慢性間歇性低氧對(duì)幼鼠腦區(qū)AMPK通路的影響*

梁冬施， 陳利亞， 洪芳芳， 林 晶， 溫正旺， 李秀翠， 蔡曉紅△

(溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院育英兒童醫(yī)院1兒童急診科，2兒童呼吸科，3兒童感染科，4兒童神經(jīng)科，浙江溫州325000)

慢性間歇性低氧對(duì)幼鼠腦區(qū)AMPK通路的影響*

梁冬施1， 陳利亞2， 洪芳芳2， 林 晶2， 溫正旺3， 李秀翠4， 蔡曉紅2△

(溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第二醫(yī)院育英兒童醫(yī)院1兒童急診科，2兒童呼吸科，3兒童感染科，4兒童神經(jīng)科，浙江溫州325000)

目的:探討慢性間歇性低氧對(duì)幼鼠腦區(qū)腺苷酸活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase，AMPK)通路的影響。方法:第一部分:將3～4周齡的SD幼鼠隨機(jī)分為4組(n=8):2周空氣模擬對(duì)照(2AC)組、2周慢性間歇低氧(2IH)組、4周空氣模擬對(duì)照(4AC)組和4周慢性間歇低氧(4IH)組。第二部分:將3～4周齡的SD幼鼠隨機(jī)分為2組(n=8):4周慢性間歇性低氧組(4IH)和4周慢性間歇性低氧用藥組(4IHI)。造模結(jié)束后行八臂迷宮測試，TUNEL法檢測細(xì)胞凋亡，RT-qPCR法了解腺苷A2a受體的mRNA表達(dá)，Western blot法測定AMPK及哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin，mTOR)的磷酸化水平。結(jié)果:與對(duì)照組相比，2IH組和4IH組的參考記憶錯(cuò)誤(RME)、工作記憶錯(cuò)誤(WME)和總錯(cuò)誤(TE)次數(shù)明顯增加，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.01);4IH與2IH組比較，各項(xiàng)錯(cuò)誤次數(shù)亦明顯增加(P＜0.01)。4IHI組比4IH組RME、WME和TE次數(shù)減少，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.01)。與對(duì)照組相比，2IH組和4IH組海馬和前額皮層區(qū)的神經(jīng)元凋亡增多，以4IH組凋亡明顯(P＜0.05);4IHI組凋亡較4IH組減少(P＜0.05)。2IH組和4IH組海馬和前額皮層區(qū)腺苷受體A2a的mRNA和AMPK磷酸化蛋白的水平升高，mTOR磷酸化蛋白的水平下降，4IH組較2IH組改變明顯(P＜0.05)。4IHI組較4IH組海馬和前額皮層區(qū)的AMPK磷酸化蛋白水平下降，mTOR磷酸化蛋白水平升高(P＜0.05)。結(jié)論:慢性間歇性低氧誘導(dǎo)神經(jīng)元凋亡，從而引起幼鼠學(xué)習(xí)記憶障礙，呈時(shí)間依賴性。慢性間歇性低氧上調(diào)腺苷A2a受體，激活海馬和前額皮層區(qū)AMPK，抑制mTOR的活性，誘導(dǎo)神經(jīng)元凋亡，進(jìn)而影響幼鼠學(xué)習(xí)記憶能力。

慢性間歇性低氧;腺苷A2a受體;腺苷酸活化蛋白激酶;哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白;海馬;前額皮層

