戴 超,陶金輝,孫曉歌,方 璇,金 莉,項 楠,張 敏,厲小梅,李向培
miR326調(diào)控Ets-1表達及Th17細胞分化參與SLE發(fā)病
戴 超,陶金輝,孫曉歌,方 璇,金 莉,項 楠,張 敏,厲小梅,李向培
目的 檢測系統(tǒng)性紅斑狼瘡(SLE)患者CD4+T細胞中miR326、E26轉(zhuǎn)錄因子-1(Ets-1)表達量及Th17細胞比例,分析三者之間的相關(guān)性及與狼瘡活動度、系統(tǒng)受累情況的關(guān)聯(lián),探討SLE可能的致病機制。方法 選取符合2009年美國風(fēng)濕病學(xué)會診斷標(biāo)準的SLE患者40例,記錄臨床資料,選取無自身免疫性疾病的健康志愿者14例。流式細胞術(shù)檢測 Th17(CD4+IL-17A+)/CD4+T細胞比例,磁珠分選CD4+T細胞、RT-PCR法檢測CD4+T細胞中Ets-1 mRNA及miR326的相對表達量。結(jié)果 SLE組 CD4+T細胞中miR326水平高于對照組(P=0.003),活動組高于穩(wěn)定組(P =0.000);SLE組Ets-1的表達水平低于對照組(P=0.002),活動組低于穩(wěn)定組(P=0.001);SLE組Th17細胞比例較對照組增高(P=0.004),活動組高于穩(wěn)定組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義;SLE患者miR326表達量與Ets-1表達量呈負相關(guān)性(P<0.001),與Th17細胞比例呈正相關(guān)性(P=0.001);Ets-1與Th17細胞比例呈負相關(guān)性(P=0.003);SLE患者miR326的表達量及Th17細胞比例與SLEDAI評分呈正相關(guān)性(P<0.001),Ets-1與SLEDAI評分呈負相關(guān)性(P<0.001);SLE患者miR326水平及Th17細胞比例在皮疹、發(fā)熱、血液系統(tǒng)及腎臟受累的患者中增高,Ets-1的表達量則降低;miR326水平及Th17細胞比例與抗dsDNA、抗核小體呈正相關(guān)性,與C3、C4呈負相關(guān)性,Ets-1與抗dsDNA、抗核小體呈負相關(guān)性,與C3、C4呈正相關(guān)性。結(jié)論 SLE患者CD4+T細胞中miR326表達明顯增高并與Th17細胞比例、疾病活動指標(biāo)呈正相關(guān)性,與Ets-1呈負相關(guān)性,提示miR326可能通過抑制Ets-1基因表達,促進Th17細胞分化參與SLE疾病活動。
系統(tǒng)性紅斑狼瘡;微小RNA;Ets-1;Th17細胞
系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus,SLE)是一種典型的多系統(tǒng)炎癥性自身免疫性疾病,以多種自身抗體及免疫復(fù)合物引起的組織和器官的損傷為特征,其發(fā)病機制尚不完全清楚。Th17(T helper cell 17)細胞是一種以分泌IL-17(interleukin 17)為主的CD4+T細胞亞群。大量實驗顯示,Th17細胞及其相關(guān)細胞因子與SLE的發(fā)病以及疾病的活動度密切相關(guān)[1]。E26轉(zhuǎn)錄因子-1(E26 transformation specific-1,Ets-1)能夠調(diào)控Th17細胞在內(nèi)的多種細胞的增殖及分化,進而參與自身免疫性疾病的發(fā)生與發(fā)展[2]。研究[3]證實Ets-1缺陷鼠的Th細胞比野生型鼠的Th細胞向Th17細胞分化增多,提示Ets-1是Th17細胞分化的負性調(diào)節(jié)因子,Ets-1缺陷會導(dǎo)致Th17細胞相關(guān)應(yīng)答的異常。miR326是課題組前期運用生物信息學(xué)方法篩選出的以Ets-1為靶基因的miRNA,研究[4]表明SLE患者外周單個核細胞(peripheral blood mononuclear cells,PBMCs)中Ets-1 mRNA及miR326表達異常,該研究通過檢測SLE患者CD4+T細胞中miR326及Ets-1 mRNA的表達水平及Th17細胞比例,分析三者之間的相關(guān)性及與狼瘡活動程度、系統(tǒng)受累情況及實驗室指標(biāo)的關(guān)聯(lián),探討三者在SLE疾病活動中的作用。
