奶豆腐來源植物乳桿菌的益生特性評(píng)價(jià)

呂冠薇，段翠翠，高磊，欒暢，趙玉娟，牛春華，李盛鈺*

1(長春醫(yī)學(xué)高等專科學(xué)校 臨床醫(yī)學(xué)部，吉林 長春，130031)2(吉林省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)產(chǎn)品加工研究所，吉林 長春，130033)

奶豆腐來源植物乳桿菌的益生特性評(píng)價(jià)

呂冠薇1，段翠翠2，高磊2，欒暢2，趙玉娟2，牛春華2，李盛鈺2*

1(長春醫(yī)學(xué)高等?？茖W(xué)校 臨床醫(yī)學(xué)部，吉林 長春，130031)2(吉林省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)產(chǎn)品加工研究所，吉林 長春，130033)

以奶豆腐來源的3株植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)為研究對(duì)象，分析了菌株的耐酸耐膽鹽能力、表面疏水性和體外抗氧化能力，旨在評(píng)價(jià)菌株的益生特性。結(jié)果表明：植物乳桿菌對(duì)強(qiáng)酸和高膽鹽具有較好的耐受能力，能保持較高的活性；供試菌株均對(duì)二甲苯的疏水性作用較強(qiáng)，而對(duì)三氯甲烷的疏水作用較弱；3株菌株均具有較好抗氧化活性。

益生菌；植物乳桿菌；耐受；抗氧化

益生菌(probiotic)是一類對(duì)人體有益的活性微生物，可作為食品添加劑加入食品中直接食用，定植于人體腸道、生殖系統(tǒng)內(nèi)，調(diào)節(jié)腸道菌群結(jié)構(gòu)，改善宿主微生態(tài)平衡，促進(jìn)機(jī)體健康[1]。隨著對(duì)益生菌研究的不斷深入，越來越多的益生性發(fā)酵食品得到人們的認(rèn)可。將益生菌添加到食品中，不僅可以增加食品的保健功效，而且還可以改善口感、質(zhì)地和風(fēng)味[2]。目前，市場上的益生菌功能食品種類很多，如酸奶、奶酪、飲料等，但是不同來源的菌株的功能特性存在很大的差異，因此篩選優(yōu)良益生特性和功能特性的乳酸菌新菌株，對(duì)益生菌的應(yīng)用和產(chǎn)品開發(fā)至關(guān)重要。本研究主要通過對(duì)傳統(tǒng)發(fā)酵食品奶豆腐源植物乳桿菌菌株的耐酸耐膽鹽特性、抗氧化能力、蛋白水解活性等進(jìn)行測定，著力于篩選出具有潛在益生特性的優(yōu)良菌株，為今后開發(fā)新型功能性益生菌制品奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)菌株

試驗(yàn)菌株C12、C26和C40為內(nèi)蒙古傳統(tǒng)奶豆腐中分離的新菌株。上述菌株經(jīng)API50 C生化鑒定盒及16S rDNA序列比對(duì)分析，均鑒定為植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)。菌種保存于吉林省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工所。使用前連續(xù)活化傳代培養(yǎng)2代后，按3%量接種于MRS液體培養(yǎng)基中，連續(xù)培養(yǎng)16 h，離心(6 000 r/min，10 min，4 ℃)，滅菌生理鹽水洗滌2次，離心(6 000 r/min，10 min，4 ℃)，菌泥用滅菌生理鹽水調(diào)整菌數(shù)為1010CFU/mL，置4 ℃冰箱備用。

1.2 培養(yǎng)基

MRS(de Man，Rogosa and Sharpe，MRS)液體培養(yǎng)基：蛋白胨10.0 g/L，牛肉膏10.0 g/L，酵母浸粉5.0 g/L，K2HPO42.0 g/L，無水乙酸鈉5.0 g/L，檸檬酸鈉5.0 g/L，MgSO40.2 g/L，MnSO40.05 g/L，葡萄糖20.0 g/L，吐溫80 1.0 mL/L，加水至1 000 mL，調(diào)pH至pH6.6±0.2，115 ℃滅菌15 min。

MRS固體培養(yǎng)基：每升MRS液體培養(yǎng)基中加入瓊脂20 g。

MRS-THIO液體培養(yǎng)基：每升MRS液體培養(yǎng)基中加入巰基乙酸鈉2 g。

1.3 試劑

蛋白胨、牛肉膏、酵母浸粉、葡萄糖、D-山梨醇、瓊脂粉(分析純)，北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司；脫脂乳粉(食品級(jí))，新西蘭進(jìn)口；膽酸-脫氧膽酸鈉鹽混合物(產(chǎn)品編號(hào)：48305)，SIGMA-ALDRICH公司；其余試劑均為分析純。

