覃柳燕 郭成林 黃素梅 李朝生 韋莉萍 韋紹龍 田丹丹 周維
摘要:【目的】研究棘孢木霉菌株P(guān)Z6對(duì)香蕉植株促生效應(yīng)、抗氧化酶活性及枯萎病菌室內(nèi)防效的影響,為香蕉枯萎病的防控及PZ6菌株的合理開發(fā)利用提供理論依據(jù)。【方法】以清水為對(duì)照(CK),分別設(shè)PZ6孢子液與枯萎病菌菌液(FOC4)5個(gè)不同組合處理:(1)PZ6;(2)PZ6+FOC4;(3)PZ6(3 d)+FOC4;(4)FOC4(3 d)+PZ6;(5)FOC4,采用盆栽傷根淋灌法,于6~7葉期對(duì)香蕉苗根際進(jìn)行接種處理;不同時(shí)期調(diào)查不同處理香蕉苗植株性狀,測(cè)定香蕉苗根系活力及葉片超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)和過氧化物酶(POD)活性;通過解剖球莖考察病情指數(shù),評(píng)價(jià)PZ6對(duì)枯萎病的室內(nèi)防效?!窘Y(jié)果】與其他處理相比,單施PZ6菌液處理可極顯著提高香蕉苗新增株高和根系活力(P<0.01,下同),兩者分別為6.33 cm和487.43 μgTTF/g·h;與FOC4處理相比,配施PZ6菌液的FOC4菌液處理也可極顯著提高香蕉苗根系活力。接種FOC4菌液50 d后,不同處理香蕉苗球莖枯萎病發(fā)病指數(shù)和防治效果均以PZ6(3 d)+FOC4處理表現(xiàn)最佳,其病情指數(shù)為37.50,防治效果為48.28%,其次為PZ6+FOC4處理,而FOC4(3 d)+PZ6處理表現(xiàn)較差。處理45 d后,除PZ6處理與CK間的葉片POD活性無顯著差異(P<0.05)外,不同處理的香蕉苗葉片SOD、POD和CAT活性均與CK間呈極顯著差異;除CK外,不同處理間不同酶活性呈一定的變化規(guī)律。葉片SOD活性與根系活力表現(xiàn)相似,均以PZ6處理最高(423.71 U/gFW·h),其次為PZ6(3 d)+FOC4、PZ6+FOC4、FOC4(3 d)+PZ6和FOC4處理;葉片POD活性表現(xiàn)相反,以FOC4處理最高(355.07 U/g·min),比對(duì)照極顯著增加82.33 U/g·min,以處理PZ6最低(273.84 U/g·min)。【結(jié)論】棘孢木霉PZ6菌株可在一定程度上提高香蕉苗對(duì)枯萎病菌的防御能力,提前施用PZ6菌株可有效阻止病原菌FOC4侵入香蕉苗,延緩植株發(fā)病。
關(guān)鍵詞: 棘孢木霉;香蕉枯萎病;促生效應(yīng);室內(nèi)防效;抗氧化酶
中圖分類號(hào): S436.67 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A 文章編號(hào):2095-1191(2017)02-0277-07
Abstract:【Objective】The present study investigated effects of Trichoderma asperellum strain PZ6 on banana growth promoting, antioxidase activities and indoor control effect of fusarium wilt, in order to provide references for prevention and control of fusarium wilt and development of strain PZ6. 【Method】Taking clear water as control(CK), five different combinations involving PZ6 spore liquid and Fusarium oxysporum f. sp. cubense liquid(FOC4) were set:(1)PZ6,(2)PZ6+FOC4,(3)PZ6 3d+FOC4,(4)FOC4 3d+PZ6 and (5)FOC4. Inoculation at banana rhizosphere was conducted at 6-7 leaf stage using root-injury irrigating method. The plant traits in different treatments at different stages were measured, including root activity, superoxide dismutase(SOD) activity, catalase(CAT) activity and peroxidase(POD) activity. The corms were dissected to check disease index, so as to evaluate indoor control effects of PZ6 on fusarium wilt. 【Result】Compared to other treatments, PZ6 treatment could significantly enhance plant height increment(6.33 cm) and root activity(487.43 μgTTF/g·h) of banana seedlings(P<0.01, the same below). Compared with FOC4 treatment, FOC4 combined with PZ6 solution could significantly enhance root activity. After 50 days of FOC4 inoculation, the plants treated with PZ6(3 d)+FOC4 showed the best performance in disease index(37.50) and control effect(48.28%), followed by PZ6+FOC4 treatment. The performances were the worst in FOC4(3 d)+PZ6. After 45 days of treatment, excepting for POD activity between treatment PZ6 solution and CK, significant difference(P<0.05) in different treatments between CK were found in SOD, CAT and POD activities in leaf. Excepting for CK, SOD, CAT and POD activities showed certain variation regularity among different treatments. The changing trend of SOD activity was similar to root activity, the highest one was found in treatment PZ6(423.71 U/gFW·h), followed by PZ6(3 d)+FOC4, PZ6+FOC4, FOC4(3 d)+PZ6 and FOC4. The performance of POD activity was on the contrary, the highest one was found in treatment FOC4(355.07 U/g·min), increasing by 82.33 U/g·min compared to CK, and the lowest one was found in PZ6 solution(273.84 U/g·min). 【Conclusion】The isolated T. asperellum strain PZ6 can enhance the defensive capability of banana seedlings against FOC4 at certain degree. Applying PZ6 solution in advance can prevent invasion of FOC4 to banana seedlings and delay the occurrence of fusarium wilt.
