• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    氯化鹽處理對(duì)綠豆芽菜植酸降解的影響

    2016-12-06 09:18:03閆曉坤靳曉琳楊潤(rùn)強(qiáng)顧振新
    食品科學(xué) 2016年22期
    關(guān)鍵詞:綠豆芽植酸酶植酸

    閆曉坤,靳曉琳,楊潤(rùn)強(qiáng),顧振新*

    (南京農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,江蘇 南京 210095)

    氯化鹽處理對(duì)綠豆芽菜植酸降解的影響

    閆曉坤,靳曉琳,楊潤(rùn)強(qiáng),顧振新*

    (南京農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,江蘇 南京 210095)

    為降低綠豆芽菜中抗?fàn)I養(yǎng)物質(zhì)植酸含量,探究氯化鹽對(duì)綠豆芽菜植酸降解的影響,研究了KCl、NaCl和CaCl2處理下綠豆芽菜的長(zhǎng)勢(shì)、植酸酶活性及植酸含量的變化,篩選了具有降植酸效果的氯化鹽并優(yōu)化了濃度組合。結(jié)果發(fā)現(xiàn),NaCl和CaCl2能夠促進(jìn)植酸降解同時(shí)促進(jìn)綠豆芽菜生長(zhǎng);單因素試驗(yàn)結(jié)果表明,1.6 mmol/L NaCl和6 mmol/L CaCl2降植酸效果最佳,且NaCl和CaCl2促進(jìn)植酸降解作用有疊加效應(yīng)。響應(yīng)面法優(yōu)化得到NaCl、CaCl2濃度分別為1.68 mmol/L和6.40 mmol/L時(shí),植酸含量降低至8.04 μg/株,為對(duì)照的10.84%。

    綠豆芽菜;氯化鹽;植酸酶;植酸降解

    綠豆(Vigna radiata (Linn.) Wilczek),為豆科植物,別名青小豆、植豆等,種子和莖被廣泛食用,有清熱解毒功效[1],在中國(guó)已有2 000多年的栽培史。綠豆?fàn)I養(yǎng)豐富,富含蛋白質(zhì)及碳水化合物、同時(shí)富含鈣、磷、鐵等多種礦物質(zhì)及維生素[2],并富含植酸。植酸主要以鈣鎂鹽形式存在于植物籽粒的糊粉層、胚芽和子葉中[3]。雖然植酸具有抗氧化、抗癌等生理功能[4],但同時(shí)又是一種抗?fàn)I養(yǎng)因子,妨礙蛋白質(zhì)和礦質(zhì)元素的吸收[5]。豆類籽粒中植酸含量普遍高于谷類,可達(dá)0.2%~2.9%[6]。因此,以豆類為主食時(shí),易導(dǎo)致人體礦質(zhì)元素缺乏。但豆類籽粒萌發(fā)后,其內(nèi)源植酸酶被激活[7],部分植酸被水解成低級(jí)肌醇磷酸,低級(jí)肌醇磷酸既具有植酸原有的抗氧化與防癌癥等生理功能,同時(shí)又降低了植酸原有的抗?fàn)I養(yǎng)作用[8]。提高植酸酶活性,則可增加植酸的降解量。有研究

    表明,鹽脅迫能誘導(dǎo)小麥苗中植酸酶基因表達(dá)上調(diào)[9],NaCl脅迫下大麥苗中植酸酶活性增加[10];Ca2+可激活β-螺旋植酸酶[11],尤其在逆境脅迫下,細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度升高,激活一系列應(yīng)激反應(yīng),使得煙草中相關(guān)植酸酶基因表達(dá)上調(diào)[12],推測(cè)外源添加Ca2+可能會(huì)提高植酸酶活性。因此,在綠豆發(fā)芽期間用一定濃度無(wú)機(jī)鹽進(jìn)行噴淋,可能會(huì)提高植酸酶活性,進(jìn)而降低綠豆芽菜中植酸含量。目前,我國(guó)關(guān)于綠豆芽菜生長(zhǎng)期間植酸含量變化的研究報(bào)道較少,無(wú)機(jī)鹽對(duì)綠豆芽菜中植酸降解的影響研究鮮見(jiàn)報(bào)道。