1.1 病例資料 采用病例對照的研究方法,選取2014年4月~12月于安徽醫(yī)科大學(xué)附屬省立醫(yī)院風(fēng)濕免疫科住院部及門診就診的40例SLE患者,女35例,男5例;年齡18~64(36.00±12.58)歲,所有患者符合美國風(fēng)濕病學(xué)院(ACR)2009年修訂的SLE診斷標(biāo)準。根據(jù)SLE疾病活動指數(shù)(systemic lupus erythematosus disease activity index,SLEDAI)將SLE患者分為活動組(SLEDAI≥5分)21例,穩(wěn)定組(SLEDAI<5分)19例。SLE患者的SLEDAI平均評分為(7.65±7.301)分。同時收集SLE患者的詳細臨床資料,包括腎臟損害、關(guān)節(jié)痛、皮疹、血液系統(tǒng)受累、發(fā)熱、雷諾現(xiàn)象等臨床表現(xiàn)。14例健康對照者均為健康志愿者,性別、年齡與SLE患者組匹配,無相關(guān)免疫性疾病和近期感染史。所有納入研究的對象根據(jù)倫理學(xué)要求并簽署知情同意書。
1.2 試劑與儀器 流式細胞術(shù)熒光抗體抗人CD4-FITC、抗人IL-17A-PE、同型對照抗體、白細胞刺激合劑(美國BD公司)、固定/透膜劑(美國BD公司);CD4+T細胞磁珠分選試劑盒、LD細胞分選柱(德國MiltenyiBiotec公司);人淋巴細胞分離液(北京索來寶公司);TRIzol試劑(美國 Invitrogen公司);PrimeScript逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、Real-time PCR試劑盒、PCR引物(日本TaKaRa公司)。Ets-1引物序列的上游引物:5'-GGAGCAGCCAGTCATCTTTC-3',下游引物:5'-GTCCCGCACATAGTCCTTGA-3',預(yù)計擴增的產(chǎn)物長度為128 bp;β-actin上游引物:5'-TGGCACCCAGCACAATGAA-3',下游引物:5'-CTAAGTCATAGTCCGCCTAGAAGCA-3',預(yù)計擴增的產(chǎn)物長度為186 bp。All-in-One miRNA qPCR引物、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及PCR試劑盒(美國GeneCopoeia公司);ABI 7500實時定量PCR儀(美國ABI公司);BD FACSCantoⅡ流式細胞儀(美國BD公司)。
1.3 實驗方法
1.3.1 流式細胞術(shù) 抽取空腹外周靜脈肝素鈉抗凝血20 ml,分選出PBMCs并行細胞計數(shù)。取1× 106個細胞,用1 ml含10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液重懸,加入2 μl白細胞刺激合劑,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱5 h后,取出用PBS重懸,1 500 r/min離心10 min,棄上清液,用PBS 50 μl重懸,加入10 μl抗CD4-FITC抗體,避光4℃孵育30 min,3 ml PBS重懸后1 500 r/min離心10 min,棄上清液,加入250 μl固定/透膜劑,避光室溫孵育20 min,用1 ml現(xiàn)配的Wash液重懸離心棄上清液重復(fù)2遍,加入50 μl Wash液及抗IL-17A-PE抗體,避光4℃孵育30 min,1 ml Wash液重懸離心棄上清液重復(fù)2遍,100 μl PBS重懸,同時染同型對照,24 h內(nèi)上機檢測。
1.3.2 磁珠分選CD4+T細胞 每107個細胞加入90 μl磁珠分選緩沖液10 μl CD4+T細胞生物素抗體合劑混勻,孵育10 min,每107個細胞再加入20 μl抗生物素抗體磁珠,孵育15 min;每107個細胞加入2 ml緩沖液,1 500 r/min離心10 min后棄上清液;每108個細胞加入500 μl緩沖液重懸細胞,將細胞懸液垂直加入已潤洗過的LD柱中,陰選出CD4+T細胞。