慢性間歇性低氧是阻塞性睡眠呼吸暫停綜合征(obstructive sleep apnea-hypopnea syndrome，OSAHS)的病理生理過程，類似缺氧-再灌注過程，對(duì)身體各器官均有損害作用，特別對(duì)神經(jīng)元，可造成OSAHS兒童認(rèn)知功能下降［1］。目前國內(nèi)外研究表明，OSAHS對(duì)神經(jīng)元的損傷主要包括各種氧化應(yīng)激途徑、凋亡途徑引起神經(jīng)元凋亡。腺苷酸活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase，AMPK)是能量調(diào)控家族中的關(guān)鍵蛋白，在神經(jīng)系統(tǒng)中有廣泛的分布，與神經(jīng)細(xì)胞的存亡密切相關(guān)。在神經(jīng)細(xì)胞缺血、低氧時(shí)，AMP/ ATP比值改變［2］，產(chǎn)生大量細(xì)胞因子及相關(guān)代謝產(chǎn)物，包括如腺苷、促炎癥、免疫因子，其中腺苷作用較顯著。腺苷通過腺苷受體可誘導(dǎo)多條途徑活化［3-4］，特別是腺苷受體A2a誘導(dǎo)的AMPK途徑目前較為受關(guān)注。AMPK被激活，轉(zhuǎn)化為磷酸化 AMPK(p-AMPK)，通過 AMPK-哺乳動(dòng)物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin，mTOR)途徑控制著細(xì)胞凋亡和生長［5-6］。在小鼠腦缺血再灌注模型中，神經(jīng)元缺血后AMPK含量明顯增高，同時(shí)腦梗死面積增大［7］。在體外應(yīng)用AMPK激動(dòng)劑后人神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞出現(xiàn)凋亡，提示AMPK可調(diào)控神經(jīng)系統(tǒng)細(xì)胞凋亡發(fā)生。而腺苷受體-AMPK-mTOR通路是生存、凋亡調(diào)節(jié)重要途徑，特別在神經(jīng)元。因此本研究通過建立慢性間歇性低氧幼鼠模型，觀察幼鼠神級(jí)行為及相關(guān)功能區(qū)細(xì)胞凋亡情況，采用RT-qPCR了解前額皮層區(qū)和海馬區(qū)腺苷A2a受體的mRNA表達(dá)情況及Western blot法檢測相應(yīng)腦區(qū)p-AMPK和pmTOR蛋白水平的改變，初步探討慢性間歇性低氧對(duì)幼鼠前額皮層區(qū)和海馬區(qū)損害機(jī)制。

材料和方法

1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

SPF級(jí)雄性SD幼鼠48只，體重100～120克，由溫州醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。第一部分:按隨機(jī)數(shù)字表法分為4組(n=8):2周空氣模擬對(duì)照組(2AC)、2周慢性間歇低氧組(2IH)、4周空氣模擬對(duì)照組(4AC)和4周慢性間歇低氧組(4IH)。第二部分:按隨機(jī)數(shù)字表法分為2組(n=8):4周慢性間歇低氧組(4IH)和4周給藥組(4IHI)。4IHI組每天進(jìn)入艙體前0.5 h，予腹腔注射AMPK抑制劑compound C 11.2 mg/kg。

2 OSAHS模型的建立

參照文獻(xiàn)［8］建立OSAHS模型，艙體60 cm×22 cm×16 cm，連接氮?dú)夤艿?、氧氣管?或空氣壓縮泵)并由氣體流量控制閥控制。氧艙側(cè)壁各有4個(gè)單向進(jìn)氣、排氣閥;艙壁各有4個(gè)單向進(jìn)氣、出氣閥。艙體內(nèi)有CO2吸附劑，保證CO2濃度＜0.01%。艙內(nèi)壓力始終保持常壓，溫度維持在22～24℃，濕度在40%～50%范圍。O2濃度、CO2濃度、溫度、濕度均可被測量，實(shí)時(shí)顯示。90 s為1個(gè)循環(huán)，通氮?dú)?0.3 kP)30 s，停30 s;通氧氣(25 L/min)12 s，停18 s;氧濃度上升并維持在(21.0±0.5)%約30 s。低氧時(shí)艙內(nèi)氧濃度波動(dòng)在(10.0±1.5)%，復(fù)氧時(shí)艙內(nèi)氧濃度波動(dòng)在(21.0±0.5)%，見圖1。并行模型驗(yàn)證，即造模2 h后，在慢性間歇性低氧1個(gè)周期內(nèi)的5個(gè)時(shí)點(diǎn)，取幼鼠動(dòng)脈血行動(dòng)脈血?dú)夥治?，檢測氧分壓(oxygen partial pressure，PO2)及氧飽和度(oxygen saturation，SO2)［8］。驗(yàn)證造模后，4組實(shí)驗(yàn)動(dòng)物放入對(duì)應(yīng)實(shí)驗(yàn)艙內(nèi)，艙外用黑色布遮蓋模擬黑夜時(shí)間，每天7.5 h，出艙后日光燈照射模擬白天時(shí)間，造模時(shí)間分別為2周及4周。

