周正東,李學(xué)如
(西南交通大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,四川 成都 610031)
粗糙脈孢菌固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶工藝優(yōu)化
周正東,李學(xué)如
(西南交通大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,四川 成都 610031)
從青儲(chǔ)飼料中分離得到一株產(chǎn)纖維素酶能力較強(qiáng)的絲狀真菌,經(jīng)形態(tài)學(xué)和26S rDNA D1/D2區(qū)序列比對(duì)分析,確認(rèn)該菌株屬粗糙脈孢菌(Neurosporacrassa)。通過單因素實(shí)驗(yàn)和正交實(shí)驗(yàn)探討了碳源、氮源、無機(jī)鹽、料水比、培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時(shí)間對(duì)菌株固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶的影響。確定最適產(chǎn)酶工藝為:碳源麩皮與稻草稈的質(zhì)量比6∶4、氮源3%(NH4)2SO4、料水比1∶1.5(g∶mL)、培養(yǎng)溫度30 ℃、培養(yǎng)時(shí)間60 h,無機(jī)鹽KH2PO4和MgSO4對(duì)產(chǎn)酶影響不顯著,在最適產(chǎn)酶工藝下,固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶酶活達(dá)到251.27 U·g-1以上。
粗糙脈孢菌;纖維素酶;固態(tài)發(fā)酵
我國(guó)農(nóng)作物秸稈年產(chǎn)量約9億t,且呈不斷增長(zhǎng)態(tài)勢(shì)[1-2]。常規(guī)的焚燒、填埋返田以及堆肥等處理方法存在環(huán)境污染嚴(yán)重和利用率低等弊端[2]。農(nóng)作物秸稈的主要成分為纖維素和半纖維素,利用微生物或其產(chǎn)生的纖維素酶可將秸稈中不能被大多數(shù)生物利用的木質(zhì)纖維素降解為可利用的低分子糖,從而為農(nóng)作物秸稈生物質(zhì)能量轉(zhuǎn)化提供了一條有效途徑[3]。此外,以秸稈為原料通過微生物發(fā)酵所產(chǎn)纖維素酶在釀造工業(yè)、飲料加工業(yè)、紡織工業(yè)、飼料添加劑等領(lǐng)域有著很高的應(yīng)用價(jià)值[4]。研究表明,許多絲狀真菌具有分泌纖維素酶和半纖維素酶的能力[5],如粗糙脈孢菌產(chǎn)纖維素酶的能力與瑞氏木霉(Trichoderma)相近。林良才等[6]對(duì)粗糙脈孢菌降解木質(zhì)纖維素的機(jī)制進(jìn)行了較細(xì)致的分析。作者通過形態(tài)學(xué)和26S rDNA D1/D2區(qū)序列比對(duì)分析,對(duì)實(shí)驗(yàn)室前期從青儲(chǔ)飼料中分離得到的一株產(chǎn)纖維素酶能力較強(qiáng)的絲狀真菌進(jìn)行鑒定,并以農(nóng)作物秸稈為原料對(duì)該菌株固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶的工藝進(jìn)行優(yōu)化,以期為產(chǎn)纖維素酶的粗糙脈孢菌的進(jìn)一步開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)。
1.1 菌種與培養(yǎng)基
粗糙脈孢菌NCL,從青儲(chǔ)飼料中分離獲得。
PDA液體培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g,葡萄糖20 g,瓊脂15~20 g,自來水1 000 mL,自然pH值。
固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基:250 mL三角瓶裝料10 g干基質(zhì)。碳源(麩皮、稻草稈、玉米稈、玉米芯)、氮源(硫酸銨、酵母膏、蛋白胨)、料水比等根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求進(jìn)行不同組合。
1.2 材料、試劑與儀器
麩皮、稻草稈、玉米稈和玉米芯等,采自成都溫江等地;稻草稈、玉米稈和玉米芯均烘干粉碎過20目篩。
真菌DNA提取試劑盒、PCR擴(kuò)增試劑盒、PCR純化試劑盒等,Omega公司;四水合酒石酸鉀鈉、苯酚、無水亞硫酸鈉、一水檸檬酸、硫酸銨、硫酸鎂、磷酸二氫鉀等均為分析純。
3,5-二硝基水楊酸(DNS)試劑:稱取DNS 3.15 g,加水500 mL,攪拌3~5 s,水浴至45 ℃。逐步加入100 mL氫氧化鈉溶液(200 g·L-1),不斷攪拌至溶液清澈透明。逐步加入四水合酒石酸鉀鈉91.0 g、苯酚2.5 g和無水亞硫酸鈉2.5 g,繼續(xù)45 ℃水浴加熱,同時(shí)補(bǔ)加水300 mL,不斷攪拌直至完全溶解。停止加熱,冷卻至室溫,用去離子水定容至1 000 mL。用燒結(jié)玻璃過濾器過濾,濾液儲(chǔ)存在棕色瓶中,避光保存。室溫下存放7 d后使用,有效期180 d。