1.3.3 RNA提取和cDNA的合成 取分離好的CD4+T細胞,加入500 μl TRIzol,充分混勻后先后加入三氯甲烷、異丙醇、75%乙醇溶液,最后加入10 μl DEPC水溶解RNA。取2 μl用于RNA濃度和純度測定,計算逆轉(zhuǎn)所需的RNA體積。利用Prime-Script和All-in-One miRNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒分別得到相應(yīng)的cDNA。Ets-1 mRNA逆轉(zhuǎn)錄條件:37℃、15 min,85℃ 5 s。miRNAs逆轉(zhuǎn)錄條件:37℃ 60 min,85℃ 5 min,隨后將miRNAs逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物稀釋5倍。根據(jù)SYBR Green PCR和All-in-One miRNA qPCR試劑盒的檢測條件,分別擴增Ets-1、miR326及內(nèi)參基因獲得ΔCT值,選擇對照組一樣本ΔCT值為基準計算ΔΔCT,以2-ΔΔCT值作為各樣本相對表達量。1.3.4 實驗室指標(biāo)檢測 抗核抗體使用間接免疫熒光法檢測,Western blot法檢測抗核抗體譜;免疫球蛋白IgG、IgM、IgA及補體C3、C4用免疫比濁法檢測,常規(guī)檢測血、尿常規(guī)、血沉(erythrocyte sedimentation rate,ESR)。
1.4 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 19.0軟件進行分析,符合正態(tài)分布的計量資料采用t檢驗,以表示。三組之間的比較使用單因素方差分析及q檢驗;不符合正態(tài)分布的計量資料采用非參秩和檢驗,以中位數(shù)(25分位數(shù),75分位數(shù))[M(P25,P75)]表示,三組間比較使用Kruskal-Willis秩和檢驗,如差異有統(tǒng)計學(xué)意義則進行兩兩比較,α'修正為0.05/3。雙變量符合正態(tài)分布的使用Pearson分析相關(guān)性,余采用Spearman分析相關(guān)性。制圖采用 Prism 5.0 (GraphPad)軟件。
2.1 miR326和Ets-1在CD4+T細胞中的表達水平 SLE組CD4+T細胞中miR326的相對表達量明顯高于對照組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義。采用Kruskal-Willis秩和檢驗比較三組間差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2= 22.785,P=0.000),進行兩兩比較,α'修正為0.05/ 3?;顒咏M與對照組比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義。活動組與穩(wěn)定組差異有統(tǒng)計學(xué)意義,穩(wěn)定組與對照組比較,CD4+T細胞中miR326的表達有增高趨勢,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義。
與對照組比較,Ets-1的相對表達量在SLE組明顯減低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義。Kruskal-Willis秩和檢驗三組間差異有統(tǒng)計學(xué)意義(χ2=19.956,P= 0.000),進行兩兩比較,α'修正為0.05/3?;顒咏M明顯低于對照組和穩(wěn)定組;穩(wěn)定組與對照組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義。見表1。
2.2 miR326與Ets-1表達及Th17細胞比例的相關(guān)分析 SLE組患者外周血中,Th17(CD4+IL-17A+)/CD4+T細胞比例(0.642±0.270)%明顯高于對照組(0.407±0.225)%。使用單因素方差分析檢驗三組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(F=16.086,P= 0.000),使用q檢驗進行兩兩比較。其中活動組(0.793±0.191)%顯著高于對照組和穩(wěn)定組(0.475 ±0.248)%,差異有統(tǒng)計學(xué)意義。穩(wěn)定組與對照組比較,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.367)。分析miR326 與Ets-1、miR326與Th17細胞比例的相關(guān)性,結(jié)果顯示,miR326與Ets-1呈負相關(guān)性(r=-0.667,P<0.001)(圖1A);miR326與Th17細胞比例呈正相關(guān)性(r=0.525,P=0.001)(圖1B);Ets-1的相對表達量與Th17細胞的比例呈負相關(guān)性(r=-0.465,P =0.003)(圖1C)。
