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    大腸桿菌JH-B2產L-丙氨酸發(fā)酵工藝的研究

    2017-03-01 08:56:24付相敏王金華王永澤
    湖北工業(yè)大學學報 2017年1期
    關鍵詞:丙氨酸發(fā)酵罐補料

    付 剛, 付相敏, 劉 棗, 王金華, 王永澤

    (1 湖北工業(yè)大學生物工程與食品學院, 湖北 武漢 430068; 2 濱州市力之源生物科技有限公司,山東 濱州 256600)

    大腸桿菌JH-B2產L-丙氨酸發(fā)酵工藝的研究

    付 剛1,2, 付相敏1, 劉 棗1, 王金華1, 王永澤1

    (1 湖北工業(yè)大學生物工程與食品學院, 湖北 武漢 430068; 2 濱州市力之源生物科技有限公司,山東 濱州 256600)

    L-丙氨酸在醫(yī)藥和食品行業(yè)中有著非常廣泛的應用,利用大腸桿菌生產L-丙氨酸具有生產周期短和營養(yǎng)要求低的特點。以一株經過基因改造的大腸桿菌JH-B2(ΔfrdBC,ΔadhE,Δpta,ΔldhA,ΔpflB∷alaD)作為發(fā)酵菌株,研究其以葡萄糖為碳源配以少量氮源(5g/L酵母粉)發(fā)酵產L-丙氨酸的條件,對比分批發(fā)酵和補料發(fā)酵的結果,并在50L的發(fā)酵罐中進行了發(fā)酵的放大。研究結果表明,優(yōu)化后發(fā)酵條件為:轉速300r/min,pH6.0,通氣量0.6L/((min·L))。其中,pH為6.0接近于L-丙氨酸的等電點。在此條件下L-丙氨酸產量可達76.51g/L,比優(yōu)化前提高12.5%;7-L發(fā)酵罐中補料發(fā)酵相比分批發(fā)酵產量提高了40%;在50L發(fā)酵罐中進行補料發(fā)酵,L-丙氨酸產量達到135.0g/L。

    L-丙氨酸; 發(fā)酵; 大腸桿菌

    L-丙氨酸是一種人體非必需氨基酸,但其在食品和醫(yī)藥等領域具有廣泛的用途,可作為手術前后營養(yǎng)品[1],亦可作為合成蛋白質所需的原料[2]。除此之外,在工程塑料制造方面,L-丙氨酸也具備很大的商業(yè)價值,因此國內L-丙氨酸的市場價格較高,約為2.5萬元/t。目前L-丙氨酸生產成本較高[3],其大規(guī)模應用受到一定的限制[4]。由于大腸桿菌具有生長快和營養(yǎng)要求低等特點,采用大腸桿菌生產L-丙氨酸,可在一定程度上降低L-丙氨酸生產成本。徐友強[5]等利用重組大腸桿菌,以富馬酸為底物,采用生物轉化的方法將其轉化為L-丙氨酸,產量達到112.5g/L。此外,還可通過基因工程手段,將外源丙氨酸脫氫酶基因導入大腸桿菌,使大腸桿菌利用葡萄糖合成L-丙氨酸,并通過代謝途徑的優(yōu)化,使L-丙氨酸產量和光學純度大大提高[6]。周麗[7]等利用重組大腸桿菌,以初始葡萄糖濃度30g/L作為碳源,經補料發(fā)酵工藝最終得到67.2g/LL-丙氨酸。

    本文以一株經過前期基因工程改造的大腸桿菌JH-B2(ΔfrdBC,ΔadhE,Δpta,ΔldhA,ΔpflB∷alaD)作為發(fā)酵菌株。該菌株具有需要有機氮源更少、發(fā)酵速度快等優(yōu)點。首先評估發(fā)酵轉速、pH、通氣量對L-丙氨酸發(fā)酵產量的影響。在此基礎上,進一步研究分批發(fā)酵與補料發(fā)酵的區(qū)別,并在50L的發(fā)酵罐中進行了補料發(fā)酵的放大,以期為大規(guī)模發(fā)酵L-丙氨酸提供發(fā)酵參數和工藝條件。

    1 材料與方法

    1.1 菌株

    大腸桿菌JH-B2(ΔfrdBC,ΔadhE,Δpta,ΔldhA,ΔpflB∷alaD),出發(fā)菌株為大腸桿菌EscherichiacoliW(ATCC 9637),經過基因工程手段構建而成,甘油管-20℃中保存。