1.4 儀器與設(shè)備

高壓蒸汽滅菌鍋，日本Sanyo公司；超低溫冰箱，Thermo Electron公司；無菌超凈工作臺(tái)，哈爾濱東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司；HZQ-Q型電熱恒溫培養(yǎng)箱，上海一恒實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司；紫外可見分光光度計(jì)，美國Varian公司；全自動(dòng)凱氏定氮儀，丹麥Foss公司。

1.5 試驗(yàn)方法

1.5.1 菌株耐酸性能的測定

分別將菌株接種于pH 2.0、pH 3.0和pH 6.6的MRS液體培養(yǎng)基中，分別培養(yǎng)1、2和3 h。培養(yǎng)后，各取0.5 mL菌液，無菌生理鹽水稀釋至適宜梯度，取50 μL涂布在MRS固體培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)48 h后菌群計(jì)數(shù)[3-5]。每個(gè)稀釋度做3個(gè)平行，按公式(1)計(jì)算存活率：

(1)

1.5.2 菌株耐膽鹽性能的測定

分別將菌株接種于膽鹽質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.3%、0.5%和1.0%的MRS液體培養(yǎng)基中，分別培養(yǎng)1、2和3 h，以不含膽鹽的MRS培養(yǎng)基為對(duì)照。培養(yǎng)后，各取0.5 mL菌液，無菌生理鹽水梯度稀釋后，取50 μL接種在MRS固體培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)48 h后菌群計(jì)數(shù)[6-7]。每個(gè)稀釋度做3個(gè)平行，按公式(1)計(jì)算。

1.5.3 菌株表面疏水性的測定

采用細(xì)菌黏著物質(zhì)法(bacterial adhesion substance,BATS)測定疏水性。菌泥用PBS溶液(pH 7.2)清洗2次后用PBS溶液重懸，調(diào)整菌懸液濃度為1×108CFU/mL，測定其在600 nm處的吸光度值(A0)。各取菌懸液3 mL，分別加入1 mL二甲苯酯、乙酸乙酯和三氯甲烷混合，靜置10 min，漩渦振蕩2 min后再靜置30 min，在600 nm處測水相吸光度值(A1)[8]。試驗(yàn)重復(fù)3次。按公式(2)計(jì)算菌株疏水性：

(2)

1.5.4 羥自由基清除能力的測定

采用Fenton法進(jìn)行測定[9-10]。在試管中依次加入1 mL 0.435 mmol/L的亮綠溶液，2 mL 0.5 mmol/L的FeSO4溶液和1.5 mL 3%(體積分?jǐn)?shù))的H2O2溶液后，分別加入1 mL 1×109和1×1010CFU/mL濃度的菌株懸液?；靹蚝?，于37 ℃恒溫水浴鍋中靜置20 min，離心(6 000 r/min，10 min，4 ℃)，624 nm波長下測定吸光度。按公式(3)計(jì)算菌株清除羥自由基的能力：

(3)

式中：As，樣品加亮綠和Fenton試劑(Fe2+與過氧化氫構(gòu)成的氧化體系稱為Fenton試劑)的OD值；Ao，無樣品加亮綠和Fenton試劑的OD值；A，無樣品只加亮綠的OD值。

1.5.5 DPPH清除能力的測定

避光條件下，向2 mL 0.5 mmol/L的DPPH甲醇溶液中加入1 mL菌株混懸液，充分混合，靜置30 min后，離心(6 000 r/min，10 min，4 ℃)，517 nm處測定吸光度[11-12]。空白組以等體積甲醇溶液代替DPPH甲醇溶液，對(duì)照組以等體積無菌水代替無細(xì)胞提取液。試驗(yàn)重復(fù)3次。按公式(4)計(jì)算菌株清除DPPH自由基的能力：

(4)

式中：A樣品，樣品只加DPPH的OD值；A空白，樣品只加甲醇的OD值；A對(duì)照，無樣品只加DPPH的OD值。

1.5.6 超氧陰離子清除能力的測定

向1 mL不同濃度的菌株混懸液中依次加入2.8 mL 3 mmol/L的二乙三胺五乙酸溶液和0.2 mL 1.2 mmol/L的鄰苯三酚溶液?；靹蚝?，于25 ℃恒溫水浴鍋中靜置10 min，在325 nm波長條件下測定吸光度值[13]。按公式(5)計(jì)算乳酸菌清除超氧陰離子的能力：