表1 SLE患者CD4+T細胞中miR326與Ets-1相對表達量的比較
圖1 miR326、Ets-1 mRNA相對表達量及Th17細胞比例之間相關(guān)性分析
2.3 SLE患者miR326、Ets-1 mRNA的表達水平及Th17比例與臨床特征的分析 將有無關(guān)節(jié)痛、腎臟受累、皮疹、發(fā)熱、血液系統(tǒng)受累、雷諾現(xiàn)象等臨床表現(xiàn)的SLE患者分為陽性組與陰性組,分別比較兩組miR326、Ets-1 mRNA的表達量以及Th17細胞比例有無差異。結(jié)果顯示,在SLE患者腎臟受累、皮疹、發(fā)熱及血液系統(tǒng)受累患者中,miR326表達水平增高,Ets-1 mRNA表達水平降低,Th17細胞比例也增高。有無關(guān)節(jié)痛及雷諾現(xiàn)象組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義。分析SLE患者miR326表達水平與SLEDAI的相關(guān)性,結(jié)果顯示兩者呈正相關(guān)性(r= 0.531,P<0.001),Ets-1表達水平與SLEDAI評分呈負相關(guān)性(r=-0.536,P<0.001),Th17/CD4+T細胞比例與 SLEDAI評分呈正相關(guān)性(r=0.514,P<0.001)。見表2。
2.4 SLE患者miR326、Ets-1 mRNA的表達水平及Th17細胞比例與實驗室指標(biāo)的相關(guān)分析 結(jié)果顯示miR326表達水平與抗dsDNA抗體、抗Sm抗體、抗RNP抗體、抗核小體抗體、IgG、ESR等指標(biāo)呈正相關(guān)性,與C3、C4呈負相關(guān)性;Ets-1 mRNA的表達與抗dsDNA抗體、抗Sm抗體、抗RNP抗體、抗核小體抗體呈負相關(guān)性,與白細胞、C3、C4呈正相關(guān)性;Th17細胞與抗dsDNA、抗RNP、抗核小體抗體呈正相關(guān)性,與白細胞、C3、C4呈負相關(guān)性。結(jié)果顯示,SLE活動性指標(biāo)如抗dsDNA、抗核小體抗體、C3、C4等與miRNA326、Ets-1的表達以及Th17比例明顯相關(guān)(表3)。與淋巴細胞、血小板、抗核糖體P抗體、Ig、CRP等指標(biāo)無相關(guān)性(P>0.05)。
表2 SLE患者miR326、Ets-1 mRNA的表達水平及Th17細胞比例與臨床特征的比較
microRNA通過與mRNAs結(jié)合,在后轉(zhuǎn)錄水平調(diào)控基因表達。目前發(fā)現(xiàn)microRNA參與多種自身免疫疾病的發(fā)生。本課題組前期利用生物信息學(xué)方法篩選出以Ets-1為靶基因的miRNAs中包括miR326[4]。研究[5]顯示多種 microRNA參與調(diào)節(jié)IL-17細胞因子及其受體的表達。一項系統(tǒng)性硬化癥的研究[6]顯示miR326能夠抑制Ets-1的轉(zhuǎn)錄,并且其表達增加與Th17細胞分化增多及疾病活動密切相關(guān),提示miR326可能通過調(diào)控Ets-1的表達,影響Th17細胞分化,參與自身免疫炎癥反應(yīng)。本研究僅進行了簡單的相關(guān)性分析,結(jié)果提示miR326與疾病活動相關(guān),但miR326的表達是否受藥物如糖皮質(zhì)激素、免疫抑制劑的影響目前尚不清楚,需要進一步研究。
表3SLE患者miR326、Ets-1 mRNA表達水平及Th17細胞比例與實驗室指標(biāo)的相關(guān)性分析
Ets-1是轉(zhuǎn)錄因子 Ets家族成員之一,近年的GWAS研究[7]顯示 Ets-1是亞洲人SLE的易感基因,并且Ets-1的基因多態(tài)性與SLE臨床表型有關(guān)。既往已有研究[8]表明,SLE患者的PBMCs中Ets-1 mRNA表達水平降低,但尚不清楚SLE患者不同細胞亞群中Ets-1的表達是否存在差異。本研究針對性地檢查SLE患者CD4+T細胞亞群中Ets-1 mRNA的表達量,結(jié)果進一步證實了SLE患者在特定的T細胞亞群中存在Ets-1的表達缺陷,從而降低了對Th17細胞等免疫炎性細胞的負向調(diào)控,導(dǎo)致炎癥細胞大量增殖。除了miR326,還有其他microRNA如miR155、miR221、miR222參與 Ets-1的調(diào)控,這些microRNA是否與miR326有協(xié)同作用,是否也通過調(diào)控Ets-1的表達參與SLE的發(fā)病都值得進一步探索。