    本研究以綠豆為試材,在其發(fā)芽過(guò)程中噴淋KCl、NaCl和CaCl2,探討3 種氯化鹽對(duì)綠豆芽菜中植酸降解的影響,旨在為低植酸綠豆芽菜生產(chǎn)提供技術(shù)支持。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    綠豆種子:蘇綠一號(hào),預(yù)實(shí)驗(yàn)測(cè)得種子中植酸含量約為742.94 μg/粒。由常州五星禾綠蔬菜有限公司提供,于-20 ℃貯存?zhèn)溆谩?/p>

    Dowex 1×8 100-200離子交換樹(shù)脂 阿法埃莎(天津)化學(xué)有限公司;2-(N-嗎啉)乙磺酸-水合物(2-(N-morpholino)ethanesulfonic acid,MES)、乙二胺四乙酸二鈉((ethylenedinitrilo) tetraacetic acid disodium salt,EDTA-2Na)、鉬酸銨、丙酮、磺基水楊酸、硫酸、鹽酸、硫酸鈉、三氯化鐵、氯化鈣、氯化鈉、氯化鉀 醫(yī)藥集團(tuán)(上海)化學(xué)試劑公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    PGX-150智能培養(yǎng)箱 寧波海曙塞福實(shí)驗(yàn)儀器廠;BX-802豆芽機(jī) 永康市貝欣五金電器廠;818型pH計(jì)美國(guó)Orion公司;Multiskan FC型酶標(biāo)儀 上海賽默飛世爾儀器有限公司;UV-2802型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)上海安亭科學(xué)儀器廠。

    1.3 方法

    1.3.1 種子發(fā)芽

    稱取40 g籽粒飽滿的綠豆,用體積分?jǐn)?shù)1.5%的次氯酸鈉浸泡15 min后,于蒸餾水中漂洗至pH值中性,然后在30 ℃浸泡4 h,置于發(fā)芽機(jī)中30 ℃黑暗培養(yǎng)4 d。期間,每2 h噴淋一次氯化鹽溶液,每次2 min。以蒸餾水噴淋為對(duì)照組。

    1.3.2 芽長(zhǎng)、株質(zhì)量測(cè)定

    隨機(jī)選取30 株綠豆芽苗菜,分別用直尺和分析天平測(cè)定其芽長(zhǎng)和株質(zhì)量。

    1.3.3 植酸酶活性測(cè)定

    參照李娜等[13]的方法,稍作修改,取綠豆芽苗2~3 株(約0.5 g),用5 mL MES-EDTA(pH 5.5)緩沖液冰浴研磨成漿狀,于4 ℃、10 000 r/min離心15 min得上清液,即為植酸酶提取液。取200 μL粗酶液與等體積底物(4 mmol/L植酸鈉)混勻,在55 ℃條件下反應(yīng)15 min后立即加入800 μL丙酮-鉬酸銨溶液終止顯色,于405 nm波長(zhǎng)處測(cè)定其OD值。每個(gè)處理重復(fù)3 次。以無(wú)機(jī)磷含量為標(biāo)準(zhǔn),制作標(biāo)準(zhǔn)曲線并計(jì)算無(wú)機(jī)磷的增加量,以每分鐘產(chǎn)生1 μmol無(wú)機(jī)磷定義為1 個(gè)酶活力單位U,植酸酶活力表示為U/株。

    1.3.4 植酸含量測(cè)定

    植酸含量測(cè)定參照GB/T 170496—1998《食品中植酸的測(cè)定》,結(jié)果以μg/株表示。

    1.3.5 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Behnken設(shè)計(jì)原理,以發(fā)芽第4天植酸含量為響應(yīng)值,自變量為NaCl濃度(A)、CaCl2濃度(B)。因子編碼及自變量水平見(jiàn)表1,每次試驗(yàn)設(shè)3 個(gè)平行樣,取平均值,利用Design-Exper 8.0軟件進(jìn)行試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果分析。

    表1 Box-Behnken試驗(yàn)水平與因素Table1 The coded levels and corresponding actual levels of the independent variables used in the Box-Behnken design

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    采用統(tǒng)計(jì)分析軟件SPSS 18.0 進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,均值間比較采用Duncan’s多重比較,在0.05水平上進(jìn)行顯著性檢驗(yàn)。

    2 結(jié)果與分析

    圖1 不同氯化鹽處理綠豆芽菜的芽長(zhǎng)(A)和株質(zhì)量(B)變化Fig.1 Changes in sprout length (A) and sprout weight (B) with different chlorate treatments

