劉志航,李平亮,周 斐,羅小勇*
(1.青島農(nóng)業(yè)大學 化學與藥學院,山東 青島 266109;2.青島農(nóng)業(yè)大學 農(nóng)學與植物保護學院,山東 青島 266109)
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超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時檢測植物葉片中吲哚-3-乙酸及其3種氧化產(chǎn)物
劉志航1,李平亮2,周 斐2,羅小勇2*
(1.青島農(nóng)業(yè)大學 化學與藥學院,山東 青島 266109;2.青島農(nóng)業(yè)大學 農(nóng)學與植物保護學院,山東 青島 266109)
以玉米葉片為供試材料,建立了同時測定植物體內(nèi)吲哚-3-乙酸(IAA)及其3種氧化產(chǎn)物吲哚-3-甲醇(ICI)、吲哚-3-甲醛(ICA)、吲哚-3-羧酸(IFA)含量的超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(UPLC-MS/MS)方法。結(jié)果表明,該方法對IAA及其3種氧化產(chǎn)物檢測的線性、精密度和重復性較好,靈敏度較高,4種化合物的檢出限為0.002~1.63 μg/kg,定量下限為0.007~5.43 μg/kg;方法的加標回收率為89.5%~95.3%,相對標準偏差為2.3%~5.1%。玉米葉片的實際測定結(jié)果表明,IAA,ICI,ICA和IFA的含量分別為(196.25±7.10),(26.21±2.13),(18.65±2.02),(13.62±2.06) μg/kg。該方法已成功應(yīng)用于小麥、豌豆、硬毛刺苞菊葉片的測定,通用性較好。
玉米葉片;吲哚-3-乙酸;吲哚-3-甲醇;吲哚-3-甲醛;吲哚-3-羧酸;超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(UPLC-MS/MS)
吲哚-3-乙酸(IAA)是天然植物生長素的主要活性成分,其生理作用十分廣泛,可影響植物細胞的伸長與分裂、植株向地性與向光性的形成、主側(cè)根與下胚軸的生長等過程,對植物的早期發(fā)育和形態(tài)構(gòu)建具有重要意義[1]。對IAA生物合成、運輸和分解代謝方面的系統(tǒng)研究,可深入地揭示植物生長發(fā)育的生理生化過程,闡明作物高產(chǎn)和抗逆性的機理[2-3]。研究表明,IAA合成和代謝之間的平衡是植物特定細胞中游離態(tài)IAA水平的主要決定因素[4]。IAA的代謝途徑包括IAA結(jié)合物的形成與氧化分解兩個方面。前者包括與蔗糖、肌醇、氨基酸、多肽、蛋白質(zhì)等形成結(jié)合物,起IAA貯藏和避免被氧化分解的作用;后者則包括IAA的脫羧氧化和非脫羧氧化兩條途徑,對保持IAA的平衡具有重要作用[4-5]。IAA的氧化脫羧通常由過氧化物酶(POD)催化,早期的研究認為該酶也包括了IAA氧化酶(IAAO)[5-6]。在POD和IAAO的催化下,IAA首先被脫羧氧化為吲哚-3-甲醇(ICI),進一步轉(zhuǎn)化為吲哚-3-甲醛(ICA),最終生成吲哚-3-羧酸(IFA)。一般情況下,植物體內(nèi)ICI和ICA的含量高于IFA(圖1)[4-5,7]。此外,用三價或六價鉻化合物及氯化汞、硫化汞等處理菜豆也會影響該植物POD和IAAO的活性[8]??梢姡参矬w內(nèi)IAA及其3種氧化產(chǎn)物的含量動態(tài)可反映POD及IAAO參與的IAA氧化代謝水平,準確掌握它們的變化情況對于把握植物體內(nèi)的生長素水平及應(yīng)對各種脅迫危害具有重要的意義。
圖1 過氧化物酶催化的IAA氧化脫羧途徑之一Fig.1 One oxidative decarboxylation pathway of IAA catalyzed by POD
目前對于生長素相關(guān)化合物分析方法的研究,主要集中在對IAA及其結(jié)構(gòu)類似物(如吲哚丙酸等)的分析,尚未有同時檢測IAA及其氧化產(chǎn)物的方法報道[9]。作為重要的植物內(nèi)源激素,IAA及其氧化物含量較低,植物基質(zhì)干擾較多,對分析方法的靈敏度和選擇性要求較高[10]。目前,測定IAA相關(guān)化合物的方法有酶聯(lián)免疫法(ELISA)[11]、毛細管電泳法(CE)[12]、化學發(fā)光法(CL)[13]、氣相色譜法(GC)[14]、高效液相色譜法(HPLC)[15]以及液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(UPLC-MS/MS)[16]等。其中,酶聯(lián)免疫法簡單、快速,但易造成假陽性;化學發(fā)光法不易普及;毛細管電泳、高效液相色譜法的靈敏度較低,易受基質(zhì)干擾;氣相色譜法需衍生,操作復雜;而超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法具有高靈敏度、選擇性好、特異性強和分析快速的優(yōu)點,目前已成為痕量植物激素成分定性和定量分析的首選方法[17]。
