捕后蝦夷扇貝閉殼肌免疫因子與活品品質(zhì)評價(jià)初探

鄭堯,劉俊榮,周晏琳,劉慧慧,宋揚(yáng),田元勇,趙學(xué)偉

(1.大連海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,遼寧大連116023;2.獐子島集團(tuán)股份有限公司,遼寧大連116001)

捕后蝦夷扇貝閉殼肌免疫因子與活品品質(zhì)評價(jià)初探

鄭堯1,劉俊榮1,周晏琳1,劉慧慧1,宋揚(yáng)1,田元勇1,趙學(xué)偉2

(1.大連海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,遼寧大連116023;2.獐子島集團(tuán)股份有限公司,遼寧大連116001)

為探索采捕后活品貝類的品質(zhì)變化規(guī)律,以蝦夷扇貝Patinopecten yessoensis為對象,研究了其閉殼肌中酸性磷酸酶(ACP)、超氧化物歧化酶(SOD)、溶菌酶(LSZ)、過氧化氫酶(CAT)等4個非特異性免疫因子的變化規(guī)律,試驗(yàn)基于活品蝦夷扇貝的商品流通鏈分別進(jìn)行濕藏和干藏處理,捕后貯藏分為離水至甲板、運(yùn)輸船中轉(zhuǎn)、港口卸貨、基地緩沖池和凈化等5個關(guān)鍵環(huán)節(jié),共設(shè)10個采樣點(diǎn)。結(jié)果表明:蝦夷扇貝閉殼肌中表現(xiàn)出ACP及SOD活力,CAT活力很低,LSZ則未檢出活力;在捕后106 h內(nèi),ACP活力呈現(xiàn)出先下降再升高的趨勢,而SOD活力則呈先升高再下降再升高的趨勢,二者與蝦夷扇貝所受脅迫強(qiáng)度均有相關(guān)性。研究表明,閉殼肌中非特異性免疫因子ACP及SOD可以作為活品扇貝的脅迫應(yīng)答因子及品質(zhì)評價(jià)指標(biāo)進(jìn)行深入研究。

蝦夷扇貝;捕后;閉殼肌;活品

蝦夷扇貝Patinopecten yessoensis是中國重要的海水養(yǎng)殖貝類之一,據(jù)《中國漁業(yè)統(tǒng)計(jì)年鑒2015》發(fā)布[1],2014年中國貝類海水養(yǎng)殖產(chǎn)量達(dá)到1316.55萬t,其中扇貝產(chǎn)量為164.94萬t,占養(yǎng)殖總量的12.5%。蝦夷扇貝主要以活品形式流通。采捕后的蝦夷扇貝因各種脅迫因素導(dǎo)致其正常代謝受到干擾,最終影響其活品品質(zhì)。近年來,國內(nèi)有關(guān)活品蝦夷扇貝捕后品質(zhì)的研究陸續(xù)有所報(bào)道。最初的研究圍繞底播養(yǎng)殖蝦夷扇貝供應(yīng)鏈可追溯現(xiàn)狀展開,涵蓋了活品蝦夷扇貝從育苗、養(yǎng)殖、采捕、加工到銷售的全過程[2];隨后,有關(guān)活品蝦夷扇貝的感官品質(zhì)及其評價(jià)方法、活品流通過程中的風(fēng)味品質(zhì)變化規(guī)律等陸續(xù)見報(bào)道[3-4],甚至還出現(xiàn)了專門針對其揮發(fā)性氣味特征的研究[5-8];此外,從腸道菌群角度針對活品供應(yīng)鏈各環(huán)節(jié)安全性的研究也有報(bào)道[9]。

作為無脊椎動物的非特異性免疫因子,酸性磷酸酶(ACP)與溶菌酶(LSZ)等溶酶體酶,以及超氧化物歧化酶(SOD)與過氧化氫酶(CAT)等抗氧化酶共同參與了活品蝦夷扇貝的代謝調(diào)節(jié)及脅迫應(yīng)答。ACP與LSZ連同其他水解酶類參與異物的降解及清除,ACP能夠催化表面帶有磷酸酯的異物水解并參與細(xì)胞能量供應(yīng)[10],LSZ通過溶解細(xì)菌細(xì)胞壁中的肽聚糖,從而裂解細(xì)菌細(xì)胞[11]。SOD與CAT連同其他抗氧化酶可清除由呼吸爆發(fā)產(chǎn)生的大量氧自由基,SOD可以使超氧陰離子歧化為過氧化氫和氧氣,CAT進(jìn)一步將過氧化氫分解為氧氣和水[12-13]。因此,研究活品貝類供應(yīng)過程中其非特異性免疫因子的變化規(guī)律有重要意義。