大量的研究[9-10]顯示血清中IL-17A的水平及Th17細胞數(shù)量與SLE疾病活動有關(guān)。并且新發(fā)狼瘡患者外周血中Th17細胞比例與SLEDAI評分、血清中C3水平和抗dsDNA抗體的水平相關(guān)。根據(jù)miR326靶向抑制Ets-1的轉(zhuǎn)錄,Ets-1缺陷導(dǎo)致Th17細胞分化增多,推測miR326可能通過抑制Ets-1的表達調(diào)節(jié)Th17細胞分化參與SLE疾病活動。本項研究結(jié)果支持上述推測,提示miR326可能通過抑制Ets-1 mRNA的表達水平導(dǎo)致Th17細胞的過度增殖,促進了免疫炎癥過程,使SLE疾病活動加劇。本研究僅檢測了Ets-1 mRNA的水平,需要進一步進行Western blot實驗,從蛋白水平進一步驗證。下一步可以通過離體實驗、動物實驗等選擇性的抑制或者促進miR326的表達,再檢測Ets-1的表達水平,進一步驗證本實驗。
綜上所述,miR326、Ets-1及Th17細胞在SLE患者CD4+T細胞中表達異常,并且與腎臟受累、皮疹、發(fā)熱、血液系統(tǒng)受累等以及抗dsDNA抗體滴度增高、補體降低有關(guān),提示在SLE的疾病活動中發(fā)揮重要作用。miR326可能通過抑制Ets-1的表達,促進Th17細胞的分化,參與SLE的發(fā)病,并可能與臨床表型相關(guān)。進一步研究miR326與Ets-1是否通過其他可能的作用機制,調(diào)節(jié)Th17及Treg這兩組極性細胞的分化與功能,有助于揭示SLE患者免疫紊亂的具體環(huán)節(jié),為臨床免疫干預(yù)提供新的治療靶點。
[1] Vincent F B,Northcott M,Hoi A,et al.Clinical associations of serum interleukin-17 in systemic lupus erythematosus[J].Arthritis Res Ther,2013,15(4):R97.
[2] Zhou Y,Liu M,Li J,et al.Impact of V-ets erythroblastosis virus E26 oncogene homolog 1 gene polymorphisms upon susceptibility to autoimmune diseases:a Meta-analysis[J].Medicine(Baltimore),2015,94(22):e923.
[3] Christie D,Zhu J.Transcriptional regulatory networks for CD4 T cell differentiation[J].Curr Top Microbiol Immunol,2014,381:125-72.
[4] 馬 倩,李向培,陶金輝,等.系統(tǒng)性紅斑狼瘡患者Ets-1表達及其調(diào)控微小RNAs的研究[J].中華風(fēng)濕病學(xué)雜志,2013,17 (12):800-4.
[5] Mai J,Virtue A,Maley E,et al.MicroRNAs and other mechanisms regulate interleukin-17 cytokines and receptors[J].Front Biosci (Elite Ed),2012,4:1478-95.
[6] Du C,Liu C,Kang J,et al.MicroRNA miR-326 regulates TH-17 differentiation and is associated with the pathogenesis of multiple sclerosis[J].Nat Immunol,2009,10(12):1252-9.
[7] Zhong H,Li X L,Li M,et al.Replicated associations of TNFAIP3,TNIP1 and ETS1 with systemic lupus erythematosus in a southwestern Chinese population[J].Arthritis Res Ther,2011,13 (6):R186.