    2.1 氯化鹽處理對(duì)綠豆芽菜生長(zhǎng)的影響

    由圖1可以看出,綠豆芽菜的芽長(zhǎng)和株質(zhì)量隨發(fā)芽時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,NaCl和CaCl2處理顯著增加了綠豆芽長(zhǎng)(P<0.05),而在發(fā)芽第4天時(shí),CaCl2處理下的芽長(zhǎng)最大,其次是NaCl,而KCl處理僅在第4天表現(xiàn)出促進(jìn)作用,與對(duì)照相比,第4天時(shí)CaCl2、KCl和NaCl處理下芽長(zhǎng)分別增加了42.80%、23.44%和70.90%(圖1A)。由圖1B

    可以看出,在3 種鹽處理下,生長(zhǎng)2 d的綠豆芽苗株質(zhì)量與對(duì)照無(wú)顯著差異,而發(fā)芽4 d的綠豆芽苗僅有CaCl2處理表現(xiàn)出促進(jìn)作用,這可能是由于發(fā)芽第4天Ca2+提高了芽苗的含水量[14]。

    2.2 不同無(wú)機(jī)鹽處理綠豆芽菜中植酸酶活性及植酸含量變化

    表2 不同氯化鹽處理植酸酶活性Table2 Changes in phytase activity under different chlorate treatments

    由表2可看出,對(duì)照和KCl處理綠豆芽菜的植酸酶活性隨發(fā)芽時(shí)間的延長(zhǎng)而降低,而NaCl和CaCl2處理下的酶活隨時(shí)間的延長(zhǎng)而增加,其中KCl處理的植酸酶活性最低。在發(fā)芽第2天,NaCl和CaCl2處理的酶活性與對(duì)照相比無(wú)顯著差異(P<0.05);在發(fā)芽第4天,NaCl和CaCl2處理的酶活性分別高于對(duì)照31.57%和35.11%(P<0.05)。這表明KCl可抑制植酸酶活性,而NaCl和CaCl2處理能提高植酸酶活性。

    圖2 氯化鹽處理綠豆芽菜第4天植酸含量變化Fig.2 Changes in phytic acid content on the 4thday with different chlorate treatments

    由圖2可知,發(fā)芽至第4天,KCl處理綠豆芽菜中植酸含量顯著高于對(duì)照,而NaCl、CaCl2處理綠豆芽菜中植酸含量顯著低于對(duì)照(P<0.05),分別為對(duì)照的70.77% 和49.22%。由此可見(jiàn),這3 種氯化鹽對(duì)植酸降解作用不同,KCl可抑制植酸降解,NaCl和CaCl2處理能顯著促進(jìn)植酸降解。

    2.3 不同濃度CaCl2處理綠豆芽菜中植酸酶活性和植酸含量變化

    表3 不同濃度CaCl2處理綠豆芽菜中植酸酶活性Table3 Changes in phytase activity with CaCl2treatment at different concentrations

    由表3可知,隨著CaCl2濃度的增加,植酸酶活性先增加再減小。6 mmol/L CaCl2處理植酸酶活性最高,第4天時(shí)比對(duì)照高68.43%(P<0.05)。

    圖3 不同濃度CaCl2處理綠豆芽菜第4天植酸含量變化Fig.3 Changes in phytic acid content on the 4thday with CaCl2treatment at different concentrations

    如圖3所示,不同濃度CaCl2處理下植酸含量均顯著低于對(duì)照,但隨著CaCl2噴淋濃度的增加,綠豆芽菜中植酸含量呈先降低后升高的趨勢(shì)。CaCl2濃度為6 mmol/L時(shí),植酸含量最低,僅為對(duì)照的19.21%(P<0.05)。

    2.4 不同濃度NaCl處理綠豆芽菜中植酸酶活性及植酸含量變化

    表4 不同濃度NaCl處理綠豆芽菜中植酸酶活性Table4 Changes in phytase activity with NaCl treatment at different concentrations

    由表4可知,不同濃度NaCl處理對(duì)植酸酶活性的影響相似,即隨著NaCl濃度的升高,植酸酶活性先增大后減小。其中,1.6 mmol/L NaCl處理下植酸酶活性最高(P<0.05),而其他濃度NaCl處理下植酸酶活性時(shí)與對(duì)照無(wú)顯著性差異,甚至低于對(duì)照。