Key words: Trichoderma asperellum; banana fusarium wilt; growth-promoting effect; indoor control effect; antioxidase
0 引言
【研究意義】香蕉枯萎病又稱巴拿馬病、黃葉病,是由尖孢鐮孢菌古巴?;停‵usarium oxysporum f. sp. cubense, FOC)侵染引起的世界性毀滅病害,是香蕉病害中危害最嚴(yán)重的一種土傳病害,具有發(fā)病迅速、蔓延快、危害嚴(yán)重、危害范圍廣等特點(diǎn)(韋紹龍等,2016)。自1996年廣州市番禺區(qū)首次發(fā)現(xiàn)由4號(hào)生理小種引起香蕉枯萎病以來,該病害迅速向我國香蕉主產(chǎn)區(qū)擴(kuò)散蔓延,目前在海南、廣東、廣西、云南等香蕉種植區(qū)的蕉園病株率達(dá)10%~40%,嚴(yán)重的在90%以上(韋紹龍等,2015)。選育抗(耐)枯萎病香蕉品種是該病最有效的防治途徑之一(Ghag et al.,2015),但不同抗病品種受生態(tài)區(qū)域的限制,普遍存在生育期長(zhǎng)、耐寒性差、成(催)熟期不一致、口感風(fēng)味欠佳等缺點(diǎn)(謝子四等,2009;劉文清等,2010),且育種周期長(zhǎng),難以滿足生產(chǎn)的需要。生物防治因具有不產(chǎn)生抗性、作用時(shí)間長(zhǎng)、對(duì)非靶標(biāo)生物安全及不污染環(huán)境等優(yōu)點(diǎn),成為有害生物治理中最具開發(fā)潛力的防治手段。因此,針對(duì)當(dāng)前香蕉枯萎病發(fā)生流行的嚴(yán)峻形式,篩選、開發(fā)具有生防潛力的微生物用于香蕉枯萎病防治具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。【前人研究進(jìn)展】許多學(xué)者探索了香蕉枯萎病的防控措施,在化學(xué)防控方面進(jìn)行了大量研究(林蘭穩(wěn)等,2003;李曉杰等,2009;邱煒等,2009),但僅限于室內(nèi)藥劑篩選及盆栽試驗(yàn),防治效果不夠穩(wěn)定。在抗病育種方面,謝子四等(2009)和李朝生等(2012)利用FOC4菌株進(jìn)行香蕉抗(耐)枯萎病品種鑒定,韋紹龍等(2016)選育出廣西首個(gè)具有自主知識(shí)產(chǎn)權(quán)的抗(耐)枯萎病香蕉品種桂蕉9號(hào),并對(duì)其高產(chǎn)栽培技術(shù)進(jìn)行了報(bào)道,但品種的區(qū)域性試驗(yàn)還需要進(jìn)一步開展。在香蕉枯萎病生物防治方面,已有研究證明許多微生物及菌肥對(duì)香蕉枯萎病菌具有一定的拮抗作用。張志紅等(2010)通過盆栽試驗(yàn)比較堆肥、生物有機(jī)肥和生物復(fù)混肥3種肥料滅菌前后對(duì)粉蕉(Musa paradisica,AAB)的促生和枯萎病防病效果,結(jié)果表明,所有施肥處理枯萎病病情指數(shù)均比單接病原菌低,生物有機(jī)肥和生物復(fù)混肥的防病效果分別為61.5%和53.8%;生物有機(jī)肥和生物復(fù)混肥可明顯促進(jìn)粉蕉生長(zhǎng),粉蕉鮮質(zhì)量分別比單接病原菌高35.0%和70.9%??锸痰龋?013)將2種生防菌(木霉菌和枯草芽胞桿菌)與腐熟生物有機(jī)肥混合,制成藥肥兩用生物有機(jī)肥(生物有機(jī)肥+混合木霉菌劑、生物有機(jī)肥+單株木霉菌劑、生物有機(jī)肥+枯草芽胞桿菌劑)應(yīng)用到接種香蕉枯萎病菌的土壤中,研究其對(duì)香蕉枯萎病的防治效果及對(duì)香蕉根尖β-1,3-葡聚糖酶活性、根際和土壤微生物的影響,結(jié)果表明,藥肥兩用生物有機(jī)肥能顯著降低香蕉枯萎病的發(fā)病率,提高防病效果,并能有效改善土壤微生物狀況,增加土壤微生物種群數(shù)量,降低病原菌數(shù)量,抑制香蕉枯萎病菌在土壤中的存活和繁殖,同時(shí)能提高相關(guān)防御性酶的活性,提高香蕉植株的抗病性。前人的研究表明,木霉菌(Trichoderma spp.)對(duì)多種重要植物病原真菌有拮抗作用,如腐霉菌、輪枝菌、鐮孢菌、長(zhǎng)孺孢菌、交鏈孢菌、絲核菌、葡萄孢菌等,據(jù)不完全統(tǒng)計(jì),木霉菌至少對(duì)18屬29種病原真菌表現(xiàn)拮抗活性(楊合同等,1999;韓長(zhǎng)志,2016)。