(5)

式中：A11，樣品加二乙三胺五乙酸和鄰苯三酚的吸光度值；A10，樣品只加二乙三胺五乙酸的OD值；A01，無樣品加二乙三胺五乙酸和鄰苯三酚的OD值；A00，無樣品只加二乙三胺五乙酸的OD值。

1.6 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

2 結(jié)果與分析

2.1 菌株的酸耐受能力

由表1分析可知，在pH 6.6的條件下菌株均能良好生長，3株菌存活數(shù)隨著培養(yǎng)時(shí)間的增加呈上升趨勢。在pH 3.0的條件下，3株菌對(duì)酸性環(huán)境的耐受性很好，菌株培養(yǎng)3 h后的存活率均能達(dá)到70%以上，其中C26的存活率較低，耐酸能力較低，C40的存活率最高，為72.71%。在pH 2.0條件下，C26培養(yǎng)3 h后的活菌數(shù)為5.65 lg CFU/mL，存活率最高為70.98%，C12、C40的活菌數(shù)都在5 lg CFU/mL以下。試驗(yàn)結(jié)果表明，這3株菌在酸性條件下耐受性良好，仍保持較高的菌株存活數(shù)，其中植物乳桿菌C26在pH 2.0 條件下具有較強(qiáng)的耐酸性，植物乳桿菌C40在pH 3.0條件下具有較強(qiáng)的耐酸性。耐酸能力是植物乳桿菌重要的特征之一，其耐受力的高低意味著該菌株在胃腸道中的存活能力的高低。HECHARD等[14]研究結(jié)果表明，干酪乳桿菌212.3、F19和L.rhamnosusGG均不能耐受pH 2.0的酸度。MARAGKOUDAKIS等[15]報(bào)道乳桿菌能夠在pH 2.5～3.0的環(huán)境中定植，但對(duì)更低pH的酸度均不耐受。與已報(bào)道菌株相比，本實(shí)驗(yàn)3株乳酸菌對(duì)低pH具有較強(qiáng)的耐受能力。

表1 菌株的耐酸性

2.2 菌株膽鹽耐受能力

益生菌必須能耐受機(jī)體消化道內(nèi)的膽鹽環(huán)境，才能定植于腸道發(fā)揮益生作用。本研究通過模擬機(jī)體消化環(huán)境下的膽鹽濃度，考察菌株在腸道中的存活能力。由表2結(jié)果可見，供試菌株在不含膽鹽的MRS培養(yǎng)基中，培養(yǎng)3 h后的菌數(shù)均能達(dá)到8 lg CFU/mL以上，在含0.3%、0.5%、1.0%的牛膽鹽培養(yǎng)基中，生長狀況良好，有不同程度的耐膽鹽性。在0.3%膽鹽濃度的培養(yǎng)基中培養(yǎng)3 h后，C12和C26菌株活菌數(shù)均高于7 lg CFU/mL，C40菌株活菌數(shù)最低且菌株存活率最低。在膽鹽濃度為0.5%和1.0%時(shí)，培養(yǎng)3 h后，C12、C26活菌數(shù)都在6 lg CFU/mL以上，菌株存活率均在78%以上，說明這兩株菌的膽鹽耐受能力較強(qiáng)。相比之下，C40在膽鹽濃度為0.5%和1.0%的培養(yǎng)基中活菌數(shù)較低，難以維持較高的存活率。結(jié)果表明，供試菌株均隨著膽鹽濃度的增加，活菌數(shù)有不同程度的降低，菌株C12和C26具有較強(qiáng)的膽鹽耐受能力，能適應(yīng)人體內(nèi)的膽鹽環(huán)境，定植于腸道中發(fā)揮有益作用。這與一些植物乳桿菌具有較強(qiáng)的膽鹽耐受能力相一致。例如王歡[16]考察了植物乳桿菌的耐膽鹽能力，結(jié)果表明植物乳桿菌對(duì)0.3%膽鹽有較強(qiáng)的耐受能力，菌株存活率可達(dá)到77.19%。JULIUS[17]研究發(fā)現(xiàn)傳統(tǒng)發(fā)酵乳制品中分離出的乳桿菌，在0.3%膽鹽的培養(yǎng)基中存活率能達(dá)到50%～84%。