    圖4 不同濃度NaCl處理綠豆芽菜第4天植酸含量變化Fig.4 Changes in phytic acid content on the 4thday with NaCl treatment at different concentrations

    如圖4所示,隨著NaCl濃度的增加,綠豆芽菜中植酸含量呈先降低再升高的趨勢(shì),0.8、1.6、3.2 mmol/L NaCl處理下中植酸含量與對(duì)照相比均有顯著降低,分別為對(duì)照的83.41%、47.86%、63.13%;其中1.6 mmol/L NaCl處理綠豆芽菜植酸含量最低(P<0.05)。結(jié)合植酸酶活性測(cè)定結(jié)果,1.6 mmol/L的NaCl有效促進(jìn)植酸降解。

    2.5 NaCl聯(lián)合CaCl2處理綠豆芽菜中植酸酶活性及植酸含量變化

    表5 NaCl聯(lián)合CaCl2處理綠豆芽菜中植酸酶活性Table5 Changes in phytase activity with combined treatment of NaCl and CaCl2

    由表5可知,NaCl聯(lián)合CaCl2處理下植酸酶的活性最高,發(fā)芽2、4 d相對(duì)于對(duì)照分別提高了54.41%和70.87%。CaCl2噴淋下植酸酶活性高于NaCl處理,去離子水噴淋酶活性最低。

    圖5 NaCl聯(lián)合CaCl2處理綠豆芽菜第4天植酸含量變化Fig.5 Changes in phytic acid content on the 4thday with combined treatment of NaCl and CaCl2

    圖5顯示,NaCl聯(lián)合CaCl2處理下綠豆中芽菜植酸含量顯著低于NaCl、CaCl2單獨(dú)處理和對(duì)照(P<0.05),分別為NaCl、CaCl2和對(duì)照處理下的25.01%、54.87%和13.25%。CaCl2噴淋促進(jìn)植酸降解的效果要優(yōu)于NaCl噴淋,但植酸含量均顯著低于對(duì)照(P<0.05)。因而推測(cè)NaCl和CaCl2具有協(xié)同作用以增強(qiáng)綠豆芽菜中植酸酶活性并降低植酸含量。

    2.6 NaCl聯(lián)合CaCl2處理試驗(yàn)結(jié)果

    表6 NaCl聯(lián)合CaCl2處理Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table6 Box-Behnken design with experimental data for combined treatment of NaCl and CaCl2

    表7 回歸模型方差分析Table7 Analysis of variance of the regression model

    圖6 NaCl與CaCl2的交互作用對(duì)植酸含量影響的響應(yīng)面圖Fig.6 Interaction effect of NaCl and CaCl2on phytic acid content

    用Design-Exper軟件設(shè)計(jì)兩因素三水平試驗(yàn),根據(jù)設(shè)計(jì)進(jìn)行試驗(yàn),并得到相應(yīng)結(jié)果如表6所示。對(duì)Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行方差分析見(jiàn)表7,利用Design-Expert 8.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元二次回歸擬合得到植酸含量Y對(duì)編碼自變量NaCl濃度(A)、CaCl2濃度(B)的二次多項(xiàng)回歸方程為:

    Y=170.066 1-166.750 0A-0.703 3B+4.368 75AB+ 47.239 58A2+0.315 83B2

    由表7回歸模型方差分析可以看出FM=13.45,P<0.028 8,模型顯著。A、B、AB、A2、B2項(xiàng)P<0.05,影響顯著。Design-Expert 8.0軟件中Box-Behnken法計(jì)算回歸模型的調(diào)整確定系數(shù)為0.886 1,即該模型能解釋

    88.61%響應(yīng)值的變化,說(shuō)明該模型擬合程度良好,試驗(yàn)誤差較小,以此模型優(yōu)化NaCl聯(lián)合CaCl2處理促進(jìn)植酸降解是可行的。

    表7列出了2 種影響因素在Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)下影響植酸含量的回歸方程系數(shù)及顯著性檢驗(yàn)。結(jié)果表明NaCl濃度和CaCl2濃度的一次項(xiàng)及其二次項(xiàng)都對(duì)植酸含量有顯著性影響(P<0.05)。同時(shí)NaCl濃度和CaCl2濃度的交互作用影響顯著(P<0.05)。