本研究以玉米葉片為檢測基質(zhì),通過優(yōu)化前處理方法和色譜-質(zhì)譜檢測參數(shù),建立了同時檢測玉米葉片中IAA及其氧化產(chǎn)物(ICI,ICA和IFA)的UPLC-MS/MS分析方法,并以小麥、豌豆和硬毛刺苞菊葉片為供試材料進行了驗證。
1.1 儀器與試劑
超高效液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(Agilent公司,美國):Agilent 1290 Infinity液相色譜系統(tǒng),Agilent 6430串聯(lián)三重四極桿質(zhì)譜儀,配Mass Hunter Qualitative Analysis 工作站;Agilent Poroshell 120 EC-C18超高效液相色譜柱(75 mm×2.1 mm,2.7 μm);SK5200LH 型超聲波清洗儀(上海科導超聲儀器廠);GL21M 高速冷凍離心機(長沙英泰儀器有限公司);AR2140電子分析天平(精度1/100 000,上海衡平儀器儀表廠);RE-2000A 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮儀器廠);SUPELCO 固相萃取裝置(北京康林科技有限責任公司)。
吲哚-3-乙酸標準品(IAA,純度99%)購于美國Sigma公司;吲哚-3-甲醇(ICI,純度96%)、吲哚-3-甲醛(ICA,純度97%)、吲哚-3-羧酸(IFA,純度98%)購于上海麥克林生化科技有限公司;甲醇(色譜純)購自美國Merck公司;流動相所用超純水由美國Millipore 公司的超純水系統(tǒng)制備,以0.22 μm 濾膜過濾后,加入0.1%甲酸;未封端的 C18固相萃取小柱購自天津博納艾杰爾科技有限公司,型號Cleanert C18-N-SPE(Cat,185006-N-SY;Spec,500 mg/6 mL);其他所用試劑均為分析純,購自國藥集團北京化學試劑有限公司;玉米(ZeamaysL.)、小麥(TriticumaestivumL.)、豌豆(PisumsativumL.)種子購于青島德地得農(nóng)化科技有限公司。硬毛刺苞菊(AcanthospermumhispidumDC.)種子為自繁。
IAA,ICI,ICA及IFA標準品用甲醇溶解配制成500 mg/L的標準母液,于4 ℃保存?zhèn)溆?;使用時以甲醇分別稀釋成終濃度為5,10,50,100,500 μg/L的標準溶液。
1.2 植物材料
供試植物的種子種植于光照培養(yǎng)箱(25/20 ℃;光/暗時間比14 h∶10 h)中含有營養(yǎng)土的白色方盤內(nèi),待分別培養(yǎng)至15 d(小麥、豌豆)和30 d(玉米、硬毛刺苞菊)時,各選取葉片1.00 g,去除葉柄,剪碎裝入10 mL凍存管中,-80 ℃冰箱保存。
1.3 樣品前處理
樣品的前處理方法參考已有方法[18-19]加以改進,具體步驟:準確稱取各葉片樣品0.10 g,加液氮研磨后,置于50 mL離心管中,加入10 mL冷卻的提取液(V甲醇∶V水=9∶1),4 ℃下提取12 h。浸提液以10 000 r/min離心15 min,上清液裝入50 mL梨形瓶后用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(45 ℃)將甲醇蒸干后,加入去離子水使提取液總體積仍為10 mL。Supelco 固相萃取裝置安裝完成后,提取液過不封端的C18小柱(使用前,用3.0 mL 去離子水和3.0 mL甲醇活化),然后用1.0 mL 20% 的甲醇(含0.1%甲酸)洗滌小柱去除雜質(zhì),最后用1.0 mL 90%的甲醇淋洗小柱,收集淋洗液,淋洗液用 0.22 μm 針筒過濾器過濾,待上機檢測。
1.4 檢測條件
色譜條件:Agilent Poroshell 120 EC-C18超高效液相色譜柱(75 mm×2.1 mm,2.7 μm),柱溫25 ℃;以甲醇-0.1%甲酸(4∶6,體積比)為流動相進行等度洗脫,流速為0.2 mL/min,進樣體積為 5.0 μL,分離總時間為5.0 min。
