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    氯苯胺靈對馬鈴薯還原糖、膜穩(wěn)定指數(shù)的影響

    2016-11-28 15:38:58唐世明曹君邁
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年9期
    關(guān)鍵詞:馬鈴薯

    唐世明+曹君邁

    摘要:以馬鈴薯青薯168、克新1號2個品種的塊莖為材料,采用蒽酮比色定糖法和羥胺法,研究2個品種在4 ℃的貯藏條件下,不同濃度梯度的氯苯胺靈處理下糖對和膜穩(wěn)定指數(shù)的影響。結(jié)果表明:4 ℃貯藏下,氯苯胺靈對馬鈴薯具有抑芽作用,抑芽作用與施加的氯苯胺靈濃度有關(guān),施加的濃度在2.0 g/kg時,抑芽作用最明顯,氯苯胺靈對克新1號和青薯168的抑芽效果一致。馬鈴薯貯藏期,含糖量隨時間的延長,呈先上升再下降的趨勢,青薯168的含糖量顯著優(yōu)于克新1號的含糖量,克新1號抗低溫糖化能力更強,有利于長期貯藏。施加氯苯胺靈后馬鈴薯的含糖量高于對照組的含糖量,處理濃度為1.5 g/kg CIPC處理組的含糖量最高,1.0 g/kg處理組的含糖量最低,馬鈴薯在氯苯胺靈濃度為1.0 g/kg下更有利于貯藏。馬鈴薯貯藏期,膜穩(wěn)定性先升高后降低,克新1號的膜穩(wěn)定性高于青薯168,氯苯胺靈處理降低了馬鈴薯的膜穩(wěn)定指數(shù),克新1號和青薯168的氧自由基的產(chǎn)生速率均為2.0 g/kg CIPC組達到最高,膜穩(wěn)定性最差,濃度為1.0 g/kg處理組氧自由基的產(chǎn)生速率最低,膜穩(wěn)定性最好。

    關(guān)鍵詞:馬鈴薯;氯苯胺靈;還原糖;膜穩(wěn)定指數(shù)

    中圖分類號: TS205 文獻標志碼: A

    文章編號:1002-1302(2016)09-0297-04

    馬鈴薯是茄科茄屬一年生雙子葉植物,以塊莖作為食用器官,是總產(chǎn)量和栽培面積僅次于小麥、玉米、水稻的世界第四大糧食作物,為最重要的糧、菜兼用性高產(chǎn)作物之一[1],同時馬鈴薯為我國的農(nóng)業(yè)發(fā)展、農(nóng)民增收及國家糧食安全作出了巨大貢獻[2],2015年已被我國加入到主糧化戰(zhàn)略。馬鈴薯成為具有國際競爭力的產(chǎn)品,而馬鈴薯貯藏已成為重要的研究課題之一[3]。馬鈴薯能否成功貯藏,直接影響產(chǎn)品的經(jīng)濟效益。然而,馬鈴薯貯藏期間失水、傷、熱、冷、凍、發(fā)芽及病害的發(fā)生[4]所引起的薯塊品質(zhì)下降現(xiàn)象非常普遍,是貨架期延長和產(chǎn)業(yè)優(yōu)化的主要瓶頸,尤其發(fā)芽會導(dǎo)致塊莖失水皺縮,淀粉、干物質(zhì)、維C含量的降低,嚴重影響馬鈴薯的品質(zhì);發(fā)芽部位所含的龍葵素含量上升,食用過多會導(dǎo)致嘔吐、腹瀉,嚴重者會出現(xiàn)呼吸不暢、神經(jīng)麻痹、休克等癥狀。因此,在貯藏過程中,使用抑芽劑延緩塊莖發(fā)芽是一項較為有效的措施。為了提高馬鈴薯的貯藏效果,提高產(chǎn)品的經(jīng)濟效益,人們開展了抑芽劑的研究工作,認為氯苯胺靈是馬鈴薯貯藏的有效抑芽劑[5]。氯苯胺靈因其具有高活性和高揮發(fā)性,廣泛用作馬鈴薯的抑芽劑(chlorpropham,簡稱為CIPC),是一種芳香氨基甲酯類植物生長調(diào)節(jié)劑[6]。有研究表明,1 t馬鈴薯撒施2.5%氯苯胺靈粉劑,對塊莖貯藏最為適宜,其對頂芽萌發(fā)具有明顯抑制的有效期為30~60 d[7]。常見的赤褐色的伯班克馬鈴薯在使用足量的氯苯胺靈后,7.2 ℃ 條件下可貯藏10個月,其質(zhì)量完好[8]。1951年Witman等報道,每天以含氯苯胺靈2 000 mg/kg的飼料喂養(yǎng)大鼠,2年無不良影響[9]。李守強等指出,美國FDA和EPA在1996年公布,氯苯胺靈在馬鈴薯薯塊中的允許殘留量為30 mg/kg[10],與ISABELLA用30 mg/kg 氯苯胺靈熱霧式噴灑法處理相吻合[11]。關(guān)于氯苯胺靈對貯藏馬鈴薯各項生理指標的研究已有報道,他們主要研究了隴薯3號、隴薯7號、大西洋和費烏瑞的眾多生理指標[6,12-13],其中包括了本試驗中研究的可溶性糖,而我們研究品種為克新1號和青薯168,且關(guān)于膜穩(wěn)定指數(shù)的研究還無人進行,此結(jié)果將對我國馬鈴薯貯藏生理指標研究內(nèi)容的充實具有重要的意義,對馬鈴薯的科學(xué)貯藏提供參考依據(jù)。