檸檬酸鹽緩沖液(pH=5.5):稱取一水檸檬酸10.5 g、氫氧化鈉5.0 g,加800 mL水溶解,調(diào)pH值至5.5,用去離子水定容至1 000 mL。
9902型PCR儀,美國(guó)Life Technologies公司;DYY-6C型電泳儀,北京六一儀器廠;GeneGenius型全自動(dòng)凝膠成像分析系統(tǒng),美國(guó)UVP公司;V-1100D型可見分光光度計(jì),上海美譜達(dá)儀器有限公司;D3024R型高速冷凍離心機(jī),美國(guó)賽洛捷克公司;ZHWY-2102C型恒溫?fù)u床,上海智城分析儀器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 菌株鑒定
形態(tài)學(xué)鑒定:在內(nèi)置載玻片的PDA平板上接種一環(huán)粗糙脈孢菌,30 ℃培養(yǎng)3 d后取出載玻片,在顯微鏡下觀察菌落、菌絲及孢子的形態(tài)。
26S rDNA分子鑒定:參照文獻(xiàn)[7]稍做改進(jìn)。將菌種接種于PDA液體培養(yǎng)基中,30 ℃搖瓶培養(yǎng)3 d,離心收集菌絲體,洗滌,加液氮研磨。按真菌DNA提取試劑盒操作步驟提取基因組DNA,用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)基因組DNA,然后用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)擴(kuò)增26S rDNA的D1/D2區(qū)片段。PCR擴(kuò)增的上游引物為:5′-GGAAGTAAAAGTCGTAACAA-GG-3′,下游引物為:5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′。
PCR反應(yīng)體系(50 μL):DNA模板2 μL,PCR反應(yīng)混合液25 μL,上下游引物各0.5 μL(10 μmol),補(bǔ)加ddH2O到50 μL。PCR擴(kuò)增條件:95 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性1 min,55 ℃退火1 min,72 ℃延伸1 min,共30個(gè)循環(huán);72 ℃延伸5 min。
PCR擴(kuò)增產(chǎn)物純化與測(cè)序:按照PCR純化試劑盒操作步驟純化PCR產(chǎn)物。PCR產(chǎn)物的測(cè)序委托上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司完成。
序列比對(duì)及菌株的鑒定:輸入菌株26S rDNA的D1/D2區(qū)片段測(cè)序結(jié)果,在NCBI數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行同源性比對(duì),鑒定菌株的種屬。
1.3.2 菌株固態(tài)發(fā)酵
按麩皮與稻草稈質(zhì)量比6∶4在250 mL三角瓶中裝料10 g干基質(zhì),加入2% 硫酸銨、10 mL水,30 ℃培養(yǎng)24 h后扣瓶,繼續(xù)發(fā)酵培養(yǎng)2 d后,取出發(fā)酵產(chǎn)物,40 ℃過夜烘干。
通過單因素實(shí)驗(yàn)和正交實(shí)驗(yàn)探討碳源、氮源、無機(jī)鹽、料水比、培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時(shí)間對(duì)菌株固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶的影響。
1.3.3 纖維素酶酶活的測(cè)定
葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制:先用檸檬酸鹽緩沖液配制10 mg·mL-1的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液,再稀釋成0.2 mg·mL-1、0.4 mg·mL-1、0.8 mg·mL-1、1.2 mg·mL-1、1.6 mg·mL-1、1.8 mg·mL-1、2.0 mg·mL-1系列葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別吸取上述標(biāo)準(zhǔn)溶液各2.00 mL(2組平行)于刻度試管中,再分別加入2 mL水和2 mL DNS試劑,沸水浴5 min。自來水冷卻至室溫,用水定容至25 mL,測(cè)定540 nm處吸光度。以吸光度為橫坐標(biāo)、對(duì)應(yīng)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液含葡萄糖的毫克數(shù)為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,擬合得到線性回歸方程:y=2.867x+0.080,R2=0.9980。
纖維素酶酶活測(cè)定:發(fā)酵結(jié)束,取樣,烘干,按NY/T 912-2004[8]測(cè)定發(fā)酵產(chǎn)物中纖維素酶酶活。