目前,國內(nèi)對(duì)木霉菌的研究主要集中于哈茨木霉(Tr choderma harzianum)、深綠木霉(T. atroviride)、綠色木霉(T. virens)、長(zhǎng)枝木霉(T. longibrachiatum)、黃綠木霉(T. aureovide)和里氏木霉(T. reesei)等?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】棘孢木霉(T. asperellum)是2005年我國記錄的木霉菌菌種(章初龍和徐同,2005),但對(duì)其開發(fā)利用尚處于起步階段(夏偉等,2010;湯偉等,2012)。目前尚無棘孢木霉在香蕉枯萎病防控方面的研究報(bào)道?!緮M解決的關(guān)鍵問題】研究篩選獲得的棘孢木霉PZ6菌株對(duì)香蕉的促生作用、根系活力、防御酶及香蕉枯萎病室內(nèi)盆栽防效的影響,為香蕉枯萎病的防控及PZ6菌株的合理開發(fā)利用提供理論依據(jù)。
1 材料與方法
1. 1 試驗(yàn)材料
供試木霉菌菌株為廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所香蕉遺傳研究室篩選、鑒定的棘孢木霉菌株P(guān)Z6(Trichoderma asperellum)。香蕉枯萎病菌菌株FOC4由華南農(nóng)業(yè)大學(xué)資源環(huán)境學(xué)院姜子德教授惠贈(zèng),為高致病力4號(hào)生理小種。供試香蕉品種為桂蕉1號(hào),由廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所香蕉遺傳研究室提供,為同一批組培苗培育的大小基本一致的6~7片葉營養(yǎng)杯苗,營養(yǎng)杯規(guī)格為10 cm×10 cm,培養(yǎng)基質(zhì)為椰糠。
1. 2 試驗(yàn)方法
1. 2. 1 PZ6/FOC4孢子液制備 將PZ6/FOC4菌株活化3 d后,用打孔器取5 mm菌片于PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng),置于(28±2)℃恒溫箱中培養(yǎng);7 d后取少量無菌水加入PZ6/FOC培養(yǎng)基,用涂布棒輕刮培養(yǎng)基表層,將PZ6/FOC4孢子刮落,并用4層紗布過濾。在光學(xué)顯微鏡下用血球計(jì)數(shù)板計(jì)算孢子濃度。
1. 2. 2 室內(nèi)盆栽接種方法 采用盆栽香蕉苗傷根淋灌法接種。接種前3 d營養(yǎng)杯苗保持濕度20%~30%,傷根后將制備好的PZ6或FOC4菌液按每株20 mL淋入香蕉根際。設(shè)5個(gè)處理:(1)單接拮抗菌(PZ6);(2)同時(shí)接拮抗菌和病原菌(PZ6+FOC4);(3)先接拮抗菌3 d后再接病原菌[PZ6(3 d)+FOC4];(4)先接病原菌3 d后再接拮抗菌[FOC4(3 d)+PZ6];(5)僅接種病原菌(FOC4);以清水接種為空白對(duì)照(CK)。每處理3個(gè)重復(fù),每重復(fù)5株。其中,PZ6接種濃度6.89×106 CFU/L;FOC4接種濃度6.28×106 CFU/L。接種后,將香蕉苗置于28 ℃、濕度55%~80%的人工氣候箱中培養(yǎng)。
1. 2. 3 PZ6對(duì)盆栽香蕉苗的促生效果調(diào)查方法 接種前用直尺測(cè)量香蕉苗植株株高(莖基部至喇叭口的距離);用游標(biāo)卡尺測(cè)量香蕉苗的假莖粗度(距根基1 cm);用油漆筆輕輕在香蕉最新展開葉片上做標(biāo)記。接種50 d時(shí),用相同的方法測(cè)量、記錄相關(guān)數(shù)據(jù),計(jì)算新增株高、新增假莖粗度、新增葉片數(shù)等。
1. 2. 4 PZ6對(duì)盆栽香蕉苗枯萎病的室內(nèi)防治效果調(diào)查方法 接種50 d時(shí)觀察并統(tǒng)計(jì)各處理香蕉苗的球莖發(fā)病情況。香蕉枯萎病菌侵染香蕉苗球莖病情分級(jí)標(biāo)準(zhǔn)及病情指數(shù)計(jì)算公式參考張欣等(2012)的方法(表1)。
病情指數(shù)=∑(各級(jí)級(jí)別數(shù)×該級(jí)別株數(shù))/調(diào)查株數(shù)
相對(duì)防效(%)=(僅接種病原菌對(duì)照病情指數(shù)-處理區(qū)病情指數(shù))/僅接種病原菌對(duì)照病情指數(shù)×100
1. 2. 5 香蕉苗根系活力測(cè)定 參照蔡永萍(2014)的方法采用TTC(氯化三苯基四氮唑)在接種后50 d進(jìn)行根系活力測(cè)定。