    盡管如此,消費者對薯塊油炸加工過程中色澤問題也是十分關(guān)注,低溫糖化現(xiàn)象對其具有決定性作用。王彥平等指出還原糖與含氮化合物的α-氨基酸進行化學(xué)反應(yīng),使薯片、薯條表面顏色加深為棕褐色,不受消費者歡迎[14]。因此,在延長馬鈴薯貯藏期時兼顧還原糖含量與膜穩(wěn)定指數(shù)的高低是不可忽視的。本研究以采自寧夏固原天啟薯業(yè)種植的克新1號、青薯168為材料,研究馬鈴薯4 ℃貯藏過程中薯塊在不同氯苯胺靈濃度下的發(fā)芽情況、膜穩(wěn)指數(shù)及還原糖含量的變化。以期篩選出最佳的氯苯胺靈施用濃度,為該品種馬鈴薯貯藏、加工以及提升貯藏品質(zhì)提供參考依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 供試材料

    經(jīng)窖藏兩個月的克新1號和青薯168馬鈴薯品種為實驗材料,抑芽劑為CIPC 粉劑(99%)。

    1.2 材料處理

    供試材料為固原天啟薯業(yè)有限公司統(tǒng)一種植,于10月15日收獲的馬鈴薯塊莖。收獲后,常溫遮陰通風(fēng)處預(yù)貯2周,完成馬鈴薯后熟。挑去腐爛、受傷的塊莖,轉(zhuǎn)入貯藏窖常規(guī)貯藏2個月。12月30日每個品種樣品80~100 g 的薯塊挑選80個。將薯塊洗凈晾干,平均分為4份,其中1份為對照組(CK),其余3份分別用1.0、1.5、2.0 g/kg氯苯胺靈處理,密封,保存在4 ℃冰箱。

    1.3 取樣方法及實驗設(shè)計

    將處理樣品每隔15 d觀察1次,于處理后115 d對照開始萌芽進行記錄,以后每隔15 d記錄萌芽數(shù),共4次,每個處理重復(fù)測定3次。還原糖含量、膜穩(wěn)定指數(shù)測定于處理后的102 d開始,以后每隔15 d測定1次,共5次,每個處理重復(fù)測定3次。每次測定時每個處理各取出3個馬鈴薯塊莖,其余密封好后繼續(xù)保存在4 ℃冰箱。

    試驗采用單因素隨機區(qū)組設(shè)計,4個處理,3次重復(fù)。

    1.4 測定方法

    1.4.1 萌芽率、抑芽率測定 對馬鈴薯萌芽率、抑芽率采用陳億兵等的測定方法[7]進行測定,公式如下:

    萌發(fā)率=萌發(fā)芽眼數(shù)調(diào)查總芽眼×100%;