表2 菌株的耐膽鹽性

2.3 菌株表面疏水性

疏水性能反映出細(xì)菌和腸道上皮細(xì)胞相互作用能力的強(qiáng)弱。研究表明，植物乳桿菌對(duì)宿主腸道的黏附能力與表面疏水性呈正相關(guān)性。試驗(yàn)中采用二甲苯和乙酸乙酯用于檢測菌株表面對(duì)電子的接受能力，三氯甲烷用于檢測菌株表面蛋白供給電子能力。結(jié)果表明，各菌株對(duì)二甲苯的疏水性較高并對(duì)三氯甲烷的疏水性較低，說明所有菌株的接受電子能力均強(qiáng)于供給電子能力。圖1結(jié)果顯示，供試菌株對(duì)二甲苯、氯仿和乙酸乙酯3種有機(jī)溶劑的表面疏水性存在較大差異。菌株LGG對(duì)二甲苯、乙酸乙酯和三氯甲烷的疏水性分別為24.37%、18.16%和30.95%。與對(duì)照菌株鼠李糖乳桿菌(L.rhamnosus)LGG相比，供試菌株對(duì)二甲苯均有較好的疏水性(P<0.05)，疏水率均高于45%。與LGG相比C40對(duì)乙酸乙酯的吸附能力較低(<20%)，表明其接受電子的能力較弱，C12、C26的疏水率分別為17.45%、24.77%，但均低于對(duì)二甲苯的疏水率。供試菌株對(duì)三氯甲烷的吸附能力均較低(<25%)。

圖1 菌株的疏水性Fig.1 The hydrophobic ratio of L. plantarum strains注:數(shù)據(jù)上標(biāo)含有*、#或&表示與LGG組相比差異較顯著(P<0.05)；含**表示與LGG組相比差異極顯著(P<0.01)。

2.4 菌株羥自由基清除能力

羥自由基是一種對(duì)機(jī)體毒性最強(qiáng)、危害最嚴(yán)重的活性氧自由基，它通過電子之間的轉(zhuǎn)移、脫氫以及加成等方式與機(jī)體多種分子作用，損傷細(xì)胞大分子進(jìn)而影響細(xì)胞的正常生理功能[18-19]。因此物質(zhì)對(duì)羥自由基清除能力能夠反映其抗氧化性能。本研究采用Fenton反應(yīng)測定供試菌株對(duì)羥自由基的清除能力，并與LGG進(jìn)行比較。結(jié)果如圖3所示，3株供試菌株和LGG對(duì)羥自由基均具有一定的清除作用，但各菌株對(duì)羥自由基的清除能力存在較大差異。隨著菌株濃度的增加，對(duì)羥自由基清除能力增加，當(dāng)菌液濃度為109CFU/mL時(shí)，供試菌株對(duì)羥自由基的清除率在18.26%～31.15%之間不等，均明顯低于LGG(50.77%)的清除率(P<0.05)。隨著菌液濃度增加，菌株清除羥自由基的能力增強(qiáng)，當(dāng)菌液濃度為1010CFU/mL時(shí)，試驗(yàn)菌株的清除率在40.44%～50.15%之間，而LGG的清除率為53.50%。低濃度的C40對(duì)羥自由基的清除較明顯，高濃度的C26對(duì)羥自由基的清除率明顯。

圖3 菌株清除羥自由基的能力Fig.3 Hydroxyl radical scavenging ability of L. plantarum strains注:數(shù)據(jù)上標(biāo)含有*或#表示與LGG組相比差異較顯著(P<0.05)；含**或##表示與LGG組相比差異極顯著(P<0.01)。

2.5 菌株DPPH清除能力

DPPH是一種穩(wěn)定存在于有機(jī)溶劑的自由基，乳酸菌對(duì)DPPH自由基的清除率，能反映出菌株對(duì)過氧化自由基、烷自由基或脂質(zhì)自由基的清除能力[10,20-22]。由圖4分析可知，供試菌株和LGG對(duì)DPPH自由基均具有一定的清除作用。隨著菌株濃度的增加，對(duì)DPPH清除能力增加，當(dāng)菌液濃度為109CFU/mL時(shí)，菌株DPPH清除率在9.39%～22.60%之間不等，對(duì)照菌株LGG的清除率為11.72%，C40對(duì)DPPH自由基的清除作用顯著高于LGG(P<0.05)，清除率最低的菌株是C26，其清除率為9.39%。菌液濃度為109CFU/mL相比，菌液濃度為1010CFU/mL時(shí)3株供試菌株的DPPH清除作用明顯提高。當(dāng)菌液濃度為1010CFU/mL時(shí)，DPPH清除率在31.09%～46.03%之間不等，菌株C26的DPPH自由基清除能力低于LGG(37.42%)，其他2株菌清除能力高于LGG，其中C40的清除能力顯著高于LGG(P<0.05)，DPPH自由基清除率46.03%。

