS J C，MCKENNA D R，et al.Warner-Bratzler shear evaluations of 40 bovine muscles[J].Meat science，2003，64（4）：507-512.

[11] LONERGAN E H，ZHANG W G，LONERGAN S M.Biochemistry of postmortem muscle：Lessons on mechanisms of meat tenderization[J].Meat science，2010，86（1）：184-195.

[12] ROBSON R M.Myofibrillar and cytoskeletal structures and proteins in mature skeletal muscle cells[M]//OUALI A，DEMEYER D，SMUDERS F.Expression of tissue proteinases and regulaion of protein degradaion as related to meat quality.Utrecht，Netherlands：ECCEAMST，1995：267-288.

[13] OSHEA J M，ROBSON R M，HUIATT T W，et al.Purified desmin from adult mammalian skeletal muscle：A peptide mapping comparison with desmins from adult mammalian and avian smooth muscle[J].Biochemical and biophysical research communications，1979，89（3）：972-980.

[14] MELODY J L，LONERGAN S M，ROWE L J，et al.Early postmortem biochemical factors influence tenderness and water-holding capacity of three porcine muscles[J].Journal of animal science，2004，82（4）：1195-1205.

[15] ROWE L J，MADDOCK K R，LONERGAN S M，et al.Oxidative environments decrease tenderization of beef steaks through inactivation of μ-calpain[J].Journal of animal science，2004，82（11）：3254-3266.

[16] ZHANG W G，LONERGAN S M，GARDNER M A，et al.Contribution of postmortem changes of integrin，desmin and μ-calpain to variation in water holding capacity of pork[J].Meat science，2006，74（3）：578-585.

[17] KOOHMARAIE M.Muscle proteinases and meat aging[J].Meat science，1994，36（1/2）：93-104.

[18] CARLIN K R，HUFF-LONERGAN E，ROWE L J，et al.Effect of oxidation，pH，and ionic strength on calpastatin inhibition of μ-and m-calpain[J].Journal of animal science，2006，84（4）：925-937.

[19] OLSON D G，PARRISH F C，DAYTON W R J，et al.Effect of postmortem storage and calcium activated factor on myofibrillar proteins of bovine skeletal muscle[J].Journal of food science，1977，42（11）：117-124.

[20] HO C Y，STROMER M H，ROBSON R M.Effects of electrical stimulation and postmortem storage on changes in titin，nebulin，desmin，troponin-T，and muscle ultrastructure in Bos indicus crossbred cattle[J].Journal of animal science，1996，75（2）：366-376.

[21] UYTTERHAEGEN L，CLAEYS E，DEMEYER D.Effects of exogenous protease effectors on beef tenderness development and myofibrillar degradation and solubility[J].J Anim Sci，1994，72（5）：1209-1223.

[22] DRANSFIELD E，ETHERINGTON D J，AYLOR M A.Modeling postmortem tenderization.Ⅱ：Enzyme changes during storage of electrically stimulated and non-stimulated beef[J].Meat science，1992，31（1）：75-84.

[23] DRANSFIELD E，WAKEFIELD D K，PARKMAN I D.Modelling post-mortem tenderization.Ⅰ：Texture of electrically stimulated and non-stimulated beef[J].Meat science，1992，31（1）：57-73.

[24] SIMMONS N J，DALY C C，CUMMINGS T L，et al.Reassessing the principles of electrical stimulation[J].Meat science，2008，80（1）：110-122.

[25] DEVINE C E，WAHLGREN N M，TORNBERG E.Effect of rigor temperature on muscle shortening and tenderisation of restrained and unrestrained beef M.longissimus thoracis etlumborum[J].Meat science，1999，51：61-72.

[26] WILL P A，OWNBY C L，HENRICKSON R L.Ultrastructural postmortem changes in electrically stimulated bovine muscle[J].Journal of food science，1980，45（1）：21-25.

[27] DAVEY C L，GILBERT K V.The mechanism of cold-induced shortening in beef muscle[J].International journal of food technology，1974，9（1）：51-58.

[28] HARSHAM A，DEATHERAGE F E.Tenderisation of meat：US，2544681[P].1951-03-13.

[29] EIKELENBOOM G，SMULDERS F J M.Effect of electrical stimulation on veal quality[J].Meat science，1986，16（2）：103-112.

[30] CARSE W A.Meat quality and the acceleration of post-mortem glycolysis by electrical stimulation[J].International journal of food technology，1973，8（2）：163-166.

[31] PEARSON A M，DUTSON T R.Scientific basis for electrical stimulation[M].Berlin：Springer Netherlands，1981：185-218.

[32] KOOHMARAIE M，KENNICK W H，EAANGLEMIER E.Effect of prerigor pressurzation on the activity of calcium-activated factor[J].J Food Sci，1984，49（3）：680-684.

[33] OUALI A.Meat tenderization：Possible causes and mechanisms.A review[J].Journal of muscle foods，1990，1（2）：129-165.

[34] PS A R，PUOLANNE E.Carbohydrate metabolism in meat animals[J].Meat science，2005，70（3）：423-434.