1. 2. 6 PZ6對(duì)香蕉苗防御酶活性的影響 針對(duì)以上盆栽菌株防效試驗(yàn),接種后45 d參照蔡永萍(2014)的方法測(cè)定不同處理?xiàng)l件下香蕉苗葉片超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)和過氧化氫酶(CAT)等3種防御酶活性。
1. 3 統(tǒng)計(jì)分析
試驗(yàn)數(shù)據(jù)用Excel 2007進(jìn)行整理,用DPS v6.55進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
2 結(jié)果與分析
2. 1 PZ6菌株對(duì)盆栽香蕉苗的促生效果
從表2可看出,棘孢木霉PZ6處理的新增假莖粗度和新增葉片數(shù)與CK差異不顯著(P>0.05,下同),但施用PZ6菌株后香蕉平均新增株高為6.33 cm,與CK差異極顯著(P<0.01,下同),表明PZ6能在一定程度上提高香蕉苗的株高,對(duì)香蕉苗有一定的促生長(zhǎng)作用;而僅接種病原菌FOC4處理的香蕉苗植株矮小,葉片有黃化癥狀,平均新增株高僅3.30 cm,平均新增假莖粗度2.67 mm,新增1片葉片,極顯著低于CK;PZ6和FOC4同時(shí)或先施用PZ6處理香蕉苗平均新增株高、新增假莖粗度、新增葉片數(shù)與CK處理差異不顯著,F(xiàn)OC4處理3 d后再施PZ6處理比單施FOC4處理的香蕉苗植株生長(zhǎng)旺盛,但平均新增株高顯著低于CK(P<0.05,下同),表明棘孢木霉PZ6菌株能減輕或消除病原菌FOC4對(duì)香蕉苗生長(zhǎng)的影響,以先施用PZ6再施用FOC4或同時(shí)施用PZ6和FOC4的效果最明顯。
植物根系活力直接影響植物個(gè)體生長(zhǎng)、營養(yǎng)水平和產(chǎn)量水平,是植物生長(zhǎng)的重要生理指標(biāo)之一(蔡永萍,2014)。從表2可知,不同處理對(duì)香蕉苗根系生長(zhǎng)的影響存在明顯差異,不同處理根系活力排序?yàn)椋篜Z6>PZ6+FOC4>FOC4(3 d)+PZ6>PZ6(3 d)+FOC4>CK>FOC4,施用FOC4孢子液極顯著抑制香蕉苗根系活力,而施用木霉菌PZ6的各處理均極顯著提高香蕉苗根系活力,說明PZ6可抑制FOC4對(duì)香蕉苗根系的影響,使香蕉苗根系活力保持正?;钚?。
2. 2 PZ6菌株對(duì)盆栽香蕉苗枯萎病的室內(nèi)防治效果
由表2和圖1可知,在不同時(shí)間接種木霉菌和病原菌的處理中,提前施用PZ6的處理[PZ6(3 d)+FOC4]的球莖受感染較輕,球莖病情指數(shù)最低(37.50),低于同時(shí)接種的處理[PZ6+FOC4](50.00)和先接種病原菌的處理[FOC4(3 d)+PZ6](55.00),而僅接種病原菌的處理(FOC4)球莖受感染最嚴(yán)重,球莖病情指數(shù)達(dá)72.50;PZ6(3 d)+FOC4處理對(duì)枯萎病的相對(duì)防效達(dá)48.28%,其次為PZ6+FOC4處理(31.03%),而FOC4(3 d)+PZ6處理對(duì)枯萎病的相對(duì)防效僅24.14%,表明PZ6菌株具有阻止病原菌FOC4侵入香蕉苗以延緩植株發(fā)病的作用,而提前施用PZ6菌株阻止FOC4侵入的效果更好。
2. 3 PZ6菌株對(duì)香蕉苗防御酶活性的影響
2. 3. 1 PZ6菌株對(duì)香蕉苗SOD活性的影響 由表3可看出,不同處理間香蕉葉片SOD活性以PZ6處理最高(423.71 U/gFW·h),極顯著高于其他處理;其次為PZ6(3 d)+FOC4和PZ6+FOC4處理,兩者間差異不顯著;以FOC4處理香蕉葉片SOD活性最低(133.74 U/gFW·h)??梢姡現(xiàn)OC4侵染可降低香蕉苗葉片SOD活性,而施用PZ6菌株可誘導(dǎo)SOD活性增加并維持在一定水平,能及時(shí)清除因FOC4侵染產(chǎn)生的活性氧,避免細(xì)胞膜遭受損害。