3 實(shí)驗(yàn)方法

3.1 八臂迷宮實(shí)驗(yàn) 實(shí)驗(yàn)中保持溫度22～24℃、濕度40%～50%，12 h光照，自由飲水，限制進(jìn)食。將幼鼠置于迷宮中適應(yīng)2 d，每次放2只，使其自由活動(dòng)和攝取飼餌15 min，每日1次。適應(yīng)后進(jìn)行每日1次的訓(xùn)練，每次訓(xùn)練時(shí)，8臂中只有4臂放置餌料(分別為1、2、4和7號(hào)臂)。訓(xùn)練時(shí)幼鼠放在迷宮中央?yún)^(qū)，中央?yún)^(qū)四周用門關(guān)住，15 s后門開放，幼鼠可選擇進(jìn)入任意一臂攝餌，待吃掉所有臂上餌料或時(shí)間超過10 min視為訓(xùn)練結(jié)束。總錯(cuò)誤(total error，TE)次數(shù):大鼠進(jìn)入有餌的臂且攝取餌為1次正確選擇，否則為錯(cuò)誤選擇;工作記憶錯(cuò)誤(working memory error，WME)次數(shù):重復(fù)進(jìn)入已吃過食物臂的次數(shù);參考記憶錯(cuò)誤(reference memory error，RME)次數(shù):進(jìn)入不放餌臂的次數(shù);總時(shí)間(total time，TT):完成1次訓(xùn)練的時(shí)間。

Figure 1.The changes of oxygen concentration in chronic intermittent hypoxia chamber.圖1 慢性間歇性低氧氧艙內(nèi)一個(gè)循環(huán)氧濃度變化圖

3.2 取材 實(shí)驗(yàn)結(jié)束后，隨機(jī)取幼鼠每組6只，予10%水合氯醛麻醉，行心臟灌注，并迅速斷頭，取左、右海馬及前額葉皮層，放入凍存管，置液氮保存。隨機(jī)取每組幼鼠2只，心臟灌注多聚甲醛，迅速斷頭取腦，取海馬及皮層。

3.3 TUNEL實(shí)驗(yàn) 將組織進(jìn)行多聚甲醛固定、脫水、透明、浸蠟、包埋、切片后按TUNEL檢測試劑說明書步驟操作，隨機(jī)計(jì)算6個(gè)不同高倍視野(×400)下凋亡細(xì)胞數(shù)，計(jì)算凋亡指數(shù)(apoptoic index，AI): AI(%)=凋亡細(xì)胞數(shù)/計(jì)數(shù)細(xì)胞總數(shù)×100%。其中4IH組及4IHI組予DAB復(fù)染，觀察凋亡情況。

3.4 RT-qPCR法測定幼鼠海馬和前額葉皮層區(qū)腺苷A2a受體的mRNA表達(dá) 按照TRIzol提取試劑說明書抽提RNA，并測定RNA濃度，按RNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Fermentas公司)說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄，按實(shí)時(shí)熒光定量PCR操作要求在96孔中加入引物(由上?；瞪锕こ逃邢薰竞铣?，序列見表1)、SYBR Green I、模板、水總體積為20 μL，混勻后在Roche LightCycler 480中進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR分析，實(shí)驗(yàn)結(jié)束，用LightCycler 480 15.0軟件處理實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

表1 引物序列Table 1.The sequence of the primers for RT-qPCR

3.5 Western blot法檢測海馬及前額葉皮層組織中p-AMPK和p-mTOR蛋白含量 蛋白裂解液提取蛋白，采用BCA試劑盒(Pierce)進(jìn)行蛋白濃度測定，按分子大小加入10%(或5%)分離膠、5%(或4%)濃縮膠制膠，電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉、孵育，孵育采用 I抗孵育18～24 h(AMPK和mTOR濃度均為1∶1 000)，4℃孵育過夜，加II抗(1∶5 000)，2 h后加化學(xué)發(fā)光檢測試劑(試劑A∶試劑B=1∶1)反應(yīng)5 min，曝光。采用Gel-Pro凝膠分析軟件分析。蛋白相對(duì)表達(dá)水平=目的蛋白條帶累積吸光度(IA)/內(nèi)參照條帶IA。