圖4 菌株清除DPPH自由基的能力Fig.4 DPPH free radical scavenging ability of L. plantarum strains注:數(shù)據(jù)上標(biāo)含有*或#表示與LGG組相比差異較顯著(P<0.05)；含**或##表示與LGG組相比差異極顯著(P<0.01)。

2.6 菌株超氧陰離子清除能力

由圖5分析可知，供試菌株和LGG對(duì)超氧陰離子均具有一定的清除作用。隨著菌株濃度的增加，對(duì)超氧陰離子清除能力增加，當(dāng)菌液濃度為109CFU/mL時(shí)，LGG的清除率為28.74%，3株供試菌株的清除率在5.50%～17.97%之間不等，C26對(duì)超氧陰離子的清除率較高；當(dāng)菌液濃度為1010CFU/mL時(shí)，供試菌株對(duì)超氧陰離子的清除率明顯提高，清除率在17.99%～38.17%之間不等，其中C26的清除能力(38.17%)高于LGG。

圖5 菌株清除超氧陰離子的能力Fig.5 Superoxide anion scavenging ability of L. plantarum strains注:數(shù)據(jù)上標(biāo)含有*或#表示與LGG組相比差異較顯著(P<0.05)；含**或##表示與LGG組相比差異極顯著(P<0.01)。

3 結(jié)論

本文分析了3株奶豆腐來源植物乳桿菌的益生特性，結(jié)果表明3株實(shí)驗(yàn)菌株對(duì)強(qiáng)酸和高膽鹽具有較強(qiáng)的耐受能力，并具有較強(qiáng)的表面疏水性。功能特性分析表明3株菌株具有較好抗氧化活性。綜上所述，植物乳桿菌C12、C26、C40均具有較好的益生特性，可作為今后開發(fā)功能性產(chǎn)品的潛在益生菌資源。

[1] GUARNER F, SCHAAFSMA G J. Probiotics[J]. International Journal of Food Microbiology, 1998, 39(3): 237-238.

[2] 郭壯, 王記成, 閆麗雅, 等. 益生菌LactobacilluscaseiZhang對(duì)酸奶風(fēng)味、質(zhì)地及感官特性的影響[J]. 中國乳品工業(yè), 2009, 37(1): 14-20.

[3] CLAIRE L, VERNAZZA, GLENN R, et al. Carbohydrate preference, acid tolerance and bile tolerance in five strains ofBifidobacterium[J]. Journal of Applied Microbiology, 2006, 100(4): 846-853.

[4] BAO Y, ZHANG Y C, ZHANG Y, et al.Screening of potential probiotic properties ofLactobacillusfermentum isolated from traditional dairy products[J]. Food Control, 2010, 21(5): 695-701.

[5] PEREIRA D I A, GIBSON G. Cholesterol assimilation by lactic acid bacteria and bifidobacterian isolated from the humangut [J]. Applied and Environmental Microbiology, 2002, 68(68): 4 689-4 693.

[6] VINDEROLA C G, REINHEIMER J A. Lactic acid starter and probiotic bacteria: a comparative “invitro” study of probiotic characteristics and biological barrier resistance[J]. Food Research International, 2003, 36(9/10): 895-904.

[7] DENG K, CHEN TT, WU QL, et al.Invitroandinvivoexamination of anticolonization of pathogens byLactobacillusparacaseiFJ861111.1[J]. Journal of Dairy Science, 2015, 98(10): 6759-6766.

[8] KOS B, SUSKOVIC J, VUKOVIC S, et al. Adhesion and aggregation ability of probiotic strainLactobacillusacidophilusM92[J]. Journal of Applied Microbiology, 2003, 94(6): 981-987.

[9] WANG Y C, YU R C, CHOU C. Antioxidative activities of soymilk fermented with lactic acid bacteria andBifidobacteria[J]. Food Microbiology, 2006, 23(2): 128-135.

[10] LI S Y, ZHAO Y J, ZHANG L, et al.Antioxidant activity ofLactobacillusplantarumstrains isolated from traditional chinese fermented foods[J]. Food Chemistry, 1914, 135(3): 1 914-1 919.

