張 娟,劉建平,朱彥姝
(寧夏醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,寧夏 銀川 750004)
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牛血清白蛋白-5-磺基水楊酸體系的熒光共振能量轉(zhuǎn)移研究
張娟,劉建平,朱彥姝
(寧夏醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,寧夏 銀川 750004)
采用熒光發(fā)射光譜和紫外吸收光譜研究了牛血清白蛋白(BSA)-5-磺基水楊酸(SSA)體系的熒光共振能量轉(zhuǎn)移。結(jié)果表明,SSA可以猝滅BSA的熒光且使BSA熒光發(fā)射峰藍(lán)移,但峰形未改變;隨SSA濃度的增大,BSA紫外吸收光譜的最大吸收峰紅移且強(qiáng)度逐漸增強(qiáng);根據(jù)F?rster非輻射能量轉(zhuǎn)移原理計(jì)算得到BSA-SSA體系中供體(BSA)與受體分子(SSA)間距離為2.42 nm。
牛血清白蛋白(BSA);5-磺基水楊酸(SSA);熒光猝滅;能量轉(zhuǎn)移
5-磺基水楊酸(SSA)是水楊酸(salicylicacid,SA)衍生物,屬于芳香族含氧酸,具有內(nèi)源性熒光[1]。與SA及其它衍生物相比,SSA具有較好的水溶性,因而在水體研究[2]、工業(yè)[3]、醫(yī)藥[4]等眾多領(lǐng)域應(yīng)用廣泛。血清白蛋白是有機(jī)體循環(huán)系統(tǒng)中大量存在的一種可溶性蛋白,其重要生理功能之一是與體內(nèi)外不同配體(血漿中的脂肪酸、藥物、生物活性小分子和金屬離子等[5-6])發(fā)生可逆性鍵合,這種鍵合將影響配體在體內(nèi)的吸收、分配、代謝、排泄等[7-8]。因此,有關(guān)蛋白與配體相互作用的研究十分重要,受到廣泛關(guān)注[9-10],但有關(guān)牛血清白蛋白(BSA)與SSA相互作用的研究卻少見(jiàn)報(bào)道。鑒于此,作者研究了BSA-SSA體系的熒光發(fā)射光譜和紫外吸收光譜,并利用F?rster非輻射能量轉(zhuǎn)移原理計(jì)算了BSA與SSA之間距離,擬為相關(guān)研究提供參考。
1.1試劑與儀器
SSA,美國(guó)Fluka公司,以二次蒸餾水配制成原溶液,使用時(shí)適當(dāng)稀釋;BSA(全組分),美國(guó)Sigma公司,直接溶解于二次蒸餾水中配成原溶液;三羥甲基氨基甲烷(Tris,含量≥99%),上?;瘜W(xué)試劑公司分裝廠,配制成pH=7.4的Tris-HCl緩沖溶液;NaCl(分析純),上?;瘜W(xué)試劑公司,以二次蒸餾水配制成濃度為0.5mol·L-1的NaCl溶液。所有原溶液均于0~4 ℃暗處儲(chǔ)存。
F-4600型熒光光譜儀(配置150W氙燈和恒溫水浴槽)、U-3310型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),日本日立公司。
1.2方法
1.2.1BSA-SSA體系的配制
取一定量的BSA和SSA溶液、2.0mLTris-HCl緩沖溶液、2.0mLNaCl溶液置于10mL比色管中,用二次蒸餾水稀釋至10mL,攪拌均勻,即得BSA-SSA體系。
1.2.2BSA-SSA體系的光譜測(cè)定
熒光發(fā)射光譜于恒溫294 K測(cè)定,激發(fā)波長(zhǎng)280 nm,激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為2.5 nm,掃描速度 1 200 nm·min-1;紫外吸收光譜于室溫測(cè)定,狹縫寬度2 nm。
2.1BSA-SSA體系的熒光發(fā)射光譜
熒光猝滅是指熒光量子產(chǎn)率降低(即熒光強(qiáng)度減弱)。不同的分子間相互作用均可導(dǎo)致熒光猝滅,包括分子重排、能量轉(zhuǎn)移、基態(tài)復(fù)合物形成、碰撞猝滅等[11]。
固定BSA濃度、改變SSA濃度,研究SSA對(duì)BSA熒光發(fā)射光譜的影響,結(jié)果見(jiàn)圖1。
cBSA=8.96×10-6 mol·L-1 a~e,cSSA(×10-6 mol·L-1):0、0.41、0.83、1.24、1.65
由圖1可知,當(dāng)λex=280 nm時(shí),BSA在338 nm處有強(qiáng)熒光峰,主要由色氨酸殘基引起;隨SSA濃度的增大,BSA位于338 nm處的熒光峰強(qiáng)度逐漸減弱,401 nm處的熒光峰強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)。表明SSA對(duì)BSA的熒光具有猝滅作用。另外,隨SSA濃度的增大,BSA熒光發(fā)射峰發(fā)生藍(lán)移,表明熒光猝滅可能是由BSA與SSA形成復(fù)合物引起的[12]。
2.2BSA-SSA體系的紫外吸收光譜
固定BSA濃度、改變SSA濃度,研究SSA對(duì)BSA紫外吸收光譜的影響,結(jié)果見(jiàn)圖2。
cBSA=9.07×10-6 mol·L-1 a~e,cSSA(×10-5 mol·L-1):0、2.06、4.12、6.18、8.24
由圖2可知,隨SSA濃度的增大,BSA位于278.5 nm處的最大吸收峰發(fā)生紅移,且吸收峰強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)。表明BSA與SSA形成了復(fù)合物[13]。
2.3BSA-SSA體系的熒光共振能量轉(zhuǎn)移