4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

計(jì)量資料數(shù)據(jù)呈正態(tài)分布采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示，方差齊單因素兩組間比較采用t檢驗(yàn);方差齊單因素兩組以上比較采用單因素方差分析;方差齊組間比較采用SNK-q檢驗(yàn)，方差不齊則采用Tamhane’s T2檢驗(yàn)。非正態(tài)分布數(shù)據(jù)用中位數(shù)表示，兩組間比較用兩獨(dú)立樣本Mann-Whitney U檢驗(yàn)，多組間比較用Kruskal-Wallis H檢驗(yàn)。所有數(shù)據(jù)用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件處理分析，以P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

結(jié)果

1 模型驗(yàn)證

慢性間歇性低氧組動(dòng)脈血?dú)夥治鼋Y(jié)果顯示，最低PO2為(43±4)mmHg，最低SO2為(76±3)%，慢性間歇性低氧周期內(nèi)PO2與SO2變化明顯;對(duì)照組動(dòng)脈血?dú)夥治鼋Y(jié)果顯示，PO2和SO2分別為(96±1) mmHg和(97±4)%，取血時(shí)點(diǎn)與慢性間歇性低氧組相同，各時(shí)點(diǎn)動(dòng)脈血?dú)獠町惒幻黠@，見圖2。

2 八臂迷宮測試行為學(xué)檢測結(jié)果

與2AC組和4AC組相比，2IH組和4IH組的RME、WME和TE次數(shù)明顯增加，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.01)。4IH組各項(xiàng)錯(cuò)誤次數(shù)亦比2IH組明顯增加(P＜0.01)，見表2。與4IH組比，4IHI組錯(cuò)誤數(shù)明顯減少(P＜0.01)，見表3。

Figure 2.The effect of chronic intermittent hypoxia on the changes of PO2and SO2in the arterial blood of the rats.Mean±SD.n=5.A:simulated air control group;B: chronic intermittent hypoxia group.圖2 慢性間歇性低氧對(duì)動(dòng)脈血PO2和SO2的影響

表2 各組幼鼠RME、WME和TE的比較Table 2.The changes of RME，WME and TE in the young rats with different treatments(Mean±SD.n=8)

表3 AMPK抑制劑對(duì)幼鼠RME、WME和TE的影響Table 3.The changes of RME，WME and TE in the young rats with different treatments between 4IH group and 4IHI group(Mean±SD.n=8)

3 神經(jīng)元凋亡結(jié)果

分別與2AC組和4AC組相比，2IH組和4IH組的海馬和前額皮層區(qū)神經(jīng)元凋亡增多，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.05);與2IH組比，4IH組海馬和前額皮層區(qū)神經(jīng)元凋亡增多，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.01);2AC組與4AC組比較，海馬和前額皮層神經(jīng)元凋亡指數(shù)的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性，見圖3、表4。與4IH組比，4IHI組海馬和前額皮層區(qū)細(xì)胞凋亡減少，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.05)，見圖3、表5。

Figure 3.The TUNEL staining in hippocampus and prefrontal cortex.圖3 海馬和皮層TUNEL熒光染色

4 RT-PCR檢測幼鼠腦區(qū)腺苷A2a受體mRNA的表達(dá)

與對(duì)照組相比，2IH組和4IH組海馬和前額皮層區(qū)腺苷A2a受體的mRNA表達(dá)升高，4IH組較2IH組升高更明顯，差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.05);2AC組與4AC組比較，海馬和前額皮層區(qū)腺苷A2a的mRNA表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＞0.05)，見表4。

表4 幼鼠海馬及前額皮層的神經(jīng)元凋亡指數(shù)和腺苷A2a受體mRNA表達(dá)量的比較Table 4.The apoptotic index(AI)and relative mRNA expression of adenosine A2a receptor(A2aR)in the hippocampal and forehead cortical tissues in the young rats(Mean±SD.n=2～3)

表5 AMPK抑制劑對(duì)幼鼠神經(jīng)元調(diào)亡的影響Table 5.The apoptotic index(AI)in the hippocampal and forehead cortical tissues in the young rats between 4IH and 4IHI groups(%.Mean±SD.n=3)