    由圖6可知,當(dāng)CaCl2濃度一定時(shí),NaCl濃度在1.2~2.0 mmol/L范圍內(nèi)增大時(shí),曲線較陡,植酸含量在1.6 mmol/L左右達(dá)到最小值后就開(kāi)始上升;當(dāng)NaCl濃度一定時(shí),CaCl2濃度在4~8 mmol/L范圍內(nèi)增大時(shí),曲線變化較陡,在6 mmol/L附近時(shí),植酸含量達(dá)到最小值,達(dá)到極值后開(kāi)始緩慢上升。響應(yīng)曲面坡度反映響應(yīng)值對(duì)因素變化的敏感性,等高線的形狀可反映出交互作用的強(qiáng)弱[15]。從圖6可以看出,NaCl濃度和CaCl2濃度之間交互作用影響顯著。

    對(duì)模型方程進(jìn)行典型性分析,結(jié)果表明,模型具有穩(wěn)定點(diǎn),穩(wěn)定點(diǎn)為其最小值。模型給出的最優(yōu)組合為NaCl濃度1.68 mmol/L,CaCl2濃度6.40 mmol/L,再此條件下預(yù)測(cè)植酸最低含量為8.47 μg/株。為了證明模型預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,在給出最優(yōu)條件下進(jìn)行了3 次平行的重復(fù)性實(shí)驗(yàn),植酸含量均值為8.04 μg/株。這說(shuō)明模型方程可信度較高,實(shí)驗(yàn)值與預(yù)測(cè)值基本相符,能夠很好地預(yù)測(cè)實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

    3 討 論

    綠豆籽粒發(fā)芽初始階段,吸水膨脹,進(jìn)入萌芽狀態(tài);分解蛋白質(zhì)、脂肪等有機(jī)物為其萌芽生長(zhǎng)提供充足能量,同時(shí)也會(huì)分解植酸為以獲得充足的磷元素,表現(xiàn)為芽長(zhǎng)和株質(zhì)量迅速上升[16]。本研究發(fā)現(xiàn)外源鹽處理會(huì)影響綠豆芽菜的生長(zhǎng),在2 mmol/L濃度下,KCl、NaCl和CaCl23 種氯化鹽處理均促進(jìn)了綠豆芽菜的生長(zhǎng),其中以CaCl2的促進(jìn)效果最為顯著,NaCl次之,這與梁帥克等[17]對(duì)苜蓿幼苗的研究一致。

    綠豆籽粒萌發(fā)后,內(nèi)源植酸酶被激活,植酸在其內(nèi)源植酸酶的催化下降解為低級(jí)肌醇磷酸[18]。植酸酶作為一種活性蛋白,會(huì)被不同種類的無(wú)機(jī)鹽激活或抑制[19],從而影響植酸降解。本研究中,在2 mmol/L濃度下,KCl顯著抑制了植酸酶的活性,導(dǎo)致芽苗中植酸含量高于對(duì)照。有研究報(bào)道,NaCl脅迫可導(dǎo)致大麥苗植酸酶活性提高[10],也可使小麥苗植酸酶基因[7]和大豆紫色酸性磷酸酶基因PAP基因[20]上調(diào),從而提高植酸降解量。本研究中NaCl可顯著提高綠豆芽菜中植酸酶活性,促進(jìn)植酸降解,與上述研究結(jié)果一致。Ca2+是多種酶的激活劑,Reddy等[12]研究發(fā)現(xiàn),Ca2+可激活β-螺旋植酸酶。還有研究報(bào)道,Ca2+能夠?qū)е聰M南芥[21]、煙草[22]中植酸酶基因表達(dá)上調(diào),從而表現(xiàn)出高的植酸酶活性。此外,植酸降解的另一條途徑磷酸肌醇特異性磷脂酶C途徑中的關(guān)鍵酶特異性磷脂酰肌醇磷脂酶C也受到鈣離子調(diào)控[23]。本研究實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,CaCl2顯著提高了植酸酶活性,與上述研究結(jié)果一致,且促進(jìn)植酸降解的作用優(yōu)于NaCl。NaCl和CaCl2主要在第4天提高了植酸酶活性,而第4天芽苗中植酸含量卻顯著低于對(duì)照,可能因?yàn)橹菜崦富钚苑从车氖悄骋粫r(shí)刻植酸酶的降解能力,而植酸降解量是在各個(gè)時(shí)刻植酸酶的催化下逐步累積的。