    抑芽率=對照萌發(fā)率-處理萌發(fā)率對照萌發(fā)率×100%。

    1.4.2 還原糖含量的測定 還原糖含量的測定采用蒽酮比色定糖法[15]進行。樣品溶液中加入5 mL蒽酮試劑,混勻,蓋上塞子,在沸水浴中煮沸10 min,取出,立即用水冷卻至室溫,在625 nm下比色,測定出樣品的D625 nm,代入以吸光度為縱坐標(y),標準溶液濃度為橫坐標(x)的可溶性糖回歸方程:y=0.522 3x+0.000 4,其中r2=0.998 8,求得樣品含糖量。

    1.4.3 膜穩(wěn)定指數(shù)的測定 膜穩(wěn)定指數(shù)的測定采用羥胺法[15] 進行。樣品溶液加入0.5 mL 50 mmol/L 磷酸緩沖液(pH值7.8),1.5 mL 1 mmol/L鹽酸羥胺,搖勻,置于25 ℃中保溫1 h,然后再加入17 mmol/L對氨基苯磺酸2 mL和7 mmol/L α-萘胺2 mL,混合,于25 ℃中保溫20 min后取出,在波長530 nm下比色,測定樣品的D530 nm,代入以吸光值為縱坐標(y),橫坐標為亞硝酸含量(x)的亞硝酸根回歸方程:y=0.007 8x+0.002 4,其中R2=0.996 5,求得NO2-含量。依照羥胺與O-2· 的反應(yīng)式:NH2OH+O-2· +H+,NO2-+H2O2+H2O進行化學(xué)計量,得到O-2· 。根據(jù)記錄樣品與羥胺反應(yīng)的時間和樣品中鮮質(zhì)量,可求出產(chǎn)生速率。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同氯苯胺靈濃度對馬鈴薯塊莖萌芽及抑芽的影響

    對不同濃度氯苯胺靈處理的克新1號、青薯168的不同貯藏時間萌發(fā)率、抑芽率分別進行統(tǒng)計學(xué)分析,其結(jié)果見表1??诵?號、青薯168同一貯藏時間不同濃度氯苯胺靈處理間有塊莖萌芽情況下,萌芽率均達顯著水平(P<0.05)。克新1號除115、130 d抑芽率未達顯著水平,其余均達顯著水平(P<0.05);青薯168除115 d抑芽率未達顯著水平,其余均達顯著水平(P<0.05)。

    藥劑處理后4 ℃儲藏115 d時,2個品種CK萌動發(fā)芽,萌芽率顯著高于處理組,各處理組萌芽率差異不顯著,其抑芽率均為100%。儲藏130 d時,克新1號萌芽率、抑芽率表現(xiàn)規(guī)律與115 d相同;青薯168 CK萌芽率顯著高于處理組,其值為28%;1 g/kg處理組的萌芽率顯著高于其他2個處理,其余2個處理之間差異不顯著,1 g/kg處理組的抑芽率顯著低于其他2個處理,其余2個處理之間差異不顯著,1.5、2.0 g/kg 抑芽率均達100.0%。儲藏145 d時,克新1號對照組萌芽率顯著高于處理組,萌芽率為45.30%,1 g/kg處理組的萌芽率顯著高于其他2個處理,其余2個處理之間差異不顯著,1 g/kg處理組的抑芽率顯著低于其他2個處理,其余2個處理之間差異不顯著,1.5、2.0 g/kg抑芽率均達100.0%;青薯168對照組萌芽率與各處理組之間均存在顯著差異。各處理組抑芽率之間均存在差異顯著,2 g/kg處理組的抑芽率高達100.0%。儲藏160 d時,克新1號對照組萌芽率與各處理組之間均存在顯著差異;各處理組抑芽率之間均存在顯著差異,2 g/kg處理組的抑芽率為88.05%;青薯168與克新1號表現(xiàn)規(guī)律相同,2 g/kg處理組的抑芽率為79.03%。由此得出,克新1號比青薯168易貯藏。

    2.2 品種對糖和氧自由基的的影響

    由表2可以看出,貯藏期間2個品種的馬鈴薯中可溶性糖含量存在顯著差異,青薯168的含糖量顯著高于克新1號,青薯168抗低溫糖化能力低于克新1號。2個品種氧自由基的產(chǎn)生速率不明顯,克新1號的膜穩(wěn)定性略比青薯168的好。由此得出,克新1號抗逆性高于青薯168,更有利于貯藏。