2. 3. 2 PZ6菌株對(duì)香蕉苗CAT活性的影響 CAT是細(xì)胞抵御活性氧傷害的保護(hù)酶,具有分解H2O2、消除細(xì)胞內(nèi)過多H2O2的作用,從而保護(hù)細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu)。與CK相比,經(jīng)PZ6和PZ6(3 d)+FOC4處理45 d后,雖然香蕉苗葉片CAT活性僅增加0.36~0.55 U/g·min(絕對(duì)值,下同),但均達(dá)極顯著差異水平;而經(jīng)PZ6+FOC4、FOC4(3 d)+PZ6和FOC4處理的香蕉苗葉片CAT活性極顯著降低2.16~4.14 U/g·min,說明PZ6菌液與FOC4不同施用方式對(duì)香蕉苗葉片CAT活性影響較大,僅施用PZ6菌液對(duì)香蕉苗葉片CAT活性具有顯著的激活作用(表3)。與FOC4處理相比,配施PZ6菌液的不同處理[PZ6(3 d)+FOC4、PZ6+FOC4和FOC4(3 d)+PZ6]香蕉苗葉片CAT活性極顯著增加1.39~4.50 U/g·min,說明配施PZ6菌液也可使香蕉苗葉片CAT活性保持在一定水平,其中[PZ6(3 d)+FOC4]處理的CAT活性增加最高(4.50 U/g·min),說明先施用PZ6菌液3 d后施入FOC4比與FOC4同時(shí)施用或后期施用更有利于抑制枯萎病菌FOC4對(duì)香蕉的浸染,提高香蕉苗的抗病性,降低發(fā)病率,使CAT活性保持在正常水平。
2. 3. 3 PZ6菌株對(duì)香蕉苗POD活性的影響 POD是植物體內(nèi)重要的氧化酶,可促進(jìn)脂肪酸、芳香胺和酚類物質(zhì)的氧化,是木質(zhì)素合成的關(guān)鍵酶之一,其還參與乙烯的生物合成和氧自由基的消除反應(yīng),在植物機(jī)體防御體系中發(fā)揮重要作用(高必達(dá)和陳捷,2006)。由表3可知,不同處理間POD活性表現(xiàn)與SOD活性相反,以FOC4處理最高(355.07 U/g·min),比CK極顯著增加82.33 U/g·min,其次為[FOC4(3 d)+PZ6]、PZ6+ FOC4和PZ6(3 d)+FOC4處理;以PZ6處理最低(273.84 U/g·min),但與CK無顯著差異。說明病原菌FOC4對(duì)香蕉苗生長(zhǎng)影響較明顯,受FOC4侵染后香蕉苗體內(nèi)產(chǎn)生大量活性氧,香蕉苗產(chǎn)生應(yīng)激反應(yīng),通過提高POD酶活性來清除活性氧,同時(shí)合成木質(zhì)素等使傷口栓化阻止病原侵入,從而降低香蕉苗的傷害程度;而配施木霉菌PZ6后在一定程度上緩解了FOC4的侵染,降低了香蕉苗受傷害程度和活性氧的產(chǎn)生,因而香蕉苗中POD活性較低。
3 討論
目前,有關(guān)木霉菌促進(jìn)植物生長(zhǎng)作用的研究較多,如施用深綠木霉可提高番茄根、莖和葉的干重,明顯提高作物產(chǎn)量(Gravel et al., 2007);哈茨木霉 T-17可通過調(diào)控激素水平而促進(jìn)甜瓜幼苗期的生長(zhǎng)(Martine-Medina et al., 2014);經(jīng)棘孢木霉誘導(dǎo)后山新楊樹苗株高、地徑及生物量等均有不同程度增加,并能有效提高山新楊的光合能力,促進(jìn)其生長(zhǎng)(姜傳英等,2016);棘孢木霉ACCC30536能改善黃花蒿的光合能力,促進(jìn)干物質(zhì)積累,從而提高其葉的產(chǎn)量(楊興堂等,2016)。本研究發(fā)現(xiàn),純施棘孢木霉PZ6能促進(jìn)香蕉苗增高,明顯提高香蕉苗的根系活力;且在病原菌存在的情況下,配施PZ6菌株也能保護(hù)香蕉苗根系,使其保持較高的根系活力。
如何多途徑有效防控香蕉枯萎病蔓延已成為香蕉產(chǎn)業(yè)亟需解決的問題。棘孢木霉菌株P(guān)Z6是從香蕉根際土壤中分離到的一株對(duì)香蕉枯萎病菌4號(hào)生理小種有極強(qiáng)拮抗能力的木霉菌株,其生長(zhǎng)迅速,產(chǎn)孢量大,極具發(fā)展?jié)摿?。本研究室?nèi)盆栽試驗(yàn)結(jié)果顯示,接種FOC4菌液50 d后,以[PZ6(3 d)+FOC4]處理表現(xiàn)最佳,其病情指數(shù)為37.50,防治效果為48.28%。因此,提前施用PZ6菌株具有阻止病原菌FOC4侵染香蕉苗以延緩植株發(fā)病的作用,與Cotxarrera等(2002)報(bào)道棘孢木霉菌株T34能有效防治西紅柿枯萎病的結(jié)果相似。但PZ6在大田對(duì)香蕉枯萎病的防治效果有待進(jìn)一步探討。