[8] Li Y,Sun L D,Lu W S,et al.Expression analysis of ETS1 gene in peripheral blood mononuclear cells with systemic lupus erythematosus by real-time reverse transcription PCR[J].Chin Med J (Engl),2010,123(16):2287-8.
[9] 王道洋,王德光,劉桂凌,等.系統(tǒng)性紅斑狼瘡患者外周血單個核細胞中Th17細胞數(shù)量變化及臨床意義[J].安徽醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2013,48(8):941-5.
[10]Wen Z,Xu L,Xu W,et al.Detection of dynamic frequencies of Th17 cells and their associations with clinical parameters in patients with systemic lupus erythematosus receiving standard therapy
[J].Clin Rheumatol,2014,33(10):1451-8.
miR326 participates in SLE morbidity by regulating Ets-1 expression and Th17 cells differentiation
Dai Chao,Tao Jinhui,Sun Xiaoge,et al
(Dept of Rheumatism,Affiliated Provincial Hospital of Anhui Medical University,Hefei 230001)
Objective To detect the expression of miR326 and Ets-1 in CD4+T cells and the ratio of Th17 cells of patients with systemic lupus erythematosus(SLE),to analyze their relationship with each other and with the clinical data,to explore the potential pathogenesis of SLE.Methods 40 patients according to 2009 American College of Rheumatology(ACR)SLE diagnosis standards were selected,and recorded their clinical data.14 healthy adults without autoimmune disease were chosen as controls.Flow cytometry was used to inspect the ratio of Th17 cells (CD4+IL-17A+)/CD4+T cells.Magnetic activated cell sorting was used to enrich the CD4+T cells,and reverse transcription polymerase chain reaction(RT-PCR)was used to inspect the relative expression of miR326 and Ets-1 mRNA in CD4+T cells.Results Compared to the healthy controls,the miR326 expression level in the CD4+T cells of SLE patients was increased obviously(P=0.003),and the expression level was higher in the active group than that in remitting group(P=0.000).The Ets-1 mRNA expression level in CD4+T cells of SLE group was reduced obviously than that in the controls(P=0.002),and the expression in the active group was lower than that in remitting group(P=0.001).Compared to the controls,the ratio of Th17 cells/CD4+T cells in SLE group was increased obviously(P=0.004),and significant difference was found between the active group and the remitting group.The miR326 expression had a negative correlation with the Ets-1 expression(P<0.001)and a positive correlation with the ratio of Th17 cells(P=0.001).There was also a negative correlation between Ets-1 expression and the ratio of Th17 cells(P=0.003).The miR326 expression and the ratio of Th17 cells both had a positive correlation with the SLEDAI score,while the Ets-1 expression had a negative correlation with the SLEDAI score.In SLE patients who suffered from erythra,hematologic system or kidney impairment,the miR326 expression and the ratio of Th17 cells increased significantly,while the Ets-1 expression induced compared to the rest SLE patients. The miR326 expression and the ratio of Th17 cells positively regulated with anti-dsDNA antibodies level and antinucleosome antibodies level,and negatively regulated with C3 and C4.On the contrary the Ets-1 expression had a negative regulation with anti-dsDNA antibodies and anti-nucleosome antibodies and a positive regulation with C3 and C4.Conclusion The miR326 expression of CD4+T cells increases obviously in SLE patients and positively correlates to the ratio of Th17 cells and the disease activity index,but has a negative correlation with Ets-1 expression.The results prompt that miR326 could participate in the disease activity of SLE through inhibiting the Ets-1 gene expression and promoting the differentiation of Th17 cells.
systemic lupus erythematosus;miRNAs;Ets-1;Th17 cells
R 593.24.02;R 593.241.02
A
1000-1492(2016)09-1320-05
時間:2016-8-1 14:07
http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1065.R.20160801.1407.038.html
2016-05-04接收
國家自然科學(xué)基金(編號:81373186)
安徽醫(yī)科大學(xué)附屬省立醫(yī)院風(fēng)濕免疫科,合肥 230001
戴 超,女,碩士研究生; 李向培,女,教授,主任醫(yī)師,博士生導(dǎo)師,責(zé)任作者,E-mail:lixiangpei55@126.com