質(zhì)譜條件:電噴霧離子源,正離子電離(ESI+)模式;毛細管電壓為 4.0 kV;錐孔反吹氣流速為 10.0 L/min,溫度為 350 ℃;去溶劑氣為高純氮氣,流速為10.0 L/min,溫度350 ℃;碰撞氣為高純氮氣;采用多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)模式,吲哚-3-乙酸的監(jiān)測離子為m/z176 和130,碰撞能為16 eV;吲哚-3-甲醇的監(jiān)測離子為m/z148 和118,碰撞能為3 eV;吲哚-3-甲醛為m/z146和118,碰撞能為12 eV;吲哚-3-羧酸為m/z162和118,碰撞能為12 eV;檢測完成后,由Mass Hunter Qualitative Analysis工作站軟件進行數(shù)據(jù)處理。
1.5 基質(zhì)效應(yīng)
采用相對響應(yīng)值法研究植物葉片的基質(zhì)效應(yīng)[20-21],以TIC峰面積為儀器響應(yīng)值。玉米葉片空白基質(zhì)溶液和甲醇溶劑中,IAA,ICI,ICA和IFA混合標準溶液的最終添加濃度分別為10,100 μg/L。根據(jù)公式ME=Am/Ac×100%計算基質(zhì)效應(yīng),式中ME表示基質(zhì)效應(yīng),Am表示植物葉片基質(zhì)添加標準藥劑的TIC峰面積,Ac表示甲醇溶劑添加標準藥劑的TIC峰面積。由于葉片本身含有4種化合物,所以Am值是標準添加葉片中物質(zhì)的總TIC峰面積(Amtotal)減去空白葉片樣品中的峰面積(Amblank),因此基質(zhì)效應(yīng)計算的表達式ME=(Amtotal-Amblank)/Ac×100%。當ME值小于 100%時,表示基質(zhì)有抑制效應(yīng);ME值大于 100%時,為增強效應(yīng);當ME值為90%~110%時,則認為基質(zhì)效應(yīng)不明顯。
2.1 萃取方法的選擇
作為植物代謝的中心器官,葉片中含有大量的色素、脂類等成分,而IAA及其氧化物的含量較低,因而選擇簡便快速、回收率好的前處理方法是建立分析方法的首要工作。目前,分析植物內(nèi)源激素IAA等成分時常采用甲醇等有機溶劑進行初萃取,再經(jīng)固相萃取或液-液萃取等方法進行提純[9]。由于液液萃取的時間較長,有機溶劑用量較大,而固相萃取可較快地完成樣品富集和凈化,提高檢測靈敏度,且有機溶劑用量少[17]。因此,本研究采用固相萃取(SPE)法對玉米葉片進行樣品前處理。
針對IAA及其氧化物的結(jié)構(gòu)特點,本研究借助不封端的C18小柱進行樣品的凈化,并對凈化步驟中雜質(zhì)洗滌液和目標成分淋洗液組成進行了優(yōu)化。結(jié)果表明,用90%甲醇作為浸提液時,4種化合物的回收率大于80%。 IAA及其氧化物吸附于C18小柱后,用有機比例較低的少量甲醇水溶液雖然難以洗出IAA及其氧化物,但可以去除很多葉片雜質(zhì)成分,而用有機比例較高的少量甲醇水溶液可有效回收IAA及其氧化物。進一步優(yōu)化試驗表明,以1 mL 20%的甲醇水溶液(含0.1%甲酸)和1 mL 90%的甲醇水溶液分別作為雜質(zhì)洗滌液和目標化合物淋洗液,4種化合物在玉米葉片樣品中的加標回收率均大于85%。因此,本研究選擇這兩種溶液作為采用SPE處理的雜質(zhì)洗滌液和目標化合物的淋洗液。
2.2 色譜-質(zhì)譜條件的優(yōu)化
為優(yōu)化質(zhì)譜檢測參數(shù),采用電噴霧正離子和負離子模式對標準液濃度為100 μg/L的IAA,ICI,ICA和IFA分別進行了母離子掃描。結(jié)果表明,4種化合物在正離子模式下的信號豐度遠高于負離子模式,因而確定采用正離子檢測模式[M+H]+。IAA,ICI,ICA和IFA的母離子分別為m/z176,148, 146, 162,進一步對子離子、碰撞能量等參數(shù)進行優(yōu)化,結(jié)合方法的靈敏度和選擇性,分別選擇離子m/z176>130(IAA),m/z148>118(ICI),m/z146>118(ICA),m/z162>118(IFA)為監(jiān)測離子對。
為了縮短樣品分析時間和減少干擾,對色譜流動相和分離條件進行了優(yōu)化。結(jié)果表明,以甲醇和0.1%甲酸(體積比4∶6)作為流動相進行等度洗脫時,4種化合物的峰形較好,可實現(xiàn)目標化合物的準確定性與定量,IAA,ICI,ICA和IFA的保留時間分別為2.778,2.599,2.591,2.637 min,單個樣品檢測的總時間為5.0 min。
2.3 基質(zhì)效應(yīng)的評價