    NaCl和CaCl2單因素試驗(yàn)結(jié)果表明,不同濃度氯化鹽處理對(duì)綠豆芽菜植酸降解的影響不同,濃度過(guò)低其降植酸效果與對(duì)照相比不顯著,濃度過(guò)高則可能因?yàn)閷?duì)植株造成嚴(yán)重脅迫而影響正常生長(zhǎng)和酶活,從而無(wú)法促進(jìn)甚至抑制植酸降解。這可能是由于高濃度NaCl會(huì)使植物細(xì)胞內(nèi)滲透壓增加,阻礙其正常生長(zhǎng)代謝活動(dòng)[24]。有研究表明,高濃度的鹽會(huì)抑制大麥的萌發(fā),使得植酸降解的產(chǎn)物無(wú)機(jī)磷在大麥中積累,從而抑制植酸酶的活性[10]。Ca2+濃度過(guò)高則會(huì)導(dǎo)致多余Ca2+與植酸形成植酸-Ca或Ca-植酸-蛋白質(zhì)復(fù)合物,競(jìng)爭(zhēng)酶的活性中心位點(diǎn)而影響植酸酶的活性從而降低植酸酶的作用[25]。因此NaCl 和CaCl2促進(jìn)植酸降解的作用隨濃度的升高呈先增大再降低的趨勢(shì)。本研究綜合不同濃度NaCl和CaCl2對(duì)植酸酶活性和植酸含量的影響,獲得最優(yōu)濃度為1.6 mmol/L NaCl和6 mmol/L CaCl2。

    NaCl和CaCl2分別提高了植酸酶的活性,且均有促進(jìn)植酸降解的作用,推測(cè)二者的作用可能存在疊加效應(yīng)。本研究結(jié)果也印證了該推測(cè),并經(jīng)響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化出NaCl聯(lián)合CaCl2處理最優(yōu)濃度分別為1.68 mmol/L和6.40 mmol/L,經(jīng)驗(yàn)證可靠。

    4 結(jié) 論

    不同的氯化鹽對(duì)綠豆芽菜中植酸降解的影響不同,2 mmol/L濃度下,KCl可抑制而NaCl和CaCl2可促進(jìn)植酸降解;且CaCl2降植酸效果顯著優(yōu)于NaCl。

    不同濃度的NaCl、CaCl2對(duì)植酸降解的影響不同,NaCl和CaCl2促進(jìn)植酸降解的最優(yōu)濃度分別為1.6 mmol/L 和6 mmol/L,且二者對(duì)植酸降解的促進(jìn)作用有疊加效果,經(jīng)優(yōu)化后聯(lián)合處理的濃度分別為1.68 mmol/L和6.40 mmol/L,驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn)證實(shí)該優(yōu)化濃度可靠。

    [1] 張海均, 賈冬英, 姚開(kāi). 綠豆的營(yíng)養(yǎng)與保健功能研究進(jìn)展[J]. 食品與發(fā)酵科技, 2012, 38(1): 7-10. DOI:10.3969/j.issn.1674-506X.2012.01-002.

    [2] 紀(jì)花, 陳錦屏, 盧大新. 綠豆的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值及綜合利用[J]. 現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2006(10): 143-144. DOI:10.13241/j.cnki.pmb.2006.10.049.

    [3] 李興林. 種子植酸及其低植酸作物品種選育的研究進(jìn)展[J]. 種子, 2006, 25(12): 51-53. DOI:10.3969/j.issn.1001-4705.2006.12.015.

    [4] 陳紅霞. 植酸的生物學(xué)特性與應(yīng)用[J]. 生物學(xué)通報(bào), 2006(2): 14-16. DOI:10.3969/j.issn.0006-3193.2006.02.007.

    [5] KUMAR, V, SINHA A K, MAKKAR H P S, et al. Dietary roles of phytate and phytase in human nutrition: a review[J]. Food Chemistry, 2010, 120(4): 945-959. DOI:10.1016/j.foodchem.2009.11.052.

    [6] 王新坤, 仲磊, 楊潤(rùn)強(qiáng), 等. 植物籽粒中植酸及其降解方法與產(chǎn)物研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2014, 35(3): 301-306. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201403059.

    [7] 靳曉琳, 王新坤, 楊潤(rùn)強(qiáng), 等. 高等植物體中植酸合成、代謝及其生理作用[J]. 植物生理學(xué)報(bào), 2014, 50(6): 711-716. DOI:10.13592/j.cnki. ppj.2014.0048.