SOD、POD和CAT等是細(xì)胞抵御活性氧傷害的重要保護(hù)酶,是重要的活性氧清除劑,與植物的抗病性反應(yīng)密切相關(guān)。POD還參與乙烯的合成,催化木質(zhì)素前體的形成及細(xì)胞壁淡水化合物與蛋白質(zhì)共價(jià)鍵的形成(胡莉莉,2006)。劉淑宇等(2013)通過測(cè)定綠色木霉發(fā)酵液對(duì)杧果果實(shí)炭疽病菌胞內(nèi)抗性酶活性的影響,證實(shí)綠色木霉發(fā)酵液可抑制病原菌生長(zhǎng),并提高作物抗氧化酶的活性。劉朝輝等(2014)利用哈茨木霉T23處理不同抗黃萎病類型的茄子苗,不同品種葉片內(nèi)與抗病性物質(zhì)合成相關(guān)的苯丙氨酸解氨酶(PAL)、多酚氧化酶(PPO)、POD和SOD活性提高,說明茄子植株經(jīng)過哈茨木霉T23誘導(dǎo)后,可產(chǎn)生植保素、木質(zhì)素等相關(guān)物質(zhì)抵御黃萎病。本研究中,不同時(shí)間施用棘孢木霉PZ6和FOC4孢子液后,除PZ6處理與CK間的葉片POD活性無顯著差異外,不同處理的香蕉苗葉片SOD、POD和CAT活性與CK間均呈極顯著差異;除CK外,不同處理間不同酶活性呈一定的變化規(guī)律;葉片SOD活性與根系活力表現(xiàn)相似,均以PZ6處理最高,其次為PZ6(3 d)+FOC4、PZ6+FOC4、FOC4(3 d)+
PZ6和FOC4處理,而葉片POD活性表現(xiàn)相反。說明在受FOC4侵染的狀態(tài)下,提前施用PZ6可減少病原菌對(duì)香蕉苗的侵染,提高植株對(duì)FOC4的抗病性,降低發(fā)病率;此外,可通過提高蕉葉SOD、CAT活性來清除體內(nèi)活性氧,減少細(xì)胞損害程度,從而提高植株的防御能力,降低POD活性。
4 結(jié)論
棘孢木霉PZ6菌株可在一定程度上促進(jìn)香蕉苗生長(zhǎng),提高香蕉苗根系活力及蕉葉SOD和CAT活性;施用PZ6菌株具有阻止病原菌FOC4侵入香蕉苗、延緩植株發(fā)病的作用,可提高香蕉苗對(duì)FOC4的抗病性。
參考文獻(xiàn):
蔡永萍. 2014. 植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M]. 北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社.
Cai Y P. 2014. Plant Physiology Experiment Instruction[M]. Beijing: China Agricultural University Press.
高必達(dá),陳捷. 2006. 生理植物病理學(xué)[M]. 北京:科學(xué)出版社:156-160.
Gao B D, Chen J. 2006. Physiological Plant Pathology[M]. Beijing: Science Press:156-160.
韓長(zhǎng)志. 2016. 植物病原拮抗菌木霉屬真菌的研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),32(4):946-952.
Han C Z. 2016. Advances in utilization of antagonistic Trichoderma spp. against plant pathogens[J]. Jiangsu Journal of Agricultural Sciences,32(4):946-952.
胡莉莉. 2006. 香蕉抗枯萎病生理生化基礎(chǔ)的研究[D]. 儋州:華南熱帶農(nóng)業(yè)大學(xué).
Hu L L. 2006. Studies on basic of physiological and biochemical resistance of banana to fusarium wilt[D]. Danzhou:South China University of Tropical Agriculture.
姜傳英,朱國棟,姚志紅,楊興堂,劉志華,張榮沭. 2016. 3個(gè)棘孢木霉菌株對(duì)山新楊組培移栽苗生長(zhǎng)和光合特性的影響[J]. 草業(yè)科學(xué),33(6):1189-1199.
Jiang C Y,Zhu G D,Yao Z H,Yang X T,Liu Z H,Zhang R S. 2016. Effects of three Trichoderma asperellum strains on the growth and photosynthetic characteristics of tissue-cultured Populus davidiana×P. alba var. pyramidalis seedlings[J]. Pratacultural Scince, 33(6):1189-1199.