基質(zhì)效應(yīng)(ME)是指色譜分離時的共洗脫物質(zhì)影響了目標成分的離子化效率,從而引起質(zhì)譜信號的抑制或提高[22]。由于葉片基質(zhì)的組成復雜,多種因素均有可能影響檢測目標的質(zhì)譜信號。本研究根據(jù)“1.5”方法計算了玉米葉片的基質(zhì)效應(yīng)。結(jié)果顯示,IAA,ICI,ICA,IFA在玉米葉片基質(zhì)中最終添加量為10 μg/L時,ME值分別為85.7%,84.0%,88.3%,87.7%,存在微弱的基質(zhì)抑制效應(yīng);添加量增至100 μg/L 時,ME值分別92.2%,90.8%,94.6%,97.4%,基質(zhì)效應(yīng)表現(xiàn)不明顯。
2.4 線性范圍、定量下限、精密度及準確度
為了減少基質(zhì)效應(yīng)對分析結(jié)果的影響,本研究采用葉片空白基質(zhì)配制標準曲線進行校正。以峰面積(y)對濃度(x,μg/L)繪制標準曲線,計算各化合物的線性范圍、回歸方程、檢出限、定量下限和相對標準偏差。結(jié)果表明,各化合物在一定濃度范圍內(nèi)的線性關(guān)系較好(r2>0.995),檢測精密度和重復性較高;4種化合物的檢出限(S/N=3)為0.002~1.63 μg/kg,定量下限(S/N=10)為0.007~5.43 μg/kg,日內(nèi)精密度和日間精密度分別為2.9%~4.7%和2.4%~5.0%,化合物的分析靈敏度順序為ICA>IAA>IFA>ICI(見表1)。考慮到IAA及其類似物在植物樣本中的含量多在10~500 μg/kg范圍內(nèi)[22],因而所建立方法可滿足玉米等植物葉片內(nèi)IAA及其氧化物的定性和定量分析需求。
表1 玉米葉片中吲4種待測物的線性回歸方程、檢出限及定量下限
采用所建立的方法,測定了IAA,ICI,ICA,IFA在玉米葉片樣品中的加標回收率,其結(jié)果見表2。其中IAA的加標量分別為10,25,50 μg/kg;ICI,ICA和IFA的加標量為分別2,10,50 μg/kg。測得玉米葉片中IAA,ICI,ICA和IFA的加標回收率分別為92.3%~95.3%,89.5%~89.8%,90.5%~94.0% 和90.4%~92.5%,相對標準偏差(RSD)分別為2.8%~3.1%,3.9%~5.1%, 2.9%~4.1% 和 2.3%~2.9%,說明該方法分析準確度和精密度較高,可滿足玉米葉片中IAA及其氧化產(chǎn)物的定量分析要求。
表2 玉米葉片中4種待測物的加標回收率及相對標準偏差(n=5)
2.5 實際樣品的測定
采用建立的方法,對玉米葉片中IAA,ICI,ICA和IFA的含量進行了檢測,實際樣品的檢測色譜圖如圖2所示。結(jié)果表明,玉米生長30 d后,葉片中IAA的含量為(196.25±7.10) μg/kg,與已有文獻中關(guān)于玉米葉片IAA含量值較為相似[23];3種氧化產(chǎn)物ICI,ICA和IFA的含量分別為(26.21±2.13),(18.65±2.02),(13.62±2.06) μg/kg,均高于本方法的定量下限;4種化合物含量大小順序為IAA>ICI>ICA>IFA,符合圖1所示氧化產(chǎn)物生成順序,而ICI,ICA,IFA含量的顯著增加以及IAA含量的顯著減少可認為是POD催化的IAA氧化增加。玉米是一種世界范圍內(nèi)的重要經(jīng)濟作物, 其IAA含量的降低易引起營養(yǎng)物質(zhì)供應(yīng)不足而導致玉米籽粒敗育降低產(chǎn)量[24],含量降低部分是由其氧化代謝所致,因而本方法可為玉米葉片中IAA氧化相關(guān)研究提供可靠的分析手段。
為了驗證本方法在其他植物葉片中的適用性,對小麥、豌豆和和硬毛刺苞菊葉片中IAA,ICI,ICA和IFA含量進行了初步研究,結(jié)果見表3。在3種植物葉片中均檢測到IAA,ICI,ICA和IFA,且以IAA的含量最高,其含量分別為(177.38±6.43),(150.02±10.38),(208.32±8.25) μg/kg;小麥和硬毛刺苞菊中IAA的3種氧化產(chǎn)物含量大小順序為ICI>ICA>IFA,但在豌豆中含量順序則為ICI>IFA>ICA。以上結(jié)果表明,本方法適用于除玉米之外的其他植物。小麥和豌豆是世界范圍內(nèi)的重要經(jīng)濟作物[25],IAA氧化相關(guān)物質(zhì)的分析有助于研究該兩種作物的生長發(fā)育。而硬毛刺苞菊(AcanthospermumhispidumDC.)是一種廣泛分布于熱帶和部分溫帶地區(qū)的菊科雜草[26],一些除草劑可通過影響雜草體內(nèi)IAA的氧化代謝,干擾雜草的生長發(fā)育[27-28],因而測定雜草體內(nèi)的上述4種化合物有助于研究部分除草劑的作用機理。
表3 小麥、豌豆和硬毛刺苞菊葉片中4種待測物的含量(n=3)