5 Western blot法檢測幼鼠腦區(qū)p-AMPK和 pmTOR的蛋白水平

與對(duì)照組比，2IH和4IH組海馬和前額皮層區(qū)的p-AMPK蛋白含量增加，4IH組較2IH組增加明顯，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.05)，見圖4、表6;與對(duì)照組相比，2IH組和4IH組海馬和前額皮層區(qū)的pmTOR蛋白含量下降，4IH組較2IH組下降更明顯，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.05);海馬和前額皮層區(qū)的p-AMPK和p-mTOR的蛋白含量在2AC組和4AC組之間的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＞0.05);與4IH組比，4IHI組海馬和前額皮層區(qū)的p-AMPK蛋白含量下降，p-mTOR蛋白含量升高，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性(P＜0.05)，見圖4、表7。

Figure 4.The protein levels of p-AMPK and p-mTOR in the hippocampal and forehead cortical among groups.圖4 各組間海馬和前額皮層區(qū)p-AMPK和p-mTOR蛋白的含量

表6 SD幼鼠腦區(qū)p-AMPK和p-mTOR蛋白水平的比較Table 6.The protein levels of p-AMPK and p-mTOR in the hippocampal and forehead cortical tissues in the young rats(Mean±SD.n=3)

表7 AMPK抑制劑對(duì)幼鼠神經(jīng)元p-AMPK及p-mTOR的影響Table 7.The protein levels of p-AMPK and p-mTOR in the hippocampal and forehead cortical tissues in the young rats between 4IHI and 4IHI groups(Mean±SD.n=3)

討論

睡眠呼吸暫停綜合征在成人和兒童都是較常見的一種臨床病癥，兒童發(fā)病率在1%～3%之間，成人發(fā)病率在2%～4%之間［9］。OSAHS的主要致病機(jī)制為反復(fù)的低氧-復(fù)氧循環(huán)過程，本模型中可見最低PO2為(43±4)mmHg，最低SO2為(76±3)%，復(fù)氧后可見氧分壓及氧飽和度可上升至95%以上，并隨90s的周期波動(dòng)。與OSAHS患者的血液內(nèi)氧分壓及氧飽和度變化一致。我們前期實(shí)驗(yàn)［8］驗(yàn)證了慢性間歇性低氧可模擬OSAHS的病理生理變化。目前認(rèn)為OSAHS可累及多個(gè)系統(tǒng)，如內(nèi)分泌、心血管、神經(jīng)系統(tǒng)。在OSAHS患兒神經(jīng)系統(tǒng)癥狀最為突出，主要表現(xiàn)為認(rèn)知功能障礙。O’Brien曾對(duì)35例OSAHS兒童進(jìn)行研究，發(fā)現(xiàn)OSAHS兒童存在注意力不集中、執(zhí)行能力下降、語言能力下降、學(xué)習(xí)能力下降［10］，而經(jīng)過手術(shù)或正壓通氣治療后的兒童夜間血氧飽和度下降程度減小，神經(jīng)系統(tǒng)癥狀改善，說明OSAHS夜間低氧對(duì)兒童大腦產(chǎn)生損傷。OSAHS夜間低氧模式即慢性間歇性低氧，更多的臨床資料［11］及實(shí)驗(yàn)?zāi)Ｐ脱芯浚?2］證實(shí)，慢性間歇性低氧導(dǎo)致腦結(jié)構(gòu)、功能、生理發(fā)生改變［13］。本實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果顯示慢性間歇性低氧組幼鼠的八臂迷宮實(shí)驗(yàn)錯(cuò)誤率增加，提示不同程度出現(xiàn)認(rèn)知功能異常。

慢性間歇低氧造成的腦損傷主要表現(xiàn)為神經(jīng)元細(xì)胞的凋亡，誘發(fā)細(xì)胞凋亡的確切機(jī)制目前尚未完全明確，近20年來研究發(fā)現(xiàn)，腺苷也參與啟動(dòng)細(xì)胞凋亡信號(hào)。腺苷在體內(nèi)分解迅速，可與腺苷受體(腺苷A1、A2a或A2b受體)結(jié)合產(chǎn)生各種相關(guān)代謝反應(yīng)，而腺苷A2a受體則是其參與凋亡的重要途徑。目前證實(shí)的是可以通過使用腺苷 A2a受體拮抗劑［14］和腺苷A2a受體基因敲除［15］的方法來減少腦損傷和神經(jīng)元凋亡，A2a受體激活PKA途徑可導(dǎo)致神經(jīng)元損傷。AMPK為PKA重要的下游蛋白，有研究表明運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元中腺苷A2a受體可通過激活PKA途徑，抑制AMPK的活性［16］，導(dǎo)致人抗原R(HuR)異常分布，從而引起神經(jīng)元退行性改變。但本實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示腺苷A2a受體的表達(dá)升高，并沒有抑制AMPK的活性，反而AMPK活性蛋白增多，這可能與慢性間歇性低氧導(dǎo)致的改變相關(guān)。