酶活力單位定義:將37 ℃、pH值為5.5下,4 mg·mL-1羧甲基纖維素鈉溶液每分鐘降解釋放1 μmol還原糖所需要的酶量定義為一個(gè)酶活力單位(U)。
2.1 產(chǎn)纖維素酶菌株的鑒定
從青儲(chǔ)飼料中分離得到一株產(chǎn)纖維素酶能力較強(qiáng)的絲狀真菌,其在PDA平板上生長(zhǎng)3 d的形態(tài)如圖1所示。
菌落形態(tài) 菌絲及孢子形態(tài)(×200)
圖1 菌株在PDA平板上的生長(zhǎng)形態(tài)
Fig.1 Morphological images of the strain on PDA plate
由圖1可知,菌株在PDA平板上呈擴(kuò)散狀生長(zhǎng),菌絲為疏松網(wǎng)狀的長(zhǎng)菌絲,在氣生菌絲的頂部形成分枝鏈,分生孢子呈橘黃色,成熟的孢子呈串珠狀排列(圖1b)。這些形態(tài)特征與魏景超[9]的《真菌鑒定手冊(cè)》和張妍妍等[10]描述的粗糙脈孢菌(Neurosporacrassa)形態(tài)相吻合。
將PCR擴(kuò)增26S rDNA的 D1/D2區(qū)片段測(cè)序結(jié)果與NCBI數(shù)據(jù)庫中序列進(jìn)行BLAST比對(duì)分析,發(fā)現(xiàn)該菌株與數(shù)據(jù)庫中的NeurosporacrassaEFB06相似度達(dá)100%。結(jié)合形態(tài)特征與26S rDNA分子鑒定,初步確認(rèn)該菌株屬粗糙脈孢菌,將其命名為NCL。
2.2 固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶工藝優(yōu)化
2.2.1 碳源對(duì)產(chǎn)酶的影響
纖維素酶是一種誘導(dǎo)酶,在以農(nóng)作物秸稈為培養(yǎng)基基質(zhì)的發(fā)酵過程中,農(nóng)作物秸稈既是纖維素酶生長(zhǎng)的碳源同時(shí)又是纖維素酶產(chǎn)生的誘導(dǎo)物。4種不同碳源對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響如表1所示。
表1 4種不同碳源對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響/(U·g-1)
Tab.1 Effect of four different carbon sources on enzyme-production/(U·g-1)
碳源稻草稈麩皮玉米稈玉米芯酶活201.56220.75138.9437.58
由表1可知,以稻草稈或麩皮為碳源時(shí),粗糙脈孢菌NCL的產(chǎn)酶效果較好。
進(jìn)一步考察兩者質(zhì)量比對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見圖2。
圖2 麩皮與稻草稈的質(zhì)量比對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響
由圖2可知,最適麩皮與稻草稈質(zhì)量比為6∶4。麩皮比例適當(dāng)可以促進(jìn)產(chǎn)酶,當(dāng)比例超過60%后酶活反而有所降低。這可能是因?yàn)?,麩皮比例過高時(shí),其含有的可溶性糖較高反而抑制了纖維素酶的產(chǎn)生[11]。
2.2.2 料水比對(duì)產(chǎn)酶的影響
確定培養(yǎng)基麩皮與稻草稈質(zhì)量比為6∶4后,考察不同料水比(g∶mL,下同)對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),當(dāng)料水比為1∶1、1∶1.5和1∶2時(shí),菌株產(chǎn)纖維素酶酶活分別為229.11 U·g-1、237.72 U·g-1和219.43 U·g-1,在料水比為1∶1.5時(shí)酶活最高,但三者之間差異不顯著,表明粗糙脈孢菌NCL能在一個(gè)比較寬泛的料水比環(huán)境中產(chǎn)纖維素酶。因此,選擇最適料水比為1∶1.5。
2.2.3 氮源對(duì)產(chǎn)酶的影響
采用L9(34)正交實(shí)驗(yàn)考察酵母膏、蛋白胨和硫酸銨3種氮源對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見表2。進(jìn)一步對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表3。
由表2可知,發(fā)酵培養(yǎng)基的合適氮源組合為:1%酵母膏,2%蛋白胨,3%硫酸銨。從表3可看出,3種氮源對(duì)產(chǎn)酶的影響程度為:硫酸銨>蛋白胨>酵母膏,其中硫酸銨的影響程度遠(yuǎn)大于蛋白胨和酵母膏??紤]到顯著性大小和實(shí)際生產(chǎn)成本,選取硫酸銨作為唯一氮源進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
2.2.4 無機(jī)鹽對(duì)產(chǎn)酶的影響
采用L9(34)正交實(shí)驗(yàn)考察(NH4)2SO4、KH2PO4和MgSO4對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見表4。