    2.3 貯藏時間對糖和氧自由基產(chǎn)生速率的影響表1 氯苯胺靈粉劑對馬鈴薯塊莖貯藏效果的影響

    由表3可以看出,馬鈴薯塊莖的含糖量隨貯藏時間的推移先上升后下降,2個品種表現(xiàn)出相同的變化趨勢,并在154 d 含糖量達到最高值,克新1號為0.39 mg/mL,青薯168為1.34 mg/mL,隨后下降,但變化幅度不同。青薯168的含糖量始終高于克新1號的含糖量。結(jié)果表明,氧自由基的產(chǎn)生速率也隨貯藏時間的延長呈較顯著變化,均表現(xiàn)為先降低后升高,青薯168則出現(xiàn)了2次下降后升高趨勢。低值出現(xiàn)在132、147d。說明膜穩(wěn)定指數(shù)先升高后降低。

    2.4 不同CIPC濃度處理對糖和氧自由基的產(chǎn)生速率的影響

    不同濃度CIPC處理的馬鈴薯與對照組對比發(fā)現(xiàn)其差異性不顯著,其含糖量略高于對照組,對照組馬鈴薯塊莖含糖量在132 d 達到最高值,而處理含糖量的最高值出現(xiàn)在147 d,然后下降。濃度為2.0 g/kg CIPC處理組的含糖量隨著時間的變化出現(xiàn)2次峰值,濃度為1.5 g/kg CIPC處理組的含糖量最高。對照組氧自由基的產(chǎn)生速率低于CIPC 處理組,對照組氧自由基的產(chǎn)生速率在154 d達到最低值,處理組在第132天達到最低值,2.0 g/kg CIPC處理組的氧自由基產(chǎn)生速率最高(表4)。說明,1.0 g/kg CIPC處理組比其他2個處理組的含糖量都低,膜穩(wěn)定性都好,為最佳貯藏濃度。不同濃度CIPC對低溫貯藏馬鈴薯的含糖量和膜穩(wěn)定性影響差異并不大,則氯苯胺靈可較持久地維持馬鈴薯的品質(zhì),是馬鈴薯優(yōu)良的抑芽保鮮劑。

    3 結(jié)論與討論

    3.1 討論

    本試驗結(jié)果表明,氯苯胺靈對馬鈴薯具有抑芽作用,抑芽效果明顯,窖藏60 d后低溫(4 ℃)貯藏的馬鈴薯,在85 d空白組和處理組均沒有萌芽,還處于休眠時期,克新1號在123 d 對照組開始萌芽,青薯168在115 d開始萌芽,而經(jīng)過氯苯胺靈處理的馬鈴薯均沒有萌芽跡象,在138 d濃度為1.0 g/kg CIPC開始萌芽,經(jīng)過1 g/kg CIPC 處理的青薯168在129 d發(fā)芽,CIPC 對馬鈴薯的抑芽作用因施加的濃度不同而不同,濃度為2.0 g/kg CIPC,其抑芽效果明顯,其結(jié)果與文獻報道2.0%氯苯胺靈粉劑對馬鈴薯儲藏期保持品質(zhì)有較好的作用[7]一致。氯苯胺靈對克新1號和青薯168的抑芽作用一致。