熒光共振能量轉(zhuǎn)移(FRET)可分為輻射能量轉(zhuǎn)移和非輻射能量轉(zhuǎn)移,供體分子熒光發(fā)射光譜發(fā)生畸變時(shí)發(fā)生輻射能量轉(zhuǎn)移。由2.1可知,SSA可有效猝滅BSA的熒光,說(shuō)明BSA-SSA體系存在能量轉(zhuǎn)移。當(dāng)加入SSA時(shí),BSA熒光發(fā)射光譜并未發(fā)生畸變,可認(rèn)為BSA-SSA體系的熒光共振能量轉(zhuǎn)移屬于非輻射能量轉(zhuǎn)移。根據(jù)F?rster非輻射能量轉(zhuǎn)移原理[14],發(fā)生能量轉(zhuǎn)移必須滿足以下條件:(1)供體可發(fā)射熒光;(2)供體分子的熒光發(fā)射光譜與受體分子的紫外吸收光譜有足夠的重疊;(3)供體與受體足夠接近,最大距離不超過(guò)7 nm。
非輻射能量轉(zhuǎn)移效率(E)、供體和受體之間距離(r)與臨界能量轉(zhuǎn)移(E=50%)距離(R0)的關(guān)系[14]如下:
(1)
(2)
(3)
式中:F、F0分別為有無(wú)猝滅劑時(shí)供體的熒光強(qiáng)度;K2為偶極空間取向因子,取供體和受體各向隨機(jī)分布的平均值2/3;n為介質(zhì)折射系數(shù),一般取水和有機(jī)物折射指數(shù)的平均值1.336;φ為供體熒光量子產(chǎn)率,對(duì)于BSA為0.13[15];J為供體熒光發(fā)射光譜與受體紫外吸收光譜的重疊積分(圖3);F(λ)為供體在波長(zhǎng)為λ處的熒光強(qiáng)度;ε(λ)為受體在波長(zhǎng)λ處的摩爾吸光系數(shù)。
cBSA=8.96×10-6 mol·L-1 cSSA=5.16×10-5 mol·L-1
根據(jù)式(1)~(3),可計(jì)算得到以下參數(shù):J=7.67×10-16cm3·L·mol-1,R0=1.52 nm,E=0.0573,r=2.42 nm。BSA的內(nèi)源性熒光主要由色氨酸殘基引起。BSA分子含有2個(gè)色氨酸殘基,Trp-212殘基位于子域ⅡA,而Trp-134殘基位于子域ⅠB。Trp-134殘基不易與水溶性配體接近,因此SSA僅與Trp-212殘基相互作用,其相互作用距離為2.42 nm。供體和受體之間距離r<7 nm且0.5R0 采用熒光發(fā)射光譜和紫外吸收光譜研究了牛血清白蛋白(BSA)-5-磺基水楊酸(SSA)體系的熒光共振能量轉(zhuǎn)移。結(jié)果表明,SSA可以猝滅BSA的熒光且使BSA熒光發(fā)射峰藍(lán)移,但峰形未改變;隨SSA濃度的增大,BSA紫外吸收光譜的最大吸收峰紅移且強(qiáng)度逐漸增強(qiáng);根據(jù)F?rster非輻射能量轉(zhuǎn)移原理計(jì)算得到BSA-SSA體系中供體與受體分子間距離為2.42 nm。 [1]POZDNYAKOV I P,PLYUSNIN V F,GRIVIN V P.Photolysis of sulfosalicylic acid in aqueous solutions over a wide pH range[J].Journal of Photochemistry and Photobiology A:Chemistry,2006,181(1):37-43. [2]LUDEMANN H C,HILLENKAMP F,REDMOND R W.Photoinduced hydrogen atom transfer in salicylic acid derivatives used as matrix-assisted laser desorption/ionization(MALDI) matrixes[J].Journal of Physical Chemistry A,2000,104(17):3884-3893. [3]YANG Y,GAO Q M.Influence of sulfosalicylic acid in the electrolyte on the optical properties of porous anodic alumina membranes[J].Physics Letters A,2004,333(3/4):328-333. [4]MORIYAMA T,KEMI M,OKUMURA C,et al.Involvement of advanced glycation end-products, pentosidine andNε-(carboxymethyl)lysine, in doxorubicin-induced cardiomyopathy in rats[J].Toxicology,2010,268(1):89-97. [5]LI D J,ZHU M,XU C,et al.Characterization of the baicalein-bovine serum albumin complex without or with Cu2+or Fe3+by spectroscopic approaches[J].European Journal of Medicinal Ch-emistry,2011,46(2):588-599. [6]CUI F L,WANG J L,YAO X J,et al.Spectroscopic and molecular modeling studies of the interaction between cytidine and human serum albumin and its analytical application[J].Biopolymers,2007,87(2/3):174-182. [7]WU Q,LI C H,HU Y J,et al. Study of caffeine binding to human serum albumin using optical spectroscopic methods[J].Science in China Series B:Chemistry,2009,52(12):2205-2212. [8]CARTER D C,HO J X.Structure of serum albumin[J].Advances