由表4可知,KH2PO4和MgSO4的極差(R)與空白極差相近,表明培養(yǎng)基中添加KH2PO4和MgSO4對(duì)產(chǎn)酶影響不大;培養(yǎng)基中添加3%或4%的(NH4)2SO4對(duì)產(chǎn)酶影響十分接近。因此,粗糙脈孢菌NCL在 3%(NH4)2SO4作唯一氮源的培養(yǎng)基中能獲得較好的產(chǎn)酶效果。
表2 氮源對(duì)產(chǎn)酶影響的正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果
Tab.2 Results of orthogonal experiment for the effect of nitrogen source on enzyme-production
編號(hào)酵母膏%蛋白胨%硫酸銨%空白列酶活U·g-11001-186.682012-204.603023-217.744102-212.165113-214.956121-206.197203-212.968211-194.249222-217.74k1203.01203.93195.70206.46k2211.10204.60211.50207.92k3208.31213.89215.22208.05R8.099.9619.521.59
表3 方差分析
Tab.3 Variance analysis of orthogonal experiment
因素偏差平方和自由度F比顯著性酵母膏101.43221.69*蛋白胨185.94239.76*硫酸銨644.122137.72**誤差4.682
注:F0.05(2,2)=19.00,F(xiàn)0.01(2,2)=99.00;*表示具有顯著性;**表示具有極顯著性。
2.2.5 培養(yǎng)溫度對(duì)產(chǎn)酶的影響(表5)
表5 培養(yǎng)溫度對(duì)產(chǎn)酶的影響
Tab.5 Effect of culture temperature on enzyme-production
溫度/℃263034酶活/(U·g-1)211.36242.17243.88
由表5可知,26 ℃培養(yǎng)時(shí)酶活最低,30 ℃和34 ℃培養(yǎng)時(shí)酶活較為接近。因此,選擇最適培養(yǎng)溫度為30 ℃。
2.2.6 培養(yǎng)時(shí)間對(duì)產(chǎn)酶的影響
按麩皮與稻草稈質(zhì)量比6∶4裝料10 g干基質(zhì),加入3%(NH4)2SO4、15 mL水,在30 ℃下考察培養(yǎng)時(shí)間對(duì)菌株產(chǎn)酶的影響,結(jié)果見圖3。
由圖3可知,前24 h,酶活一直處于較低水平;24~36 h,酶活呈指數(shù)急速上升,這是因?yàn)?,一方面菌絲體開始旺盛生長(zhǎng),另一方面是培養(yǎng)12 h后扣瓶使得發(fā)酵物的通氣情況得到改善;60 h后,酶活趨于穩(wěn)定。因此,選擇最適培養(yǎng)時(shí)間為60 h。
表4 無機(jī)鹽對(duì)產(chǎn)酶影響的正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果
Tab.4 Results of orthogonal experiment for the effect of inorganic salt on enzyme-production
圖3 培養(yǎng)時(shí)間對(duì)產(chǎn)酶的影響
2.3 菌株最適產(chǎn)酶工藝驗(yàn)證
在最適產(chǎn)酶工藝[麩皮與稻草稈質(zhì)量比為6∶4、250 mL三角瓶裝料10 g干基質(zhì)、加入3%(NH4)2SO4作為氮源、添加15 mL水使料水比為1∶1.5、30 ℃培養(yǎng)60 h]下進(jìn)行5批次粗糙脈孢菌NCL固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)酶驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),發(fā)酵產(chǎn)物纖維素酶酶活都穩(wěn)定在251.27 U·g-1以上。表明,本實(shí)驗(yàn)所得最適產(chǎn)酶工藝可行。
經(jīng)形態(tài)學(xué)和26S rDNA D1/D2區(qū)序列比對(duì)分析,確認(rèn)從青儲(chǔ)飼料中分離得到的一株產(chǎn)纖維素酶能力較強(qiáng)的絲狀真菌屬粗糙脈孢菌(Neurosporacrassa)。該菌產(chǎn)纖維素酶的最適工藝為:碳源麩皮與稻草稈質(zhì)量比6∶4,氮源3%(NH4)2SO4、料水比1∶1.5(g∶mL)、培養(yǎng)溫度30 ℃、培養(yǎng)時(shí)間60 h,在此工藝下,菌株產(chǎn)纖維素酶酶活達(dá)251.27 U·g-1以上。
[1] 畢于運(yùn),高春雨,王亞靜,等.中國(guó)秸稈資源數(shù)量估算[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2009,25(12):211-217.