    1.2 培養(yǎng)基

    活化培養(yǎng)基:七水硫酸鎂 0.5 g/L,一水硫酸錳 0.05 g/L,磷酸二氫鉀 1.5 g/L,磷酸氫二鉀 3.6 g/L,NaCl 5 g/L,酵母粉 2 g/L,葡萄糖 20 g/L,瓊脂 20 g/L。

    搖瓶種子培養(yǎng)基:七水硫酸鎂 0.5 g/L,一水硫酸錳 0.05 g/L,磷酸二氫鉀 1.5,磷酸氫二鉀 3.6 g/L,酵母粉 2 g/L,NaCl 5 g/L,葡萄糖 20 g/L。

    發(fā)酵培養(yǎng)基:硫酸銨 30 g/L,七水硫酸鎂 0.5 g/L,一水硫酸錳 0.05 g/L,磷酸二氫鉀 1.5 g/L,磷酸氫二鉀 3.6 g/L,酵母粉 1 g/L,NaCl 5 g/L,葡萄糖 120 g/L,聚醚消泡劑 1.0 g/L。

    1.3 大腸桿菌JH-B2發(fā)酵產L-丙氨酸的條件

    1.3.1 菌種活化及種子培養(yǎng)

    菌種活化:用滅菌后的竹簽從甘油管中蘸取菌液,劃線至活化培養(yǎng)基中,置于恒溫培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng)24 h,連續(xù)活化2~3代。

    搖瓶種子培養(yǎng):從活化好的平板培養(yǎng)基上劃取少量菌落,接入400 mL搖瓶種子培養(yǎng)基中,搖床37℃培養(yǎng)12 h。

    1.3.2 培養(yǎng)條件的優(yōu)化

    1)轉速的優(yōu)化

    將培養(yǎng)好的搖瓶種子培養(yǎng)液(菌液OD值為1.0~1.5,pH為5.0~5.5)以10%接種量接種至含有1800 mL培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,以7.47 mol/L氨水作為發(fā)酵中和劑,初始葡萄糖濃度80 g/L。設定pH值6.0,溫度37℃,通氣量0.6 L/(min·L),轉速分別設置為100、200、300、400、500 r/min。

    2)通氣量的優(yōu)化

    將培養(yǎng)好的搖瓶種子培養(yǎng)液(OD為1.0~1.5,pH為5.0~5.5)以10%接種量接種至含有1800 mL培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,以7.47 mol/L氨水作為發(fā)酵中和劑,初始葡萄糖濃度140 g/L。設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量分別設置為2、4、6、8、10 L/min。

    3)pH的優(yōu)化

    將培養(yǎng)好的搖瓶種子培養(yǎng)液(OD為1.0~1.5,pH為5.0~5.5)以10%接種量接種至含有1800 mL培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,以7.47 mol/L氨水作為發(fā)酵中和劑,初始葡萄糖濃度140 g/L。設定溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量6 L/min,pH分別設置為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 L/(min·L)。

    1.3.3 不同發(fā)酵方式的比較

    1)分批發(fā)酵培養(yǎng)

    將培養(yǎng)好的搖瓶種子培養(yǎng)液(OD為1.0~1.5,pH為5.0~5.5)以10%接種量接種至含有1800 mL培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,以7.47 mol/L氨水作為發(fā)酵中和劑,初始葡萄糖濃度140 g/L。設定pH值0.6 L/(min·L),溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L),發(fā)酵重復三次。

    2)分批-補料發(fā)酵培養(yǎng)

    將培養(yǎng)好的搖瓶種子培養(yǎng)液(OD為1.0~1.5,pH為5.0~5.5)以10%接種量接種至含有1800 mL培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,以7.47 mol/L氨水作為發(fā)酵中和劑,初始葡萄糖濃度80 g/L,發(fā)酵至24 h時,補充葡萄糖濃度至60 g/L。設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L),發(fā)酵重復三次。

    1.3.4 50 L發(fā)酵罐發(fā)酵L-丙氨酸 將培養(yǎng)好的搖瓶種子培養(yǎng)液(OD為1.0~1.5,pH為5.0~5.5)以10%接種量接種至含有27 L培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中,以7.47 mol/L氨水作為發(fā)酵中和劑,初始葡萄糖濃度80 g/L,發(fā)酵至24 h時,補充葡萄糖濃度至于60 g/L。設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L)。

