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      我國北方9份旱生-沙生植物蒙古冰草遺傳多樣性研究

      2016-04-27 03:36:45李曉全高有漢劉揚(yáng)索培芬韓冰
      草業(yè)學(xué)報 2016年3期
      關(guān)鍵詞:遺傳多樣性

      李曉全,高有漢,劉揚(yáng),索培芬,韓冰*

      (1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010010; 2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院草原研究所,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010010 )

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      我國北方9份旱生-沙生植物蒙古冰草遺傳多樣性研究

      李曉全1,2,高有漢1,劉揚(yáng)1,索培芬1,韓冰1,2*

      (1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010010; 2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院草原研究所,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010010 )

      摘要:蒙古冰草因其抗寒、抗旱特性,是歐亞大陸荒漠草原優(yōu)勢植物之一。本文從染色體倍性及SSR序列長度多態(tài)性兩個方面對采自中國北方境內(nèi)的9個蒙古冰草居群進(jìn)行遺傳多樣性分析,發(fā)現(xiàn)9個蒙古冰草居群染色體基數(shù)為7,均為二倍體,在染色體倍性方面不具有多態(tài)性;共采用138對小麥SSR引物進(jìn)行擴(kuò)增分析,共有21對引物擴(kuò)增出特異性條帶,SSR引物篩選率15.2%。共擴(kuò)增出特異性條帶119條,平均每對引物擴(kuò)增出特異性條帶5.6條,SSR序列長度多態(tài)性豐富。利用POPGEN 32軟件計算9個蒙古冰草居群遺傳多樣性指標(biāo),居群P8遺傳多樣性程度最低,居群P3最高。AMOVA分析顯示,蒙古冰草的遺傳差異主要是來自居群內(nèi)個體之間。UPGMA方法聚類分析,在遺傳相似系數(shù)為0.80時,9個居群被分為三大類,居群P1~P6一類,居群P7、P8為第二類,P9被單獨分為一類。本研究為了解蒙古冰草遺傳背景及加速其資源的合理開發(fā)利用奠定了理論基礎(chǔ)。

      關(guān)鍵詞:蒙古冰草;染色體倍性;SSR;遺傳多樣性

      蒙古冰草(Agropyronmongolicum)又稱沙蘆草,多年生疏叢禾草,是旱生-沙生荒漠草原種。生長于干旱草原的典型砂質(zhì)環(huán)境,在草原化荒漠中多以伴生成分出現(xiàn)。主要分布于中國內(nèi)蒙古、河北、山西、寧夏、陜西、甘肅等省份[1]。蒙古冰草具有較高的營養(yǎng)價值,其粗蛋白質(zhì)含量要高于其他一些禾本科牧草,如抽穗期羊草(Leymuschinensis)的粗蛋白質(zhì)含量為13.52%,老芒麥(Elymussibiricus)為13.9%,而蒙古冰草則可高達(dá)18.64%,且整個生長期內(nèi),莖葉柔軟,適口性好,各類家畜均喜食[2]。而且蒙古冰草具有極高的生態(tài)價值,因其抗旱、耐寒等特性,適宜于干旱砂質(zhì)地區(qū)生態(tài)型人工草地的建植。在鄂爾多斯高原沙地草場補(bǔ)播研究中,蒙古冰草是非常優(yōu)良的牧草草種,明顯改善沙地草場生態(tài)環(huán)境[3]。

      冰草屬是小麥屬的野生近緣種屬,其抗寒、抗旱、耐鹽、抗病蟲等優(yōu)良抗性基因為小麥(Triticumaestivum)、大麥(Hordeumvulgare)等糧食作物的基因改良提供了良好的遺傳基礎(chǔ)。李立會等[4]將普通小麥與冰草(Agropyroncristatum)進(jìn)行雜交,發(fā)現(xiàn)雜交后代表現(xiàn)出良好的株型結(jié)構(gòu),大穗多粒,兼抗白粉病和黃矮病,抗旱和抗寒等特點。蒙古冰草作為冰草屬中典型代表植物,也可與其他牧草進(jìn)行遠(yuǎn)緣雜交,從而改良原有牧草品質(zhì),培育新品種。