[2] 彭春艷,羅懷良,孔靜.中國(guó)作物秸稈資源量估算與利用狀況研究進(jìn)展[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)資源與區(qū)劃,2014,35(3):14-20.
[3] ZNAMEROSKI E A,GLASS N L.Using a model filamentous fungus to unravel mechanisms of lignocellulose deconstruction[J].Biotechnology for Biofuels,2013,6(1):1-7.
[4] 趙琪,李亞蘭,陳子欣,等.纖維素酶應(yīng)用研究的最新進(jìn)展[J].廣州化工,2014,42(6):21-23.
[5] SUN J,TIAN C,DIAMOND S,et al.Deciphering transcriptional regulatory mechanisms associated with hemicellulose degradation inNeurosporacrassa[J].Eukaryotic Cell,2012,11(4):482-493.
[6] 林良才,李金根,王邦,等.粗糙脈孢菌木質(zhì)纖維素降解利用研究進(jìn)展[J].生物加工過程,2014,12(1):28-36.
[7] 陳鋒菊,李百元,楊冰,等.一種經(jīng)濟(jì)快速提取絲狀真菌基因組DNA的方法[J].生命科學(xué)研究,2010,14(2):122-124.
[8] NY/T 912-2004,飼料添加劑 纖維素酶活測(cè)定[S].
[9] 魏景超.真菌鑒定手冊(cè)[M].上海:上海科學(xué)技術(shù)出版社,1979:198-199.
[10] 張妍妍,劉佩卉,劉新利.粗糙脈孢菌及其在發(fā)酵工業(yè)中的應(yīng)用研究[J].山東科學(xué),2011,24(3):37-42.
[11] 汪世華,胡開輝,楊燕凌.纖維素酶固體發(fā)酵條件的優(yōu)化[J].河南科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2006,27(1):65-66,69.
Optimization on Cellulase Production with Neurospora crassa by Solid-State Fermentation
ZHOU Zheng-dong,LI Xue-ru
(SchoolofLifeScienceandEngineering,SouthwestJiaotongUniversity,Chengdu610031,China)
A mycelial fungus with strong ability of producing cellulase was screened from ensilage and identified asNeurosporacrassaby the analysis of morphology and 26S rDNA D1/D2 sequence alignment.The effects of factors on producing cellulase withNeurosporacrassaby solid-state fermentation were investigated by a single factor experiment and an orthogonal experiment.The optimal fermentation conditions were as follows:the mass ratio of wheat bran to rice straw was 6∶4,nitrogen source was 3%(NH4)2SO4,material-water ratio was 1∶1.5(g∶mL),culture temperature was 30 ℃,culture time was 60 h,inorganic salt KH2PO4and MgSO4had no significant effect on cellulase production.The enzyme activity of produced cellulase reached up to above 251.27 U·g-1under above optimal conditions.
Neurosporacrassa;cellulase;solid-state fermentation
四川省科技支撐計(jì)劃資助項(xiàng)目(2012FZ0048)
2016-06-22
周正東(1993-),男,湖南龍山人,碩士研究生,研究方向:微生物技術(shù),E-mail:1016992297@qq.com;通訊作者:李學(xué)如,教授,E-mail:xueruli@sina.com。
10.3969/j.issn.1672-5425.2016.12.008
周正東,李學(xué)如.粗糙脈孢菌固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶工藝優(yōu)化[J].化學(xué)與生物工程,2016,33(12):38-41,47.
TQ 352.78 TQ 920.1
A
1672-5425(2016)12-0038-04