    1.3.5 發(fā)酵終點判斷 通過檢測殘?zhí)呛啃∮? g/L時,確定發(fā)酵終點。發(fā)酵結束后,升溫至60℃維持30 min。

    1.4 分析檢測方法

    1.4.1 發(fā)酵液OD值檢測方法 取1 mL樣品稀釋一定倍數,利用分光光度計在600 nm波長處檢測吸光度,使顯示值在0.2~0.8之間。

    1.4.2 葡萄糖的檢測方法 取適量樣品10 000 r/min離心5 min,取上清液稀釋100倍,利用生物傳感儀(SBA-40D)測定葡萄糖含量。

    1.4.3 L-丙氨酸檢測方法 Waters e2695高效液相色譜,依力特C18色譜柱(4.6 mm×250 mm),流動相甲醇-磷酸氫二鈉混合液(V(pH為6.5的0.05 mol/L磷酸氫二鈉)∶V(甲醇)=1∶9),流速0.8 mL/min,柱溫30℃,進樣體積5 μL,檢測波長215 nm。

    2 結果與分析

    2.1 攪拌轉速的優(yōu)化

    設定pH值為6.0,溫度37℃,通氣量0.6 L/(min·L),轉速分別設置為100、200、300、400、500 r/min來考察轉速對發(fā)酵的影響。

    圖 1 攪拌轉速對大腸桿菌發(fā)酵L-丙氨酸的影響

    由圖1可知,L-丙氨酸產量隨發(fā)酵罐轉速的提高而增加。當轉速為300 r/min時,產量最大77.12 g/L;當轉速大于300 r/min時,產量不再增加。結果表明,發(fā)酵轉速是影響搖瓶供氧的重要因素,適當氧氣量的供應可以促進輔酶I的高效回復利用和代謝的高效運行[3],這有利于丙氨酸的積累。

    2.2 通氣量的優(yōu)化

    設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量分別設置為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 L/(min·L)來考察不同通氣量對發(fā)酵的影響。

    圖 2 通氣量對大腸桿菌發(fā)酵L-丙氨酸的影響

    由圖2可以看出,L-丙氨酸產量與通氣量大小成正相關關系。當通氣量小于0.6 L/(min·L)時,L-丙氨酸產量隨通氣量增大而增加;當通氣量大于0.6 L/(min·L)時,L-丙氨酸產量增長緩慢。通氣量直接關系到發(fā)酵液中溶氧值大小,但并非通氣量越大越好。當通氣量達到一定值時,產物產量不再明顯提高,發(fā)酵能耗反而會進一步增加,而且通氣量太大會使發(fā)酵液飛濺至管壁,容易造成染菌,通氣量6 L/min為大腸桿菌工程菌發(fā)酵產L-丙氨酸的適宜條件。

    2.3 pH的優(yōu)化

    設定溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L),pH分別設置為6.0、6.2、6.4、6.6、6.8和7.0來考察pH對發(fā)酵影響。

    圖 3 pH值對大腸桿菌發(fā)酵產L-丙氨酸的影響

    由圖3可知,發(fā)酵液pH值為6時,L-丙氨酸產量最高。這可能是由于L-丙氨酸等電點為6.02,因此在pH為6.0時L-丙氨酸溶解度最小,發(fā)酵液中L-丙氨酸濃度最小,對菌體反饋抑制作用最弱[8]。

    2.4 7 L發(fā)酵罐分批發(fā)酵

    設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L)進行了分批發(fā)酵實驗。

    圖 4 7 L發(fā)酵罐中利用大腸桿菌分批發(fā)酵產L-丙氨酸

    由圖4可知:0~12 h葡萄糖消耗較慢,產物增加較小,說明大腸桿菌基本還處于生長的延滯期;發(fā)酵12 h以后,耗糖速度和產酸速度明顯提高,發(fā)酵進入了產酸旺盛階段,整個發(fā)酵過程中產物的積累基本在這個階段完成,最終L-丙氨酸積累量為95 g/L。