AMPK是能量調(diào)控家族中的關(guān)鍵蛋白，在腦組織低氧等應(yīng)激改變都可影響AMPK的表達(dá)［17］，腺苷A2a受體的激活可顯著增加AMPK磷酸化，增加其活性［18］。AMPK處于代謝的中心位置，同時(shí)可通過AMPK-mTOR途徑?jīng)Q定細(xì)胞代謝發(fā)展?fàn)顟B(tài)。但缺氧后腦組織中活化或磷酸化的AMPK作用仍存在爭議。研究顯示在組織缺血時(shí)，激活A(yù)MPK可起保護(hù)作用，AMPK通過改變細(xì)胞內(nèi)AMP水平減少組織凋亡;體外實(shí)驗(yàn)顯示，應(yīng)用少量 AMPK激動(dòng)劑激活A(yù)MPK，可減少海馬神經(jīng)元及膠質(zhì)細(xì)胞凋亡，避免低血糖應(yīng)激、谷氨酸毒性、神經(jīng)酰胺等對(duì)海馬及膠質(zhì)細(xì)胞的損害［19］。但研究得出相反的結(jié)論，腦組織缺血、缺氧后過度激活A(yù)MPK活性，造成細(xì)胞毒性作用，致細(xì)胞凋亡［20］。在人神經(jīng)母細(xì)胞瘤SH-SY5Y細(xì)胞中，予AMPK激動(dòng)劑后，發(fā)現(xiàn)成纖維細(xì)胞凋亡［21］，同樣的結(jié)果顯示，在腦皮層組織中激活A(yù)MPK，皮層神經(jīng)元發(fā)生凋亡［22］。我們研究發(fā)現(xiàn)慢性間歇性低氧2IH組和4IH組較對(duì)照組海馬、前額皮層區(qū)p-AMPK表達(dá)增高，4IH組表達(dá)增加更為明顯;同時(shí)2IH組和4IH組較對(duì)照組腦區(qū)凋亡細(xì)胞增多，4IH組較2IH組增加更為明顯。這說明慢性間歇性低氧后，AMPK激活，致慢性間歇性低氧神經(jīng)元發(fā)生凋亡，影響認(rèn)知功能。而予AMPK抑制劑后，4IHI組腦區(qū)細(xì)胞凋亡減少，八臂迷宮試驗(yàn)錯(cuò)誤率下降。

mTOR是AMPK重要的下游途徑，是保守的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶，與AMPK共同調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、凋亡。當(dāng)周圍環(huán)境不利于生長如缺氧、糖含量降低等，通過mTOR調(diào)節(jié)，合成代謝減少、分解代謝增加［23］。在缺氧條件下，AMPK激活，mTOR活性抑制，蛋白的合成下降，并通過各種途徑轉(zhuǎn)換信號(hào)，比如轉(zhuǎn)錄更多的低氧誘導(dǎo)因子、4E-BP1，S6K和S6脫磷酸化作用等，從而適應(yīng)低氧環(huán)境。最新研究表明低氧通過mTOR途徑損傷海馬神經(jīng)干細(xì)胞，從而影響幼鼠海馬神經(jīng)干細(xì)胞的增殖發(fā)育，進(jìn)而影響幼鼠認(rèn)知［24］。我們研究表明2IH組、4IH組較對(duì)照組海馬、皮層區(qū)AMPK表達(dá)升高，mTOR磷酸化蛋白水平減低，4IH組下降更為明顯;說明AMPK升高，mTOR下降，最終導(dǎo)致神經(jīng)元凋亡，并且導(dǎo)致認(rèn)知功能下降。而予AMPK抑制劑后AMPK表達(dá)下降，p-mTOR水平升高，八臂迷宮錯(cuò)誤率下降。