本研究中,以底播蝦夷扇貝作為研究對象,探索了捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中具有代表性的脅迫應(yīng)答因子及其變化規(guī)律,以及捕后處置方式對其的影響,旨在探索采捕后活品貝類品質(zhì)的變化規(guī)律。

1 材料與方法

1.1 材料

本試驗(yàn)所用樣品為2015年11月采于大連海域(北緯39°)的底播活品蝦夷扇貝。

試驗(yàn)用主要試劑:十二烷基苯磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)試劑購自美國Sigma公司;蛋白標(biāo)準(zhǔn)品購自美國BioLabs公司;過氧化氫酶試劑盒、超氧化物歧化酶試劑盒、酸性磷酸酶試劑盒、溶菌酶試劑盒購自南京建成生物工程研究所;三磷酸腺苷購自上海華藍(lán)化學(xué)科技有限公司;其他試劑均為分析純。

試驗(yàn)用主要儀器:高速離心機(jī)購自德國HERMLE Labortechnik GmbH公司;800 s勻漿機(jī)購自美國WARING公司;PB-10pH計(jì)購自德國Sartorius公司;IMS-40全自動雪花制冰機(jī)購自常熟市雪科公司;AE-6500垂直電泳槽購自日本ATTO公司;Synergy H1酶標(biāo)儀購自美國柏騰公司;721型分光光度計(jì)購自上海光譜儀器有限公司;HG-200均質(zhì)機(jī)購自日本HSIANGTAI公司;電熱恒溫水浴鍋購自上海一恒科學(xué)儀器有限公司。

1.2 方法

1.2.1 樣品采集與處理 全程跟蹤試驗(yàn)樣品的采捕流程,并在關(guān)鍵環(huán)節(jié)進(jìn)行采樣。從捕撈到凈化車間流程為:捕撈船→運(yùn)輸船→港口→緩沖池→凈化池。目前,中國捕后活品蝦夷扇貝主要以濕藏為主,即在采捕后放入船內(nèi)循環(huán)海水箱中,直至到達(dá)港口后迅速轉(zhuǎn)移到凈化車間的緩沖池中,因此,除轉(zhuǎn)運(yùn)、卸貨等短時(shí)操作外,活品蝦夷扇貝基本處于濕藏狀態(tài)。捕后貯藏的關(guān)鍵環(huán)節(jié)包括離水至甲板、運(yùn)輸船中轉(zhuǎn)、港口卸貨、基地緩沖池和凈化等5個環(huán)節(jié)。10個采樣點(diǎn)覆蓋上述各個環(huán)節(jié),樣品信息詳見表1。

采樣的起點(diǎn)始于捕撈船,對拖網(wǎng)捕撈上的蝦夷扇貝立刻進(jìn)行分選,選擇大小相似、生理狀態(tài)良好的蝦夷扇貝270枚。其中取10枚立刻進(jìn)行開殼處理,取出閉殼肌,在自封袋中壓碎并用干冰凍結(jié),作為初始點(diǎn)(樣品編號C0);剩余的260枚蝦夷扇貝分為兩組,每組130枚,分別為濕藏組和低溫干藏組。濕藏組全程依照活品蝦夷扇貝商品流通模式進(jìn)行運(yùn)輸,低溫干藏組放置在事先準(zhǔn)備好的冰盒中,在低溫干露狀態(tài)下一直運(yùn)送至碼頭,然后和濕藏組一同轉(zhuǎn)移至基地緩沖池中暫養(yǎng)。采樣時(shí)刻和樣本編號如表1所示,活貝經(jīng)現(xiàn)場開殼分離閉殼肌后,迅速置于干冰中凍藏,運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室于冰箱(-40℃)中保存?zhèn)溆谩?/p>

表1 活品蝦夷扇貝采樣信息Tab.1 Sampling information on live Yesso scallopPatinopecten yessoensis