    2.5 7 L發(fā)酵罐補料發(fā)酵

    設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L)進行補料發(fā)酵,初糖濃度為80 g/L,當發(fā)酵液中殘?zhí)堑陀? g/L時,補料一次,使葡萄糖濃度達到60 g/L,繼續(xù)發(fā)酵至殘?zhí)堑陀? g/L,結束發(fā)酵(圖5)。

    圖 5 7 L發(fā)酵罐中利用大腸桿菌補料發(fā)酵產L-丙氨酸

    從圖5可看出:0~8 h時耗糖速度和產物生成速度較慢;20 h后,耗糖速度和產物速度快速提高;當發(fā)酵至46 h 時L-丙氨酸積累量為133 g/L。

    2.6 50 L發(fā)酵罐補料發(fā)酵

    設定pH值6.0,溫度37℃,轉速300 r/min,通氣量0.6 L/(min·L),在50 L發(fā)酵罐中進行了L-丙氨酸發(fā)酵。初糖濃度為80 g/L,當發(fā)酵液中殘?zhí)堑陀? g/L時,補料一次,使葡萄糖濃度達到60 g/L,繼續(xù)發(fā)酵至殘?zhí)堑陀? g/L,結束發(fā)酵(圖6)。

    圖 6 50 L發(fā)酵罐中利用大腸桿菌補料發(fā)酵產L-丙氨酸

    由圖6可知:0~4 h時產物積累量很少;發(fā)酵4 h以后進入產酸期,大量積累產物L-丙氨酸;40 h發(fā)酵就已結束。整個發(fā)酵過程生產強度3.38 g/(L·h),L-丙氨酸產量135 g/L。

    2.7 不同發(fā)酵方式的比較

    從表1中可以看出,不同發(fā)酵方式以及不同發(fā)酵規(guī)模對L-丙氨酸發(fā)酵都有一定影響。在7 L發(fā)酵罐中,補料發(fā)酵明顯比分批發(fā)酵效果要好,前者轉化率達95%,后者僅為68%;補料發(fā)酵最大生產強度和平均生產強度均高于分批發(fā)酵。一般來說,分批發(fā)酵初始葡萄糖濃度過高對菌體生長不利,延長了發(fā)酵周期,從本文研究結果也可看出,分批發(fā)酵發(fā)酵56 h后發(fā)酵液中還有40 g/L的葡萄糖殘留。而分批-補料發(fā)酵初始葡萄糖濃度僅為80 g/L,發(fā)酵46 h基本無殘?zhí)?,發(fā)酵轉化率大于95%。

    表1 不同發(fā)酵方式L-丙氨酸發(fā)酵的效果

    補料發(fā)酵從工藝上講,操作并不復雜,但其平均生產強度為2.90 g/(L·h),不但高于分批發(fā)酵,對其他形式工藝操作也具有一定優(yōu)勢,如文獻[7]同樣利用大腸桿菌,以葡萄糖作為碳源,發(fā)酵分好氧和厭氧兩階段進行發(fā)酵,其L-丙氨酸最終產量67.2 g/L,轉化率67.2%,L-丙氨酸生產強度2.01 g/(L·h)。

    從發(fā)酵規(guī)模來看,50 L發(fā)酵罐中的效果比7 L發(fā)酵罐中的發(fā)酵效果有一定提高,發(fā)酵產量可達135 g/L。50 L發(fā)酵罐中發(fā)酵L-丙氨酸時糖酸轉化率97%,而7 L發(fā)酵罐中轉化率僅僅為95%;前者最大生產強度和平均生產強度均高于后者,表明本文菌株在適應大規(guī)模發(fā)酵生產L-丙氨酸上具有很大的潛力。

    3 結論

    本文以一株經過基因工程改造的大腸桿菌JH-B2(ΔfrdBC,ΔadhE,Δpta,ΔpflB∷alaD,ΔldhA)作為發(fā)酵菌株,對L-丙氨酸發(fā)酵工藝條件進行了探索。1)轉速小于300r/min范圍內,隨轉速增大,L-丙氨酸產量隨之增加;當通氣量小于0.6L/(min·L)時,L-丙氨酸產量隨通氣量增大而增加;發(fā)酵液pH值為6時即在丙氨酸等電點附近時,L-丙氨酸產量最高。

    2)對比了補料發(fā)酵和分批發(fā)酵產L-丙氨酸的發(fā)酵效果。結果表明,采用初糖80g/L補料60g/L的補料發(fā)酵方式,L-丙氨酸可達133.5g/L,比分批發(fā)酵(95g/L)產量高出40%,生產強度也有很大提高,達2.90g/(L·h)。