    [8] 江洪. 三磷酸肌醇的制備及其生物活性的研究[D]. 武漢: 華中農(nóng)業(yè)大學(xué), 2005.

    [9] GUO C, GUO L, LI X, et al. Transcriptional regulation of the rice phytase gene OsPHY1 by several phytohormones and osmotic stresses using promoter-GUS analysis[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 2013, 31(6): 1461-1473. DOI:10.1007/s11105-013-0615-y.

    [10] 郭建華, 趙長(zhǎng)新, 李林勇, 等. 鹽脅迫對(duì)大麥發(fā)芽時(shí)植酸酶活性和無(wú)機(jī)磷代謝的影響[J]. 中國(guó)釀造, 2006, 25(4): 14-17. DOI:10.3969/ j.issn.0254-5071.2006.04.004.

    [11] BARRIENTOS L, SCOTT J J, MURTHY P P. Specificity of hydrolysis of phytic acid by alkaline phytase from lily pollen[J]. Plant Physiology, 1994, 106(4): 1489-1495. DOI:10.1104/pp.106.4.1489.

    [12] REDDY V S, REDDY A S N. Proteomics of calcium: signaling components in plants[J]. ChemInform, 2004, 35(43): 1745-1776. DOI:10.1002/chin.200443272.

    [13] 劉娜, 李靜, 柳鴻敏, 等. 玉米子粒植酸酶活性測(cè)定方法研究[J]. 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2012(1): 71-75. DOI:10.13327/j.jjlau.2012.01.017.

    [14] 胡遠(yuǎn)富, 王澤奇, 施君信, 等. 氯化鈣對(duì)大豆生長(zhǎng)發(fā)育及抗逆性的促進(jìn)效應(yīng)研究[J]. 黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào), 2007(3): 39-42. DOI:10.3969/j.issn.1002-2090.2007.03.010.

    [15] 周彬, 華渤文, 周勝德, 等. 琥珀酸放線桿菌發(fā)酵產(chǎn)琥珀酸的優(yōu)化[J].食品與發(fā)酵科技, 2012, 48(3): 18-21. DOI:10.3969/j.issn.1674-506X.2012.03-005.

    [16] 張紅香. 種子發(fā)芽生態(tài)研究[D]. 吉林: 東北師范大學(xué), 2008.

    [17] 梁帥克, 樊宏, 張文明, 等. 無(wú)機(jī)鹽溶液引發(fā)對(duì)紫花苜蓿種子活力及幼苗抗逆性的影響[J]. 草原與草坪, 2010(3): 61-65. DOI:10.13817/ j.cnki.cyycp.2010.03.005.

    [18] 趙寧春, 程方民, 張小明, 等. 作物種子中植酸代謝及其相關(guān)酶的研究進(jìn)展[J]. 作物雜志, 2008(5): 10-13. DOI:10.16035/ j.issn.1001-7283.2008.05.006.

    [19] 曹志華, 羅靜波. 發(fā)芽、發(fā)酵對(duì)小麥植酸酶活性的影響[J]. 長(zhǎng)江大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2014(23): 42-44. DOI:10.3969/j.issn.1673-1409(s).2014.08.013.

    [20] LI W Y F, SHAO G, LAM H M. Ectopic expression of GmPAP3 alleviates oxidative damage caused by salinity and osmotic stresses[J]. New Phytologist, 2008, 178(1): 80-91. DOI:10.1111/j.1469-8137.2007.02356.x.

    [21] TRIPATHY M K, TYAGI W, GOSWAMI M, et al. Characterization and functional validation of tobacco PLC delta for abiotic stress tolerance[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 2012, 30(2): 488-497. DOI:10.1007/s11105-011-0360-z.

    [22] NOVOTNA, Z, VALENTOVA O, MARTINEC J, et al. Study of phospholipases D and C in maturing and germinating seeds of Brassica napus[J]. Biochemical Society Transactions, 2000, 28(6): 817-818. DOI:10.1042/bst0280817.

    [23] HIRAYAMA, T, OHTO C, MIZOGUCHI T, et al. A gene encoding a phosphatidylinositol-specific phospholipase C is induced by dehydration and salt stress in Arabidopsis thaliana[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1995, 92(9): 3903-3907. DOI:10.1073/pnas.92.9.3903.