1.2.2 閉殼肌中粗酶的提取 粗酶提取參考Wongso等[14]的方法并稍作修改。取冷凍的閉殼肌4 g,加入5倍體積的0.1 mol/L NaCl、20 mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.5)進(jìn)行均質(zhì)(10 000 r/min,每次均質(zhì)30 s,間隔30 s,共3次)。在4℃、10 000 g條件下離心10 min,取上清液即為粗酶。采用雙縮脲法測定蛋白濃度。

1.2.3 酶活力的測定 對粗酶提取液中的超氧化物岐化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、酸性磷酸酶(ACP)和溶菌酶(LSZ)活力進(jìn)行測定。

參考Góth[16]的方法測定CAT酶活力,按照試劑盒說明書操作步驟進(jìn)行測定。鉬酸銨可以迅速終止過氧化氫酶與H2O2的反應(yīng),并與反應(yīng)體系中剩余的H2O2反應(yīng)生成一種淡黃色的絡(luò)合物,并在405 nm處測定其吸光值。CAT酶活力單位定義為:每秒分解1 μmol的H2O2的量為一個酶活力單位(U)。

參考Zurier等[17]的方法測定ACP酶活力,按照試劑盒說明書操作步驟進(jìn)行測定。酸性磷酸酶分解磷酸苯二鈉,產(chǎn)生游離酚和磷酸,酚在堿性溶液中與4-氨基安替吡啉作用經(jīng)鐵氰化鉀氧化生成紅色醌衍生物,并在520 nm處測定其吸光度值。ACP酶活力單位定義為:在37℃下基質(zhì)作用30 min產(chǎn)生1 mg酚為一個活力單位(U)。

采用比濁法[18]測定LSZ酶活力,按照試劑盒說明書操作步驟進(jìn)行測定。將一定濃度的混濁菌液與溶菌酶混合,使溶菌酶水解細(xì)菌細(xì)胞壁上肽聚糖裂解細(xì)菌,從而使溶液濃度降低,透光度增強(qiáng),可根據(jù)溶液透光度的變化來判斷溶菌酶的含量。將樣品倒入比色皿后,在20 s時(shí)讀取透光度值T0,在2 min 20 s時(shí)讀取透光度值T2,觀察2次透光度的差值ΔT。

1.2.4 粗酶的分子量分布 采用SDS-PAGE[19]測定粗酶的分子量分布,其中濃縮膠質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%,分離膠質(zhì)量分?jǐn)?shù)為12.5%,采用考馬斯亮藍(lán)R-250染色法檢驗(yàn),用醋酸-甲醇溶液進(jìn)行脫色。

1.3 數(shù)據(jù)處理

試驗(yàn)結(jié)果均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS軟件進(jìn)行處理,用單因素分析法進(jìn)行方差分析,顯著性水平設(shè)為0.05。

2 結(jié)果與討論

2.1 采捕后活品蝦夷扇貝的脅迫狀態(tài)

本研究中全程跟蹤活品蝦夷扇貝的采捕流程,并對其關(guān)鍵環(huán)節(jié)的脅迫狀態(tài)進(jìn)行分析。由表2可知,濕藏條件下的活品蝦夷扇貝主要受溫度、壓力、氧氣、機(jī)械振動和干露等脅迫因子的影響。樣品C0為剛捕撈到甲板上的活品蝦夷扇貝,此時(shí)剛脫離其自然生長環(huán)境,所以各種脅迫均達(dá)到最大。隨著扇貝進(jìn)入循環(huán)海水池并開始適應(yīng)新環(huán)境,各種脅迫均有所下降。W4為剛進(jìn)入緩沖池的樣品,因?yàn)閯偨?jīng)歷了碼頭卸貨和短時(shí)轉(zhuǎn)運(yùn),各種脅迫均有所上升。隨后樣品處于一個相對穩(wěn)定的環(huán)境中,各種脅迫開始下降。

表3為冷卻干藏條件下活品蝦夷扇貝的脅迫狀態(tài),D1、D2和D3處于冷卻的冰盒中,溫度脅迫較低,但有較強(qiáng)的干露脅迫。從D4(W4)開始,干藏和濕藏進(jìn)入相同的處置條件(表2、表3)。