本研究采用SPE的前處理手段,結(jié)合UPLC的快速分離特性以及MS/MS檢測器的高靈敏度和高選擇性,建立了植物葉片內(nèi)IAA及其3種氧化產(chǎn)物的定量分析方法。IAA,ICI,ICA和IFA的保留時間分別為2.778,2.599,2.591 ,2.637 min,單個樣品的分離時間為5 min,方法適用于葉片樣品的自動化和高通量檢測。方法的加標回收率不低于85%,在玉米葉片中的檢出限和定量下限分別為0.002~1.63 μg/kg和0.007~5.43 μg/kg。通過對小麥、豌豆、硬毛刺苞菊等植物葉片的進一步測定,驗證了該方法的通用性。該方法簡單,靈敏度和選擇性較好,可用于植物葉片生長期內(nèi)IAA,ICI,ICA和IFA的同時快速分析。
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Simultaneous Determination of Indole-3-acetic Acid and Its Three Oxidative Products in Plant Leaves by UPLC-MS/MS
LIU Zhi-hang1,LI Ping-liang2,ZHOU Fei2,LUO Xiao-yong2*
(1.College of Chemistry and Pharmacy,Qingdao Agricultural University,Qingdao 266109, China;2.College of Crop Protection and Agronomy,Qingdao Agricultural University,Qingdao 266109, China)
An ultra-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometric(UPLC-MS/MS) method was developed for the simultaneous determination of indole-3-acetic acid(IAA) and its three oxidative products,indole-3-methanol(ICI),indole-3-carboxaldehyde(ICA) and indole-3-carboxylic acid(IFA) in corn(ZeamaysL.) leaves.The results showed that the detection limits for the four compounds were in the range of 0.002-1.63 μg/kg,and the quantitation limits were 0.007-5.43 μg/kg.The recoveries ranged from 89.5% to 95.3% with RSDs of 2.3%-5.1%.The mthod was applied in the determination of the contents of IAA,ICI,ICA and IFA in corn leaves with their results of (196.25±7.10),(26.21±2.13),(18.65±2.02),(13.62±2.06) μg/kg,respectively.Meanwhile,the proposed method was also successfully applied in the analysis of wheat(TriticumaestivumL.),pea(PisumsativumL.) and bristly starbur(AcanthospermumhispidumDC.),which indicated that the method had a good generality.
corn leaves;indole-3-acetic acid;indole-3-methanol;indole-3-carboxaldehyde;indole-3-carboxylic acid;ultra-performance liquid chromatography tandem mass spectrometry(UPLC-MS/MS)
2017-02-12;
2017-02-28
國家自然科學基金項目(31272066)
10.3969/j.issn.1004-4957.2017.06.005
O657.63;Q946.8851
A
1004-4957(2017)06-0732-06
*通訊作者:羅小勇,教授, 研究方向:除草劑毒理學,Tel:0532-86080835,E-mail:luo-xiaoyong@163.com