張秋墨 金丹
【摘要】目的:構(gòu)建能夠?qū)π∈蠓闻茛蛐蜕掀ぜ毎M行分離、原代培養(yǎng)與鑒定的方法,從而對建立穩(wěn)定高效的細胞膜性起到積極的促進作用。方法:(1)使用低濃度胰酶聯(lián)合Ⅰ型膠原酶消化法,對小鼠的肺泡Ⅱ型上皮細胞進行分離;(2)經(jīng)差速離心差速貼壁和免疫黏附法對Ⅱ型上皮細胞進行純化及原代培養(yǎng)。并倒置顯微鏡對細胞形態(tài)及生長狀況進行觀察,測定肺泡Ⅱ型上皮細胞的產(chǎn)量、活力以及純度。對肺泡表面活性蛋白A和C的表達進行免疫細胞化學染色鑒定,使用透射電鏡對肺泡Ⅱ型上皮細胞的特異性細胞結(jié)構(gòu)進行鑒定。結(jié)果:每只小鼠所獲得的肺泡Ⅱ型上皮細胞數(shù)量為 ,純度為 ,細胞活力為 。且原代肺泡Ⅱ型上皮細胞在對倒置顯微鏡下為立方形或圓形,細胞質(zhì)內(nèi)存在許多差別非常明顯的細小顆粒,生長方式為島狀;在免疫細胞化學鑒定方面,肺泡表面的活性蛋白A為棕黃色,C為綠色,二者都定位表達于細胞漿;透射電鏡可見特征性板層小體及細胞游離面大量微絨毛。結(jié)論:胰酶聯(lián)合膠原酶消化,差速離心差速貼壁和免疫黏附純化法能夠獲得產(chǎn)量和純度都具有優(yōu)勢的AECⅡ,符合一般的體外實驗的要求。
【關鍵詞】原代分離;小鼠;肺泡Ⅱ型上皮細胞;方法;模型
1材料和方法
1.1材料
設計:單一樣本觀察。
地點:XX大學中心實驗室。
材料:健康清潔的小鼠6只,雌雄均為3只,體重19~23g。在實驗中對動物的處置符合國家《關于善待動物的指導性意見》中的相關規(guī)定。
試劑及儀器主要包括DEME培養(yǎng)基、 青霉素、 鏈霉素、Ⅰ型膠原酶、胰蛋白酶等等以及兔抗鼠SP-A-抗、SP-C-抗、多聚賴氨酸、SABC試劑盒、DAB試劑盒、高速臺式離心機、 培養(yǎng)箱以及倒置顯微鏡和透射電鏡等等。
1.2方法
小鼠肺泡Ⅱ型上皮細胞分離:將小鼠脫頸處死,盡快取下肺組織并洗干凈;將其剪成小塊;放入10mL的離心管,以2mL/只小鼠的標準加入1g/L胰蛋白酶。將吸管吹打均勻后在37℃的溫度孵育5min,將消化好的細胞懸液移除,并加入與之等量的含10%胎牛血清的DEME中止消化;使用同法用1g/L胰蛋白酶對肺組織進行5mim的消化,將消化好的細胞懸液移除并中止消化;在剩余肺組織中,按上述標準加入Ⅰ型膠原酶,孵育15min,移除細胞懸液,加入同上的胎牛血清,中止消化;吸管混勻后用過濾、離心、去上清,用DEME重懸沉淀。
小鼠肺泡Ⅱ型上皮細胞純化與培養(yǎng):將肺細胞懸液接種入包被小鼠1gG的培養(yǎng)皿中,并孵育,吸出含未黏附細胞的液體接種于另一包被小鼠的1gG培養(yǎng)皿中,同法繼續(xù)孵育2次,并使用胎牛血清重懸沉淀,并接種于培養(yǎng)皿和培養(yǎng)板中,24h后換液,此時貼壁的即為Ⅱ型上皮細胞。
小鼠肺泡Ⅱ型上皮細胞的鑒定:將其置于6孔培養(yǎng)板內(nèi),并使用多聚賴氨酸浸泡,吸出多聚賴氨酸后徹底吹干。對純化后的肺細胞懸液濃度進行調(diào)整并接種于蓋玻片,并加入SP-A-抗及SP-C-抗,進行免疫細胞化學操作,然后置于倒置顯微鏡下觀察。