2.2 活品蝦夷扇貝閉殼肌中4種脅迫應(yīng)答因子的分布

閉殼肌是蝦夷扇貝的主要可食部位,本研究中從食品原料學(xué)出發(fā),探討閉殼肌中主要脅迫應(yīng)答因子的分布及其變化規(guī)律,從而探索與貝類活品品質(zhì)相關(guān)的生物指標(biāo)的可能性。

表2 濕藏條件下活品蝦夷扇貝所處環(huán)境及脅迫狀態(tài)分析Tab.2 The circumstance and stress state of live Yesso scallopPatinopecten yessoensisduring wet storage

研究中發(fā)現(xiàn),蝦夷扇貝閉殼肌中存在SOD及ACP活力,相比之下CAT活力較低,幾乎未檢測到LSZ活力。經(jīng)測定,采捕初始點(diǎn)閉殼肌中CAT、SOD活力分別為(0.11±0.03)、(170.1±4.69) U/mg,ACP活力為(97.64±9.64)U/g。前期對這幾種脅迫應(yīng)答因子的研究主要以肝臟組織和血淋巴等為主,如王麗麗等[20]通過測定蝦夷扇貝內(nèi)臟團(tuán)中的SOD及CAT活力,研究鎘脅迫對其酶活力的影響;李石磊等[21]通過測定蝦夷扇貝血液中ACP及SOD活力,研究饑餓脅迫對其酶活力的影響;徐大倫等[22]通過測定華貴櫛孔扇貝血淋巴中的SOD及LSZ活力,研究滸苔多糖對其酶活力的影響。目前,關(guān)于扇貝閉殼肌中這幾種脅迫應(yīng)答因子的報(bào)道還較為少見。本研究中根據(jù)這4種脅迫應(yīng)答因子在閉殼肌中的分布結(jié)果,選取SOD和ACP作為檢測指標(biāo),進(jìn)一步跟蹤活品蝦夷扇貝在流通過程中的代謝變化。

2.3 捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中ACP活力的變化

軟體動物缺乏特異性免疫球蛋白,以ACP為標(biāo)志酶的溶酶體酶尤為重要,具有防御和消化的雙重作用[10]。如圖1所示,干藏和濕藏兩種條件下, ACP活力均在捕后均呈現(xiàn)先下降再升高的趨勢, ACP在起點(diǎn)時(shí)酶活力最高,此時(shí)扇貝剛脫離其自然生長環(huán)境,隨之而來的脅迫也達(dá)到最大。隨著其自身開始適應(yīng)新環(huán)境以及一系列的生理調(diào)節(jié)開始啟動,ACP活力迅速下降,捕后10 h降至最低。當(dāng)活貝在捕后14 h進(jìn)入凈化池之后,此時(shí)扇貝剛剛經(jīng)歷了碼頭卸貨等一系列處置,酶活力又開始上升,直至捕后20 h酶活力開始趨于穩(wěn)定。兩次ACP活力迅速上升均恰好發(fā)生在外界環(huán)境劇烈變化之后,由此推測,ACP活力與采捕后蝦夷扇貝所受脅迫有良好的相關(guān)性,可以作為一種脅迫應(yīng)答因子進(jìn)行深入研究。以往對ACP的研究主要集中在扇貝生長階段,栗志民等[23]在實(shí)驗(yàn)室條件下模擬華貴櫛孔扇貝的生長環(huán)境,發(fā)現(xiàn)當(dāng)其面臨溫度、鹽度脅迫時(shí),ACP活力也呈先下降再升高的趨勢。李石磊等[21]對蝦夷扇貝采取自然海水充氣暫養(yǎng),發(fā)現(xiàn)短期饑餓脅迫對蝦夷扇貝ACP活力無顯著影響,但25 d后酶活力出現(xiàn)顯著下降(P＜0.05)。Jiang等[24]在實(shí)驗(yàn)室條件下模擬溫度脅迫,發(fā)現(xiàn)溫度波動對ACP活力有顯著影響(P＜0.05)。需要指出的是,本研究中針對的是采捕后貝類面臨環(huán)境脅迫時(shí)的應(yīng)答規(guī)律。相比生長階段而言,貝類捕后所面臨的脅迫周期較短,引起脅迫的因素也比較明確,且均與實(shí)際操作相關(guān)聯(lián),這正是研究捕后脅迫規(guī)律的意義所在。