匡石滋,李春雨,田世堯,左存武,易干軍. 2013. 藥肥兩用生物有機(jī)肥對(duì)香蕉枯萎病的防治及其機(jī)理初探[J]. 中國生物防治學(xué)報(bào),29(3):417-423.
Kuang S Z,Li C Y,Tian S Y,Zuo C W,Yi G J. 2013. Effects of bio-organic manure on fusarium wilt of banana and its mechanisms[J]. Chinese Journal of Biological Control,29(3):417-423.
李朝生,霍秀娟,韋紹龍,韋弟,韋華芳,黃素梅. 2012. 5份香蕉種質(zhì)對(duì)枯萎病的抗性評(píng)價(jià)[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 43(4):449-453.
Li C S,Huo X J,Wei S L,Wei D,Wei H F,Huang S M. 2012. Evaluation of 5 banana varieties for resistance to fusarium wilt(Fusarium oxysporum f. sp. cubense)[J]. Journal of Southern Agriculture,43(4):449-453.
李曉杰,徐樹蘭,湯歷. 2009. 香蕉枯萎病拮抗菌的篩選及盆栽防效的測(cè)定[J]. 廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),(5):99-102.
Li X J,Xu S L,Tang L. 2009. Antagonistic microorganisms screening and pot experiment against Fusarium oxysporum f. sp. cubense[J]. Guangdong Agricultural Sciences,(5):99-102.
林蘭穩(wěn),奚偉鵬,黃賽花. 2003. 香蕉鐮刀菌枯萎病防治藥劑的篩選[J]. 生態(tài)環(huán)境,12(2): 182-183.
Lin L W, Xi W P, Huang S H. 2003. Selection of fungicides for controlling banana blight resulted from Fusarium oxysporum f. sp. cubense[J]. Ecology and Environment,12(2): 182-183.
劉淑宇,于新,陳發(fā)河,楊鵬斌,劉麗,黃曉敏. 2013. 綠色木霉菌發(fā)酵液對(duì)杧果炭疽菌胞內(nèi)抗性酶活性的影響[J]. 果樹學(xué)報(bào),30(2): 285-290.
Liu S Y,Yu X,Chen F H,Yang P B,Liu L,Huang X M. 2013. Effect of Trichoderma viride fermentation broth on Colletotrichum gloeosporioides defensive enzyme activities[J]. Journal of Fruit Science,30(2): 285-290.
劉文清,周建坤,李洪波,楊賀年,呂順,莊華才. 2010. 抗枯萎病香蕉新品種引種評(píng)價(jià)[J]. 廣東農(nóng)業(yè)科學(xué),37(3):110-113.
Liu W Q, Zhou J K, Li H B, Yang H N, Lü S, Zhuang H C. 2010. Introduction evaluation of new banana cultivar resistant to fusarium wilt disease[J]. Guangdong Agricultural Sciences,37(3):110-113.
劉朝輝,曾華蘭,何煉,葉鵬盛,韋樹谷,張騫方,李瓊英. 2014. 哈茨木霉T23對(duì)茄子葉片內(nèi)防御酶系的影響[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),27(5):1945-1948.
Liu Z H,Zeng H L,He L,Ye P S,Wei S G,Zhang Q F,Li Q Y. 2014. Effect of Trichoderma harzianum T23 on defence enzymes in leaves of eggplants[J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences, 27(5):1945-1948.
邱煒,黃惠琴,葉建軍,鮑時(shí)翔. 2009. 抗香蕉枯萎病放線菌的篩選及菌株DA07408的鑒定[J]. 農(nóng)業(yè)現(xiàn)代化研究,30(1):126-128.
Qiu W,Huang H Q,Ye J J,Bao S X. 2009. Screening of actinomycete against Fusarium oxysporum f. sp. cubense and identification of strain DA07408[J]. Research of Agricultural Modernization,30(1):126-128.
湯偉,夏偉,李雅華,叢大鵬, 咸洪泉. 2012. 棘孢木霉(Trichoderma asperellum)幾丁質(zhì)酶基因的克隆與生物信息學(xué)分析[J]. 中國生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),28(4):385-392.
Tang W,Xia W,Li Y H,Cong D P,Xian H Q. 2012. Cloning and bioinformatics analysis of chitinase gene Tachi1 from Trichoderma asperellum[J]. Chinese Journal of Bioche-
mistry and Molecular Biology, 28(4):385-392.
韋紹龍,黃素梅,韋莉萍,韋弟,李朝生,覃柳燕,田丹丹,張進(jìn)忠,周維,龍盛風(fēng),楊柳. 2016. 香蕉抗(耐)枯萎病新品種桂蕉9號(hào)的選育及其高產(chǎn)栽培技術(shù)[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),47(4): 530-536.