[11] LIN MY, CHANG FJ. Antioxidative effect of intestinal bacteriaBifidobacteriumlongumATCC 15708 andLactobacillusacidophilusATCC 4356[J]. Digestive Diseases and Sciences, 2000, 45(8): 1 617-1 622.

[12] YANG J, JI Y, PARK H, et al.Selection of functional lactic acid bacteria as starter cultures for the fermentation of Korean leek (AlliumtuberosumRottlerexSprengel.)[J]. International Journal of Food Microbiology, 2014, 191(6): 164-171.

[13] LUO D, FANG B. Structural identification of ginseng polysaccharides and testing of their antioxidant activities[J]. Carbohydrate Polymers, 2008, 72(3): 376-381.

[14] HECHARD Y, DHERBOMEZ M, CENATIEMPO Y, et al. Antagonism of lactic acid bacteria from goats milk against pathogenic strains assessed by the ‘sandwich method’[J]. Letters in Applied Microbiology, 1990, 11(6): 185-188.

[15] MARAGKOUDAKIS P A, ZOUMPOPOULOU G, MIARIS C, et.al. Probiotic potential ofLactobacillusstrains isolated from dairy products[J]. International Dairy Journal, 2006, 16(3): 189-199.

[16] MATHARA J M, SCHILLINGER U, GUIGAS C, et al. Functional characteristics ofLactobacillusspp. from traditional Maasai fermented milk products in Kenya[J]. International Journal of Food Microbiology, 2008, 126(1/2): 57-64.

[17] ZENG X, PAN D, GUO Y. The probiotic properties ofLactobacillusbuchneriP2[J]. Journal of Applied Microbiology, 2010, 108(6): 2 059-2 066.

[18] 陳路清, 李青青, 馬鎏镠等.體外篩選降膽固醇雙歧桿菌實(shí)驗(yàn)[J]. 工業(yè)科技,2010, 31(7): 333-335.

[19] KAUSHIK JK, KUMAR A,DUARY RK, et al. Functional and probiotic attributes of an indigenous isolate ofLactobacillusplantarum[J]. PLoS ONE. 2009, 4(1): 1-11.

[20] GEORGIEVA R, HAERTLE T, CHOBERT J M, et al. Technological properties of candidate probioticLactobacillusplantarumstrains[J]. International Dairy Journal, 2009, 19(6): 696-702.

[21] 呂加平, 駱承癢, 劉鳳民, 等. 乳酸菌蛋白水解力的測定及研究[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 1999, 30(1): 68-74.

[22] MOJTABA S, TAYEBE M K, MAHBOUBEH A S, et al.Probiotic and antioxidant properties of selenium-enrichedLactobacillusbrevisLSe isolated from an Iranian traditional dairyproduct[J]. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology, 2017, 40(2): 1-9.

Probiotic properties ofLactobacillusplantarumstrains isolated from Dairy Toufu

LYU Guan-wei1, DUAN Cui-cui2, GAO Lei2, LUAN Chang2,ZHAO Yu-juan2, NIU Chun-hua2, LI Sheng-yu2*

1(Clinical Medicine Department, Changchun Medical College, Changchun 130031, China)2(Institute of Agro-food Technology, Jilin Academy of Agricultural Sciences, Changchun 130033, China)

ThreeLactobacillusplantarumstains isolated form Dairy Toufu were taken as the object of this study. It analyzed the acid and bile salt resistance, surface hydrophobicity and anti-oxidation activityinvitroso as to evaluate their probiotic properties. The results showed that the three strains presented better tolerances to acid and bile salt and could maintain higher activities. All the strains manifested stronger hydrophobicity to p-xylene but weak hydrophobicity to chloroform. All the three strains possessed preferable antioxidant activity.

probiotics;Lactobacillusplantarum; tolerance；anti-oxidant activity

碩士研究生(李盛鈺教授為通訊作者，E-mail：lisy720@126.com)。

國家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)(奶牛)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系建設(shè)專項(xiàng)(CARS-37)；長春市產(chǎn)學(xué)研協(xié)同創(chuàng)新示范點(diǎn)建設(shè)專項(xiàng)項(xiàng)目(16CX20)；吉林省科技型中小企業(yè)創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)資金項(xiàng)目(20160308089HJ)；吉林省重點(diǎn)科技攻關(guān)項(xiàng)目(20170204030N Y)

2017-01-05，改日期：2017-03-14

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201706022