圖1 捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中ACP活力的變化Fig.1 Changes in ACP activity in adductors of postharvested live Yesso scallopPatinopecten yessoensis

2.4 捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中SOD活力的變化

水生脊椎動物和無脊椎動物在面臨環(huán)境脅迫時(shí)均會產(chǎn)生氧自由基,其中最先形成的就是超氧陰離子。為了減少氧自由基對機(jī)體的損傷,SOD等一系列抗氧化酶共同發(fā)揮作用維持機(jī)體內(nèi)自由基平衡[25]。如圖2所示,干藏和濕藏兩種條件下, SOD活力均呈現(xiàn)先上升后下降再上升的趨勢。與ACP不同的是,SOD在起點(diǎn)時(shí)并未達(dá)到最大值,可能是超氧陰離子未立刻產(chǎn)生,或是SOD沒有立刻發(fā)揮作用;隨后酶活力開始上升,說明SOD開始逐漸發(fā)揮作用,并在捕后4 h達(dá)到最大。接著隨著脅迫強(qiáng)度降低,SOD活力也開始下降,在捕后20 h降到最低,然后開始下一次上升。研究表明, SOD活力變化與ACP基本相同,也是在環(huán)境劇烈變化之后出現(xiàn)酶活力上升,只是作用時(shí)間略滯后于ACP。由此推測,SOD活力與蝦夷扇貝所受脅迫也具有良好的相關(guān)性,同樣可以作為一種脅迫應(yīng)答因子進(jìn)行后續(xù)研究。研究表明,蝦夷扇貝[21]、日本沼蝦[26]在面臨饑餓脅迫時(shí),SOD活力均出現(xiàn)顯著上升(P＜0.05)。長江刀鱭幼魚[27]在面臨鹽度脅迫時(shí),SOD活力也會出現(xiàn)顯著上升(P＜0.05)。

圖2 捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中SOD活力的變化Fig.2 Changes in SOD activity in adductors of postharvested live Yesso scallopPatinopecten yessoensis

值得注意的是,在干藏和濕藏兩種處置條件下,無論是ACP還是SOD二者均未有明顯差異,而一般認(rèn)為,在活品保藏中濕藏應(yīng)該明顯優(yōu)于干藏。初步推測這種差異可能有以下兩種原因:第一,在本研究監(jiān)測的捕后106 h之內(nèi),干露造成的影響可能還未顯現(xiàn)出來;第二,本研究中所采用的干藏是基于碎冰冷卻條件下的,活貝環(huán)境溫度較低且時(shí)間較短,可能接近蝦夷扇貝的生態(tài)冰溫,使其處于一種休眠狀態(tài),從而應(yīng)對脅迫[28]。

2.5 捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中粗酶分子量分布

由圖3、圖4可知,在干藏及濕藏條件下,粗酶分子量分布在流通過程中均無明顯變化。酶作為一種大分子物質(zhì),短時(shí)間的環(huán)境脅迫很難使其降解。SOD酶根據(jù)其所含金屬離子主要分為3類,包括Cu/Zn-SOD、Mn-SOD、Fe-SOD,其二聚體相對分子質(zhì)量分別為32 000、42 000和42 000,其四聚體相對分子質(zhì)量分別為65 000、85 000和85 000[29]。結(jié)合本研究電泳條帶分析,初步推測蝦夷扇貝閉殼肌中存在的可能是Mn-SOD的二聚體或Fe-SOD的二聚體;不同物種中的ACP相對分子質(zhì)量相差很大,小蔥、甘薯和長毛對蝦中ACP的相對分子質(zhì)量分別為57 800、41 200和73 000[30-32],關(guān)于蝦夷扇貝中ACP的分離純化還未見報(bào)道;LSZ在動物體中主要以c型和g型存在,其相對分子質(zhì)量分別為14 000和22 000[33],但在這兩個相對分子質(zhì)量附近均無清晰條帶,說明蝦夷扇貝閉殼肌中可能沒有c型及g型溶菌酶;有關(guān)研究表明,CAT的相對分子質(zhì)量為200 000～340 000[34],本研究中粗酶相對分子質(zhì)量分析圖譜在200 000均有一條明顯條帶,但CAT活力極低,該條帶以及CAT活力有必要進(jìn)一步研究核實(shí)。以上關(guān)于粗酶相對分子質(zhì)量分布的結(jié)果與酶活力分析結(jié)果基本吻合,但要證實(shí)仍需進(jìn)一步分離純化及免疫印跡分析。