Wei S L,Huang S M,Wei L P,Wei D,Li C S,Qin L Y,Tian D D,Zhang J Z,Zhou W,Long S F,Yang L. 2016. Breeding on new banana variety Guijiao 9 resistant or tolerant to fusarium wilt(Fusarium oxysporum f. sp. cubence,race 4)and its high-yield cultivation technologies[J]. Journal of Southern Agriculture, 47(4):530-536.
韋紹龍,孫嘉曼,盧江,李朝生,藍(lán)霞,張進(jìn)忠. 2015. 二倍體野生蕉種質(zhì)對(duì)枯萎病的抗性評(píng)價(jià)[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 28(6):2532-2536.
Wei S L,Sun J M, Lu J,Li C S,Lan X,Zhang J Z. 2015. Eva-
luation of diploid wild banana germplasm for resistance to fusarium wilt[J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences, 28(6):2532-2536.
夏偉,張紅,顏艷偉,咸洪泉. 2010. 棘孢木霉L4對(duì)立枯絲核菌的拮抗機(jī)制[J]. 植物保護(hù)學(xué)報(bào),37(5):477-478.
Xia W,Zhang H, Yan Y W,Xian H Q. 2010. Rivalry mechanism of Trichoderma asperellum L4 to Rhizoctonia solani[J]. Acta Phytophylacica Snica, 37(5):477-478.
謝子四,張欣,陳業(yè)淵,羅石榮,魏守興. 2009. 10份香蕉種質(zhì)對(duì)枯萎病的抗性評(píng)價(jià)(簡(jiǎn)報(bào))[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào),30(3):362-364.
Xie Z S, Zhang X,Chen Y Y,Luo S R,Wei S X. 2009. Assessment of banana germplasm for resistance to fusarium wilt[J]. Chinese Journal of Tropical Crops,30(3):362-364.
楊合同,唐文華,Ryder M. 1999. 木霉菌與植物病害的生物防治[J]. 山東科學(xué),12(4): 7-15.
Yang H T, Tang W H, Ryder M. 1999. Trichoderma and biological control of plant diseases[J]. Shandong Science, 12(4): 7-15.
楊興堂,呂曼曼,劉志華,朱國棟,王慧,馬德志,張榮沭. 2016. 棘孢木霉對(duì)黃花蒿葉的光合特性和產(chǎn)量影響[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),44(1):132-136.
Yang X T,Lü M M,Liu Z H,Zhu G D,Wang H,Ma D Z,Zhang R S. 2016. Effects of Trichoderma asperellum on leaf photosynthetic characteristics and yield of Artemisia annua[J]. Guizhou Agricultural Sciences,44(1):132-136.
章初龍,徐同. 2005. 我國河北、浙江、云南及西藏木霉種記述[J]. 菌物學(xué)報(bào),24(2):184-192.
Zhang C L, Xu T. 2005. Records of Trichoderma species from Heibei, Zhejiang, Yunnan and Tibet of China[J]. Mycosystema, 24(2):184-192.
張欣, 張賀, 蒲金基, 漆艷香, 謝藝賢,兀旭輝. 2012. 香蕉枯萎病菌4號(hào)小種致病力分化的初步研究[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào),28(4):172-178.
Zhang X,Zhang H,Pu J J,Qi Y X,Xie Y X,Wu X H. 2012. A preliminary study on pathogenicity differentiation of Fusarium oxysporum f. sp. cubense Race 4[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin,28(4):172-178.
張志紅,馮宏,肖相政,李華興. 2010. 生物肥防治香蕉枯萎病及對(duì)土壤微生物多樣性的影響[J]. 果樹學(xué)報(bào), 27(4):575-579.
Zhang Z H,F(xiàn)eng H,Xiao X Z,Li H X. 2010. Influence of bio-fertilizers on control of banana wilt disease and soil microbial diversity[J]. Journal of Fruit Science,27(4): 575-579.
Cotxarrera L, Trillas-Gay M I, Steinberg C, Alabouvette C. 2002. Use of sewage sludge compost and Trichoderma asperellum isolates to suppress fusarium wilt of tomato[J]. Soil Biology and Biochemistry, 34(4):467-476.
Ghag S B,Shekhawat U K S,Ganapathi T R. 2015. Fusarium wilt of banana: Biology, epidemiology and management[J]. International Journal of Pest Management, 61(3):250-263.
Gravel V, Antoun H, Tweddell R J. 2007. Growth stimulation and fruit yield improvement of greenhouse tomato plants by inoculation with Pseudomonas putida or Trichoderma atroviride: Possibile role of indole acetic acid(IAA)[J]. Soil Biology and Biochemistry,39(8):1968-1977.
Martinez-Medina A,Del Mar Alguacil M,Pascual J A,Van Wees S C. 2014. Phytohormone profiles induced by Trichoderma isolates correspond with their biocontrol and plant growth-promoting activity on melon plants[J]. Journal of Chemical Ecology, 40(7):804-815.
(責(zé)任編輯 麻小燕)