    [24] 檀龍顏. 油菜(Brassica napus)種子萌發(fā)響應(yīng)NaCl脅迫的生理學(xué)與蛋白質(zhì)組學(xué)研究[D]. 哈爾濱: 東北林業(yè)大學(xué), 2014.

    [25] 祁艷霞, 陳玉林. 植酸酶的作用機(jī)理及影響植酸酶活性的因素[J]. 飼料博覽, 2004(7): 10-12. DOI:10.3969/j.issn.1001-0084.2004.07.004.

    Effects of Chlorate Treatments on Phytic Acid Degradation in Germinated Mung Beans

    YAN Xiaokun, JIN Xiaolin, YANG Runqiang, GU Zhenxin*
    (College of Food Science and Technology, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China)

    The objective of this study was to reduce the phytic acid content in germinated mung bean (Vigna radiata (Linn.) Wilczek). The effects of three chlorizated salts on phytic acid degradation were investigated. The growth performance, phytase activity and phytic acid content were studied in germinated mung bean sprouts treated with KCl, NaCl and CaCl2(2 mmol/L), respectively. The phytase activity and phytic acid content were used to screen the optimal concentrations of chlorizated salts, which have function in reducing phytic acid content. The results showed that all three chlorated salts could promote the growth of germinated mung bean and both NaCl and CaCl2reduced phytic acid content. NaCl at 1.6 mmol/L and CaCl2at 6 mmol/L had the best effects on phytic acid degradation. Furthermore, a synergistic effect was found between NaCl and CaCl2, the optimal combination determined by response surface analysis were 1.68 mmol/L NaCl and 6.40 mmol/L CaCl2. Under this condition, the phytic acid content was reduced to 8.04 μg/plant, which was 10.84% of the control.

    geminated mung bean; chlorizated salt; phytase; phytic acid degradation

    10.7506/spkx1002-6630-201622002

    TS255.1

    A

    1002-6630(2016)22-0007-06

    閆曉坤, 靳曉琳, 楊潤(rùn)強(qiáng), 等. 氯化鹽處理對(duì)綠豆芽菜植酸降解的影響[J]. 食品科學(xué), 2016, 37(22): 7-12. DOI:10.7506/ spkx1002-6630-201622002. http://www.spkx.net.cn

    YAN Xiaokun, JIN Xiaolin, YANG Runqiang, et al. Effects of chlorate treatments on phytic acid degradation in germinated mung beans[J]. Food Science, 2016, 37(22): 7-12. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201622002. http://www.spkx.net.cn

    2016-01-13

    國(guó)家自然科學(xué)基金面上項(xiàng)目(31471596)

    閆曉坤(1991—),女,碩士研究生,研究方向?yàn)檗r(nóng)產(chǎn)品貯藏加工。E-mail:2014108023@njau.edu.cn

    *通信作者:顧振新(1956—),男,教授,博士,研究方向?yàn)檗r(nóng)產(chǎn)品加工及貯藏。E-mail:guzx@jau.edu.cn

    猜你喜歡
    綠豆芽植酸酶植酸
    壓力處理對(duì)綠豆芽生長(zhǎng)的影響
    非反芻動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)中的植酸酶:胃腸道植酸酶活性及其影響因素(續(xù)2)
    非反芻動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)中的植酸酶:胃腸道植酸酶活性及其影響因素
    豆芽芹菜治結(jié)石
    飲食保健(2020年14期)2020-12-05 02:16:28
    植酸酶在蛋雞生產(chǎn)應(yīng)用
    我的發(fā)現(xiàn)
    綠豆芽的成長(zhǎng)
    飼料中植酸的抗?fàn)I養(yǎng)作用
    超量使用植酸酶時(shí)所需的關(guān)鍵特性
    β-螺旋槳植酸酶的金屬離子依賴性
    昭觉县| 和林格尔县| 广汉市| 通化县| 四川省| 武乡县| 惠州市| 乌鲁木齐县| 汉源县| 深泽县| 东安县| 高雄市| 抚宁县| 叙永县| 安化县| 平乡县| 台中县| 贺州市| 星座| 客服| 富川| 城固县| 腾冲县| 营山县| 济南市| 丰原市| 东源县| 岳阳县| 江永县| 博客| 青田县| 正定县| 永平县| 招远市| 通州区| 遂宁市| 子洲县| 潜山县| 宜良县| 伊春市| 瑞丽市|