[35] JIA X H，EKMAN M，GROVE H，et al.Proteome changes in bovine longissimus thoracis muscle during the early postmortem storage period[J].Journal of proteome research，2007，6（7）：2720-2731.

[36] LAMETSCH R，KARLSSON A，ROSENVOLD K，et al.Postmortem proteome changes of porcine muscle related to tenderness[J].Journal of agricultural and food chemistry，2003，51（24）：6992-6997.

[37] BJARNADTTIR S G，HOLLUNG K，F(xiàn)AERGESTAD E M，et al.Proteome changes in bovine longissimus thoracis muscle during the first 48 h postmortem：Shifts in energy status and myofibrillar stability[J].Journal of agricultural and food chemistry，2010，58（12）：7408-7414.

[38] EILERS J D，TATUM J D，MORGAN J B，et al.Modification of early-postmortem muscle pH and use of postmortem aging to improve beef tenderness[J].Journal of animal science，1996，74（4）：790-798.

[39] MARTIN A H，MURRAY A C，JEREMIAH L E，et al.Electrical stimulation and carcass aging on beef carcasses in relation to postmortem glycolytic rates[J].Journal of animal science，1983，57（6）：1456-1462.

[40] DRANSFELD E.Modelling post-mortem tenderisation-V：Inactivation of calpains[J].Meat science，1994，37（3）：391-409.

[41] CULLER R D，PARRISH J F C，SMITH G C，et al.Relationship of myofibril fragmentation index to certain chemical，physical and sensory characteristics of bovine longissimus muscle[J].Journal of food science，1978，43（4）：1177-1180.

[42] FERGUSON D M，JIANG S-T，HEARNSHAW H，et al.Effect of electrical stimulation on protease activity and tenderness of M.longissimus from cattie with different proportions of Bos indicus content[J].Meat science，2000，55（3）：265-272.

[43] HO C Y，STROMER M H，ROBSON R M.Effect of electrical stimulation on postmortem titin，nebulin，desmin，and troponin-T degradation and ultrastructural changes in bovine longissimus muscle[J].J Anim Sci，1996，74（7）：1563-1575.

[44] KOOHMARAIE M，SEIDEMAN S C，SCHOLLEMEYER J E，et al.Effect of post-mortem storage on Ca2+-dependant proteases，their inhibitor and myofibril fragmentation[J].Meat Sci，1987，19（3）：187-196.

[45] CHEN J W，DODIA C，F(xiàn)EINSTEIN S I，et al.1-Cys peroxiredoxin，a bifunctional enzyme with glutathione peroxidase and phospholipase A2 activities[J].J Biol Chem，2000，275（37）：28421-28427.

[46] FISHER A B.Peroxiredoxin 6：A bifunctional enzyme with glutathione peroxidase and phospholipase A2 activities[J].Antioxid Redox Signal，2011，15（3）：831-844.

[47] FISHER A B，DODIA C.Role of phospholipase A2 enzymes in degradation of dipalmitoyl-phosphatidyl choline by granular pneumocytes[J].J Lipid Res，1996，37（5）：1057-1064.

[48] HORI M，NISHIDA K.Oxidative stress and left ventricular remodelling after myocardial infarction[J].Cardiovasc Res，2009，81（3）：457-464.

[49] LEE S B，HO J N，YOON S H，et al Peroxiredoxin 6 promotes lung cancer cell invasion by inducing urokinase-type plasminogen activator via p38 kinase，phosphoinositide 3-kinase，and Akt[J].Mol Cells，2009，28（6）：583-588.

[50] PARK C M，PARK M J，KWAK H J，et al.Ionizing radiation enhances matrix metalloproteinase-2 secretion and invasion of glioma cells through Src/epidermal growth factor receptor-mediated p38/Akt and phosphatidylinositol 3-kinase/Akt signaling pathways[J].Cancer Res，2006，66（17）：8511-8519.

[51] FATMA N，KUBO E，SEN M，et al.Peroxiredoxin 6 delivery attenuates TNF-alpha-and glutamate-induced retinal ganglion cell death by limiting ROS levels and maintaining Ca2+ homeostasis[J].Brain Res，2008，1233（15）：63-78.

[52] ABERG E，TORGERSEN K M，JOHANSEN B，et al.Docking of PRAK/MK5 to the atypical MAPKs ERK3 and ERK4 defines a novel MAPK interaction motif[J].J Biol Chem，2009，284（29）：19392-19401.

[53] NICK J A，YOUNG S K，BROWN K K，et al.Role of p38 mitogen-activated protein kinase in a murine model of pulmonaxy inflammation[J].J Immunol，2000，164（4）：2151-2159.

[54] SETERNES O M，JOHANSEN B，HEGGE B，et al.Both binding and activation of p38 mitogen-activated protein kinase （MAPK） play essential roles in regulation of the nucleocytoplasmic distribution of MAPK-activated protein kinase 5 by cellular stress[J].Mol Cell Biol，2002，22（20）：6931-6945.

[55] NEW L，JIANG Y，HAN J.Regulation of PRAK subcellular location by p38 MAP kinases[J].Mol Biol Cell，2003，14（6）：2603-2616.