本研究只初步觀察了慢性間歇性低氧對(duì)幼鼠腦區(qū)腺苷A2a受體、AMPK、mTOR mRNA及p-AMPK、p-mTOR蛋白水平的影響及給予AMPK抑制劑后p-AMPK、p-mTOR蛋白水平的變化，說明慢性間歇性低氧可致海馬、皮層區(qū)細(xì)胞凋亡，通過腺苷A2a受體活化，激活A(yù)MPK活性、抑制mTOR活性，我們初步推測腺苷A2a受體-AMPK-mTOR通路激活參與慢性間歇性低氧凋亡過程，進(jìn)而影響學(xué)習(xí)記憶過程。

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(責(zé)任編輯:林白霜，羅 森)

Effect of chronic intermittent hypoxia on AMPK pathway in young rats

LIANG Dong-shi1，CHEN Li-ya2，HONG Fang-fang2，LIN Jing2，WEN Zheng-wang3，LI Xiu-cui4，CAI Xiao-hong2

(1Department of Emergency，2Department of Pneumology，3Department of Infectious Diseases，4Department of Neurology，The Second Affiliated Hospital＆Yuying Children’s Hospital，Wenzhou Medical University，Wenzhou 325000，China.E-mail:caixh839@sina.com)

AIM:To investigate the effect of chronic intermittent hypoxia on AMP-activated protein kinase (AMPK)pathway in the brain of young rats.METHODS:Part one:SD mice(3～4 weeks old)were randomly divided into 4 groups(n=8):simulated air control group for 2 weeks(2AC)，chronic intermittent hypoxia group for 2 weeks (2IH)，simulated air control group for 4 weeks(4AC)and chronic intermittent hypoxia group for 4 weeks(4IH).Part two:SD mice(3～4 weeks old)were randomly divided into 2 groups(n=8):chronic intermittent hypoxia group for 4 weeks(4IH)and chronic intermittent hypoxia group treated with AMPK inhibitor for 4 weeks(4IHI).After modeling，the eight-arm maze test was performed.TUNEL method was used to detect the neuronal apoptosis in the hippocampal and prefrontal cortical tissues.The mRNA expression of adenosine A2a receptor was examined by RT-qPCR，and the protein levels of phosphorylated AMPK(p-AMPK)and mammalian target of rapamycin(p-mTOR)were determined by Western blot.RESULTS:Compared with control group，the numbers of reference memory error(RME)，working memory error(WME) and total error(TE)in 2IH group and 4IH group significantly increased(P＜0.01).Compared with 2IH group，the numbers of errors in 4IH group also increased significantly(P＜0.01).Compared with 4IH group，the values in 4IHI group significantly decreased.Compared with control group，the neuronal apoptosis of hippocampus and prefrontal cortex in 2IH group and 4IH group increased，and that in 4IH group was more evident(P＜0.05).In 4IHI group，the neuronal apoptosis decreased.The mRNA expression of adenosine A2a receptor in the hippocampal and cortical tissues in 2IH group and 4IH group was higher than that in control group.The protein level of p-AMPK was higher，and p-mTOR was lower in 2IH group and 4IH group，and those in 4IH group were more evident(P＜0.05).Compared with 4IH group，the protein level of p-AMPK was lower，and p-mTOR was higher in 4IHI group.CONCLUSION:Chronic intermittent hypoxia induces neuronal apoptosis，resulting in impairment of learning and memory in a time-dependent manner by upregulating adenosine A2a receptor，activating AMPK activity，and inhibiting mTOR phosphorylation in rats.

Chronic intermittent hypoxia;Adenosine A2a receptor;AMP-activated protein kinase;Mammalian target of rapamycin;Hippocampus;Prefrontal cortex

R714.253;R363.2

A

10.3969/j.issn.1000-4718.2016.07.008

1000-4718(2016)07-1200-08

2015-06-15

2016-06-03

浙江省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No.Y2110277);浙江省科技廳公益性技術(shù)應(yīng)用研究計(jì)劃資助項(xiàng)目(No.2013C33174);溫州市科學(xué)技術(shù)局科技合作項(xiàng)目(No.H20130001);浙江省醫(yī)藥衛(wèi)生科技計(jì)劃(No.2014ZDA014);國家衛(wèi)計(jì)委國家重點(diǎn)臨床專科開放課題(No.20130201)

△Tel:0577-88002125;E-mail:caixh839@sina.com