圖3 捕后干藏過程活品蝦夷扇貝閉殼肌中粗酶分子量分布Fig.3 Molecular weight distribution of crude enzymes in adductors of post-harvested live Yesso scallopPatinopecten yessoensisduring air exposure storage

圖4 捕后濕藏過程活品蝦夷扇貝閉殼肌中粗酶分子量分布Fig.4 Molecular weight distribution of crude enzymes in adductors of post-harvested live Yesso scallopPatinopecten yessoensisduring wet storage

最后,本研究中對捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中粗酶含量的變化情況也作了跟蹤分析(圖5)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),采捕初期活貝的粗酶含量顯著下降(P＜0.05),而在后續(xù)的貯藏過程中粗酶含量相對穩(wěn)定,且兩種貯藏方式下粗酶含量無明顯區(qū)別。該現(xiàn)象的原因有待進(jìn)一步探討,但由此可以推測,由采捕引起的某些脅迫效應(yīng)在后續(xù)的活品貯藏過程中是無法補(bǔ)償?shù)摹?/p>

圖5 捕后活品蝦夷扇貝貯藏過程中閉殼肌粗酶含量分析Fig.5 The crude enzyme contents in adductors of post-harvested live Yesso scallopPatinopecten yessoensisduring storage

3 結(jié)論

本試驗(yàn)中,經(jīng)過對采捕后活品蝦夷扇貝閉殼肌中ACP、SOD、CAT和LSZ等4種脅迫應(yīng)答因子的研究探索,初步發(fā)現(xiàn)活品蝦夷扇貝閉殼肌有ACP和SOD活力,在捕后性106 h內(nèi),ACP活力呈現(xiàn)出先下降再升高的趨勢,而SOD活力則呈先升高再下降再升高趨勢,二者與蝦夷扇貝所受脅迫強(qiáng)度均有相關(guān)性;此外,CAT活力極微且未檢測出LSZ活力;值得注意的是,在本試驗(yàn)條件下,干藏和濕藏處理對酶活力、粗酶分子量分布和粗酶含量未表現(xiàn)出明顯差異,但需進(jìn)一步探討?？傊?活品蝦夷扇貝閉殼肌中ACP和SOD活力對于捕后品質(zhì)變化具有一定的科學(xué)意義,值得研究者深入探索。

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Immunologic factors in adductors and quality evaluation in live and air exposure and wet stored Yesso scollap Patinopecten yessoensis

ZHENG Yao1,LIU Jun-rong1,ZHOU Yan-lin1,LIU Hui-hui1, SONG Yang1,TIAN Yuan-yong1,ZHAO Xue-wei2
(1.College of Food Science and Engineering,Dalian Ocean University,Dalian 116023,China;2.Zhangzidao Group Company Limited,Dalian 116001,China)

To explore the quality change of post-harvested commercial bivalves,the metobolic profiles of Yesso scallop Patinopecten yessoensis were studied under stress during live storage.The regualr pattern of four nonspecific immunity factors,including acid phosphatase(ACP),superoxide dismutase(SOD),catalase(CAT)and lysozyme (LSZ)were monitored following the change of time.Wet storage and air exposure storage,two current commercial live storage ways,were carried out at five key links including boarding,transporting,landing,transition holding and purification.The results showed that,during the 106h of post-harvest,ACP activities were first declined and then increased and that SOD activities were first increased and then deceased,indicating that ACP and SOD have good connection with stress intensity of Yesso scallop.CAT activity was detected at a negligible level and LSZ activity was not detected.In a word,nonspecific immunity factors,ACP and SOD activities in the adductor of scallop are needed for further investigation as stress-response indicators and for quality evaluation index of live product.

Patinopecten yessoensis;post-harvest;adductor;live product

10.16535/j.cnki.dlhyxb.2017.02.016

2095-1388(2017)02-0217-07

S984.3

:A

2016-10-14

國家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(31271980,31671790)

鄭堯(1992—),男,碩士研究生。E-mail:zhengyao20111@163.com

劉俊榮(1963—),女,博士,教授。E-mail:ljunrong@dlou.edu.cn