2結(jié)果
在AECⅡ的產(chǎn)量、純度及活力方面,每只小鼠的平均值分別為 、 、 。
倒置顯微鏡下,免疫黏附純化后的AECⅡ在接種后的12~18h開始伸展貼壁,形狀為圓形活力放心,且有小顆粒,胞核明顯。24h后逐漸融合。48h之內(nèi)為多邊形,72h后顆粒減少。六七天后無法辨認Ⅱ型細胞形態(tài)。而免疫黏附細胞48h后大量纖維細胞貼壁生長,呈不規(guī)則三角形或梭形。
透射電鏡下,小鼠AECⅡ呈圓形或立方形,胞質(zhì)內(nèi)有小泡,細胞游離面見大量微絨毛。其中圖1為倒置顯微鏡下原代培養(yǎng)的小鼠AECⅡ。
3討論
就目前的技術(shù)來說,從肺組織中將AECⅡ分離出來最常用的方法是酶消化法。常用的消化酶有胰蛋白酶、彈性蛋白酶和膠原酶等。本次研究中使用的是胰蛋白酶聯(lián)合Ⅰ型膠原酶的方式,而且降低了胰蛋白酶的消化濃度和時間。使用這種方式的目的,一是為了降低胰蛋白酶對肺泡上皮細胞的損傷,二是為了保證AECⅡ獲取的數(shù)量。膠原酶能夠?qū)毎|(zhì)起到消化作用,但對上皮細胞的影響不大。在細胞分離的過程當中,因為酶會對細胞產(chǎn)生一定的損害,細胞釋放出DNA,并與細胞外基質(zhì)形成DNA蛋白復合物,從而將細胞聚集起來。因此,為了使細胞無法聚集成團,經(jīng)常使用脫氧核糖核酸酶進行控制。在本次研究中,整個分離過程也都存在脫氧核糖核酸。而且,提高細胞活性的條件還包括保持低溫、縮短細胞分離的時間。
肺組織中的細胞較多,經(jīng)過酶消化后得到的細胞懸液中包括AECⅡ、纖維細胞、淋巴細胞等等。這樣的AECⅡ是不符合實驗研究的需要的,必須對其進行純化。AECⅡ純化方法種類較多,例如免疫黏附選擇、密度梯度離心法、單克隆抗體技術(shù)、貼壁選擇以及流式細胞儀篩選等等。每種方式均有自身的優(yōu)缺點,但部分方法的操作過程較為復雜,而且結(jié)果并不是很理想,細胞的數(shù)量較少,也容易受損。而使用差速離心差速貼壁和免疫黏附法對其進行純化,所得到的產(chǎn)量、純度、活力等均較高。本次研究中分別達到了 、 、 。
AECⅡ的鑒定主要是通過自身的形態(tài)及特異性來實現(xiàn)對標志物的表達。AECⅡ特異表達的物質(zhì)較多,例如SP-A、SP-B、SP-C等等。完全分化的AECⅡ最具代表性的表型是表達表面活性蛋白。在AECⅡ中,SP-A的含量最多,特異性及敏感性較高,檢出比較容易,因此是對免疫細胞進行化學鑒定的一種新方式。而SP-C是僅在AECⅡ上表達的唯一活性蛋白,因此也可使用它來進行AECⅡ的鑒定。在本次研究中,同時使用了SP-A和SP-C進行鑒定,相互之間取長補短,使得鑒定結(jié)果的可靠性增加,而且在20h就能完成,使得鑒定時間縮短。
結(jié)束語:
綜上所述,胰酶聯(lián)合膠原酶消化,差速離心差速貼壁和免疫黏附純化法能夠獲得產(chǎn)量和純度都具有優(yōu)勢的AECⅡ,符合一般的體外實驗的要求。
【參考文獻】
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