in Protein Chemistry,1994,45:153-203. [9]SULKOWSKA A,BOJKO B,RWNICKA J,et al.The competition of drugs to serum albumin in combination chemotherapy:NMR study[J].Journal of Molecular Structure,2005,744/745/746/747:781-787. [10]SINGH T S,MITRA S.Interaction of cinnamic acid derivatives with serum albumins:a fluorescence spectroscopic study[J].Spectrochimica Acta Part A:Molecular and Biomolecular Spectroscopy,2011,78(3):942-948. [11]ZHANG H X,HUANG X,MEI P,et al.Studies on the interaction of tricyclazole withβ-cyclodextrin and human serum albumin by spectroscopy[J]. Journal of Fluorescence,2006,16(3):287-294. [12]WANG T H,ZHAO Z M,ZHANG L,et al. Spectroscopic studies on the interaction between troxerutin and bovine serum albumin[J]. Journal of Molecular Structure,2009,937(1):65-69. [13]CUI F L,FAN J,LI J P,et al.Interactions between 1-benzoyl-4-p-chlorophenyl thiosemicarbazide and serum albumin:investigation by fluorescence spectroscopy[J].Bioorganic & Medicinal Chemistry,2004,12(1):151-157. [14]LAKOWICZ J R.Principles of Fluorescence Spectroscopy[M].3rd,Singapore:Springer Press,2006:278-290. [15]ZHANG G W,QUE Q M,PAN J H,et al.Study of the interaction between icariin and human serum albumin by fluorescence spectroscopy[J].Journal of Molecular Structure,2007,881(1/2/3):132-138. [16]VALEUR B.Molecular Fluorescence:Principles and Applications[M].New York:Wiley Press,2001:250. Fluorescence Resonance Energy Transfer of Bovine Serum Albumin-5-Sulfosalicyclic Acid System ZHANG Juan,LIU Jian-ping,ZHU Yan-shu (SchoolofBasicMedicalSciences,NingxiaMedicalUniversity,Yinchuan750004,China) Fluorescenceresonanceenergytransferofbovineserumalbumin(BSA)-5-sulfosalicyclicacid(SSA)systemwasstudiedbyfluorescenceemissionandUVabsorptionspectra.Resultsshowedthat,thefluorescenceemissionspectrumofBSAwasquenchedbyadditionofSSAsolutionandthefluorescenceemissionpeakofBSAemergedablueshift,butthepeakshapeofBSAfluorescencespectrumwasunchanged.ThemaximumUVabsorptionpeakofBSAemergedaredshiftanditsabsorbanceintensityincreasedobviouslywiththeincreasingofSSAconcentration.AccordingtoF?rstertheoryofnon-radiationenergytransfer,thedistancebetweenthedonor(BSA)andtheacceptor(SSA)inBSA-SSAsystemwascalculatedas2.42nm. bovineserumalbumin(BSA);5-sulfosalicyclicacid(SSA);fluorescencequenching;energytransfer 10.3969/j.issn.1672-5425.2016.08.010 寧夏衛(wèi)生計(jì)生委(寧夏衛(wèi)生廳)科研項(xiàng)目(2012051) 2016-03-24 張娟(1976-),女,寧夏銀川人,副教授,研究方向:電化學(xué)及光化學(xué),E-mail:zhangjuano13@126.com。 O 657.39 A 1672-5425(2016)08-0042-03 張娟,劉建平,朱彥姝.牛血清白蛋白-5-磺基水楊酸體系的熒光共振能量轉(zhuǎn)移研究[J].化學(xué)與生物工程,2016,33(8):42-44.3 結(jié)論