[56] DODOU E，TREISMAN R.The saccharomyces cerevisiae MADS-box transcription factor Rlm1 is a target for the Mpk1 mitogen-activated protein kinase pathway[J].Molecular and cellular biology，1997，17（4）：1848-1859.

[57] ROUX P P，BLENIS J.ERK and p38 MAPK-activated protein kinases：A family of protein kinases with diverse biological functions[J].Microbiol Mol Biol Rev，2004，68（2）：320-344.

[58] KUBO E，F(xiàn)ATMA N，AKAGI Y，et al.TAT-mediated PRDX6 protein transduction protects against eye lens epithelial cell death and delays lens opacity[J].Am J Physiol Cell Physiol，2008，294（3）：842-855.

[59] MANEVICH Y，F(xiàn)ISHER A B.Peroxiredoxin 6，a 1-Cys peroxiredoxin，functions in antioxidant defense and lung phospholipid metabolism[J].Free Radic Biol Med，2005，38（11）：1422-1432.

[60] FATMA N，KUBO E，SHARMA P，et al.Impaired homeostasis and phenotypic abnormalities in Prdx6-/-mice lens epithelial cells by reactive oxygen species：Increased expression and activation of TGFbeta[J].Cell Death Differ，2005，12（7）：734-750.

[61] FATMA N，KUBO E，TAKAMURA Y，et al.Loss of NF- kB control and repression of Prdx6 gene transcription by reactive oxygen species-driven SMAD3-mediated transforming growth factor β signaling[J].J Biol Chem，2009，284（34）：22758-22772.

[62] FATMA N，SINGH P，CHHUNCHHA B，et al.Deficiency of Prdx6 in lens epithelial cells induces ER stress response-mediated impaired homeostasis and apoptosis[J].Am J physiol Cell physiol，2011，301（4）：954-967.

[63] PHELAN S A，WANG X，WALLBRANDT P，et al.Overexpression of Prdx6 reduces H2O2 but does not prevent diet-induced atherosclerosis in the aortic root[J].Free Radic Biol Med，2003，35（9）：1110-1120.

[64] CLARK S J，HARRISON J，PAUL C L，et al.High sensitivity mapping of methylated cytosines[J].Nucleic Acids Res，1994，22（15）：2990-2997.

[65] LI F F，SONG S J，ZHANG R N.Phosphatidylethanolamine-binding protein （PEBP） in basic and clinical study[J].Sheng li ke xue jin zhan，2009，40（3）：214-218.

[66] GARCIA R，GRINDLAY J，RATH O，et al.Regulation of human myoblast differentiation by PEBP4[J].EMBO Rep，2009，10（3）：278-284.

[67] SOROKINA E M，F(xiàn)EINSTEIN S I，ZHOU S，et al.Intracellular targeting of peroxiredoxin 6 to lysosomal organelles requires MAPK activity and binding to 14-3-3ε[J].Am J Physiol Cell Physiol，2011，300（6）：1430-1441.

[68] WANG X，LI N，LIU B，et al.A novel human phosphatidylethanolamine-binding protein resists tumor necrosis factor α-induced apoptosis by inhibiting mitogen-activated protein kinase pathway activation and phosphatidylethanolamine externalization[J].J Biol Chem，2004，279（44）：45855-45864.

[69] LI H，WANG X，LI N，et al.hPEBP4 resists TRAIL-induced apoptosis of human prostate cancer cells by activating Akt and deactivating ERK1/2 pathways[J].J Biol Chem，2007，282（7）：4943-4950.

[70] YU G P，CHEN G Q，WU S，et al.The expression of PEBP4 protein in lung squamous cell carcinoma[J].Tumour Biol， 2011， 32（6）： 1257-1263.

[71] CORBIT K C，TRAKUL N，EVES E M，et al.Activation of Raf-1 signaling by protein kinase C through a mechanism involving Raf kinase inhibitory protein[J].J Biol Chem，2003，278（15）：13061-13068.

[72] SHEMON A N，HEIL G L，GRANOVSKY A E，et al.Characterization of the raf kinase inhibitory protein （RKIP） binding pocket：NMR-based screening identifies small-molecule ligands[J].Plos one，2010，5（5）：10479.

[73] VIVANCO I，SAWYERS C L.The phosphatidylinositol 3-Kinase AKT pathway in human cancer[J].Nat Rev Cancer，2002，2（7）：489-501.

[74] TORII S，NAKAYAMA K，YAMAMOTO T，et al.Regulatory mechanisms and function of ERK MAP kinases[J].J Biochem，2004，136（5）：557-561.

[75] CROWELL J A，STEELE V E，F(xiàn)AY J R.Targeting the AKT protein kinase for cancer chemoprevention[J].Mol Cancer Ther，2007，6（8）：2139-2148.

[76] BAST A，ERTTMANN S F，WALTHER R.et al.Influence of iNOS and COX on peroxiredoxin gene expression in primary macrophages[J].Free Radic Biol Med，2010，49（12）：1881-1891.