    3)50L發(fā)酵罐中的效果比7L發(fā)酵罐中的發(fā)酵效果有一定提高。50L發(fā)酵罐中發(fā)酵L-丙氨酸時糖酸轉化率97%,而7L發(fā)酵罐中轉化率為95%;前者最大生產強度和平均生產強度均高于后者,表明菌株在適應大規(guī)模發(fā)酵生產上具有很大的潛力。

    [1]HolsP,KleerebezemM,SchanckAN,etal.ConversionofLactococcuslactisfromhomolactictohomoalaninefermentationthroughmetabolicengineering.[J].NatureBiotechnology, 1999, 17(6):588-92.

    [2]LeeM,SmithGM,EitemanMA,etal.Aerobicproductionofalanineby,EscherichiacoliaceFldhA,mutantsexpressingthe,BacillussphaericusalaD,gene[J].AppliedMicrobiology&Biotechnology, 2004, 65(1):56-60.

    [3] 周麗, 鄧璨, 崔文璟,等. 利用重組大腸桿菌發(fā)酵甘油合成L-丙氨酸[J]. 現代食品科技, 2016(6):163-169.

    [4]DinariSMM.ProgressinSyntheticPolymersBasedonNaturalAminoAcids[J].JournalofMacromolecularSciencePartA, 2011,PartA(8):644-679.

    [5] 徐友強, 馬玉岳, 姚粟,等. 重組大腸桿菌轉化富馬酸生產L丙氨酸[J]. 生物加工過程, 2016, 14(2):7-11.

    [6]SmithGM,LeeSA,ReillyKC,etal.Fed-batchtwo-phaseproductionofalaninebyametabolicallyengineeredEscherichiacoli[J].BiotechnologyLetters, 2006, 28(20):1695-700.

    [7] 周麗, 鄧璨, 崔文璟,等. 溫度調節(jié)基因開關調控大腸桿菌發(fā)酵合成L-丙氨酸[J]. 微生物學通報, 2015, 42(11):2272-2281.

    [8] 鄧輝, 陳存武, 孫傳伯,等. 大腸桿菌磷酸甘油酸脫氫酶突變體的構建及抗反饋抑制效應[J]. 生物工程學報, 2016, 32(4):468-477.

    [責任編校: 張 眾]

    Research on L-alanine fermentation by Escherichia coli JH B2

    FU Gang1,2, FU Xiangmin1, LIU Zao1, WANG Jinhua1, WANG Yongze1

    (CollegeofBioengineeringandFoodScience,HubeiUniv.ofTech.,Wuhan430068China; 2BinzhouLIZHIYUANBiologicalTech.Co.Ltd.,Binzhou256600,China)

    L-alanine has been widely used in the pharmaceutical and food industries. The production of L-alanine byEscherichiacolihasthecharacteristicsofshortfermentationtimeandminimalnutritionalrequirement.Inthisstudy,EscherichiacoliJH-B2 (ΔfrdBC,ΔadhE,Δpta,ΔldhA,ΔpflB∷alaD)wasevaluatedforfermentativeproductionofL-alanineusingbatchandfed-batchmodes.Theresultsachievedinbatchfermentationshowedthattheoptimizedfermentationconditionswereasfollows:rotationspeedof300r/min,controllingpHof6.0 (approximatelyequivalenttotheisoelectricpointofL-alanine),andaerationrateof0.6L/(min·L).Undertheseconditions,theL-alaninetiterreachedto76.51g/Linthebatchfermentation,whichwas12.5%higherthanthatproducedinpreviousfermentationwithoutoptimizedcondition.Furthermore,L-alaninetiterachievedinafed-batchmodewas40%higherthanobtainedinbatchmode.Ina50Lfermenterwithafed-batchmode,thetiterofL-alaninereached135.0g/L.

    L-alanine;fermentation;Escherichia coli

    2016-11-17

    湖北省自然科學基金項目(2011CDB076;2011CDA008),湖北省教育廳項目(B20121402)

    付 剛(1969-), 男, 山東濱州人,湖北工業(yè)大學碩士研究生,研究方向為生物化工

    1003-4684(2017)01-0116-05

    Q

    A

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