    在馬鈴薯貯藏期,含糖量隨時間的延長呈先上升再下降的趨勢,其結(jié)果與文獻報道的在貯藏前期,還原糖含量升高,到120 d時達到最高,后期又有所下降[12]一致。2個品種都有相同的趨勢,而2個品種的含糖量不同,青薯168的含糖量顯著優(yōu)于克新1號的含糖量,其可溶性糖的轉(zhuǎn)化能力強,不利于長期貯藏。施加氯苯胺靈以后馬鈴薯的含糖量高于空白組的含糖量,處理濃度為1.5 g/kg CIPC處理組的含糖量最高,1.0 g/kg 處理組的含糖量最低,處理在147、162 d達顯著差異,即氯苯胺靈處理的馬鈴薯在1.0 g/kg處理組可溶性糖的轉(zhuǎn)化相比其他組要弱,抑制效果顯著。馬鈴薯低溫糖化本質(zhì)上是塊莖細胞抵御低溫的有效機制,低溫條件下馬鈴薯塊莖細胞中還原糖的積累是一種抗逆反應(yīng)的表現(xiàn)。目前,低溫糖化生理生化機制已經(jīng)作了比較全面的研究,可分為3個方面:(1)低溫打破了塊莖內(nèi)淀粉-糖代謝的平衡,導(dǎo)致蔗糖在塊莖中累積,蔗糖又進一步轉(zhuǎn)化為葡萄糖和果糖所致[16],這主要由于淀粉合成關(guān)鍵酶活性下降,淀粉分解酶活性上升。如腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶(AGPase)作為植物淀粉合成的一個重要調(diào)節(jié)和限速因子在低溫狀態(tài)時保持較低的活性,并在一定溫度范圍內(nèi)隨溫度的降低而活性降低程度加強。(2)淀粉本身結(jié)構(gòu)決定了塊莖的低溫糖化。在低溫時,由于對酶降解較敏感的支鏈淀粉的高分支度阻礙了抗酶解的結(jié)晶區(qū)形成,導(dǎo)致淀粉結(jié)構(gòu)因缺少結(jié)晶區(qū)而不穩(wěn)定,更容易被淀粉酶降解。(3)生物膜的不穩(wěn)定引起低溫糖化。冷脅迫導(dǎo)致細胞生物體膜選擇通透性功能遭到破壞,主要是液泡膜發(fā)生滲漏,使得機制內(nèi)的一些離子特別是無機磷(Pi)從液泡滲透到細胞質(zhì),最后運輸?shù)降矸垠w內(nèi),促進淀粉磷酸化酶對淀粉的降解活性增強并抑制AGPase介導(dǎo)的淀粉再合成作用,造成還原糖的積累[17]。

    馬鈴薯在貯藏期間,氧自由基的產(chǎn)生速率先降低后升高,膜穩(wěn)定性在85 d至154 d比較穩(wěn)定,154 d至162 d不穩(wěn)定??诵?號的氧自由基產(chǎn)生速率低于青薯168,即克新1號的膜穩(wěn)定性高于青薯168。青薯168出現(xiàn)了2次先下降后升高的趨勢,膜穩(wěn)定性比較差,對照處理組氧自由基的產(chǎn)生速率低于CIPC 處理組,2.0 g/kg CIPC處理組的氧自由基產(chǎn)生速率最高,克新1號和青薯168氧自由基的產(chǎn)生速率均為2.0 g/kg CIPC處理組達到最高,膜穩(wěn)定性最不穩(wěn)定,濃度為1.0 g/kg處理組氧自由基的產(chǎn)生速率最低,膜穩(wěn)定性最好。

    說明氯苯胺靈在延長貯藏期的同時,導(dǎo)致代謝平衡被打破,淀粉結(jié)構(gòu)改變及塊莖的呼吸作用被抑制,從而影響糖含量和膜穩(wěn)定指數(shù)的變化。但更多的證據(jù)還有待進一步的證明。

    3.2 結(jié)論

    4 ℃貯藏下,氯苯胺靈對馬鈴薯具有抑芽作用,抑芽作用與施加的氯苯胺靈濃度有關(guān),施加的濃度在2.0 g/kg時,抑芽作用最明顯,氯苯胺靈對克新1號和青薯168的抑芽效果一致。

    馬鈴薯貯藏期,含糖量隨時間的延長呈先上升再下降的趨勢,青薯168的含糖量顯著優(yōu)于克新1號的含糖量,克新1號抗低溫糖化能力更強,有利于長期貯藏。施加氯苯胺靈后馬鈴薯的含糖量高于對照組的含糖量,處理濃度為1.5 g/kg CIPC處理組的含糖量最高,1.0 g/kg處理組的含糖量最低,馬鈴薯在氯苯胺靈濃度為1.0 g/kg下更有利于貯藏。

    馬鈴薯貯藏期,膜穩(wěn)定性先升高后降低,克新1號的膜穩(wěn)定性高于青薯168,氯苯胺靈處理降低了馬鈴薯的膜穩(wěn)定指數(shù),克新1號和青薯168的氧自由基的產(chǎn)生速率均為2.0 g/kg CIPC組達到最高,膜穩(wěn)定性最差,濃度為1.0 g/kg處理組氧自由基的產(chǎn)生速率最低,膜穩(wěn)定性最好。

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