      蒙古冰草是一種重要的資源植物,不僅具有極高的飼用價值,還具有極高的遺傳價值和生態(tài)價值。國外有關(guān)冰草的研究一直以生態(tài)建設(shè)、耐牧性和營養(yǎng)物質(zhì)的運(yùn)輸及儲存等為主[5-6]。而對冰草遺傳多樣性方面的報道很少[7]。我國對蒙古冰草遺傳多樣性的研究較多,并取得了很大進(jìn)展。解新明等[8]利用等位酶法分析了蒙古冰草6個天然居群和2個栽培品種的遺傳多樣性和居群結(jié)構(gòu),得出居群內(nèi)的遺傳多樣性高于居群間的結(jié)論。蘭保祥等[9]利用居群生物學(xué)方法,對35個蒙古冰草居群進(jìn)行形態(tài)學(xué)性狀研究,發(fā)現(xiàn)蒙古冰草在形態(tài)學(xué)性狀上具有較豐富的遺傳多樣性,而且居群內(nèi)遺傳多樣性大于居群間遺傳多樣性。包美蓮等[10]對蒙古冰草與航道冰草正反交雜種染色體加倍植株F2代及其與親本和雜種F1代進(jìn)行ISSR分析得出親本蒙古冰草與航道冰草間、航道冰草與正反交雜種染色體加倍植株F2間存在較大遺傳距離。

      蒙古冰草具有重要的生態(tài)價值、遺傳價值、飼用價值,為了更深入了解它的遺傳背景,加快蒙古冰草資源的合理開發(fā)利用以及為新品種的選育提供理論基礎(chǔ),本研究從染色體倍性及DNA序列多態(tài)性兩個方面對采自中國北方的9個蒙古冰草居群進(jìn)行遺傳多樣性分析。

      1材料與方法

      1.1材料

      供試材料是9個蒙古冰草居群,其中P1、P2材料為本實驗室野外采集,其余材料為國家牧草種質(zhì)中期庫提供(表1)。實驗于2013年2月到2013年12月室內(nèi)進(jìn)行。

      種子于室溫暗處發(fā)芽之后移植于花盆,待幼苗長至5~8 cm時,每個居群隨機(jī)選10個單株用剪刀剪下葉片,蒸餾水沖洗兩遍,用濾紙吸干水后,置于-20℃保存。采用CTAB方法對葉片提取基因組DNA[11],然后用瓊脂糖凝膠電泳檢測其含量和質(zhì)量,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2流式細(xì)胞術(shù)檢測染色體倍性

      利用流式細(xì)胞術(shù)對供試蒙古冰草材料進(jìn)行染色體倍性分析。待測細(xì)胞必須處于單細(xì)胞懸浮液狀態(tài)才可以直接進(jìn)行測定,因此選用合適的分離液制備出高質(zhì)量的單細(xì)胞懸液就成為流式分析的關(guān)鍵。配制不同的3種分離液,配方如下。

      分離液①:0.2% Triton X-100(聚乙二醇辛基苯基醚)[12]。

      分離液②:檸檬酸 0.1 mol/L,0.2% Triton X-100[12]。

      分離液③:OttoⅠ分離液:100 mmol/L 檸檬酸,0.5%(V/V)吐溫-20 (pH=2~3);OttoⅡ分離液:400 mmol/L Na2HPO4·12H2O (pH=8~9)[13]。

      表1 9個居群特征詳細(xì)介紹

      以二倍體小麥進(jìn)行分離液的篩選。室溫下,取植物新鮮葉片100 mg,加入1 mL細(xì)胞核分離液,用剪刀將葉片剪碎,50 μm孔徑過濾膜過濾,濾渣再加入1 mL分離液,過濾,合并濾液。2000 r/min離心3 min,棄上清,沉淀加分離液沖洗一次,離心,沉淀精確加入改良石碳酸品紅染色液0.5 mL,混勻染色2 min后用紅細(xì)胞計數(shù)板計數(shù)[12]。制備好的單細(xì)胞核懸液中加入200 μL 50 μg/mL碘化丙啶(PI)溶液,4℃暗處染色15 min后利用FACSCalibur流式細(xì)胞儀進(jìn)行樣品檢測,單個樣本重復(fù)3次。

      DNA 含量分布圖由流式細(xì)胞儀自動生成,數(shù)據(jù)用 Modfit 軟件進(jìn)行分析。檢測中,用已確定染色體數(shù)目的二倍體小麥作對照材料調(diào)整流式細(xì)胞儀,使對照材料的主峰位于 50 道附近,由此儀器檢測圖示當(dāng)中,50,100和 150道附近的峰顯示的細(xì)胞核相對DNA含量分別為50道的1,2和3倍。染色體倍性則為二倍體,四倍體,六倍體,其余為非整倍體。以下公式來計算核DNA含量或染色體倍性水平,待測樣DNA含量或倍性水平=對照樣核DNA含量或倍性水平×(待測樣本G0或G1熒光均值/參照樣本G0或G1峰熒光均值)。

      1.3SSR分析

      SSR引物參考Roder等[14]構(gòu)建的小麥SSR分子標(biāo)記連鎖圖,引物選取遵循均勻分布在每條染色體長臂、著絲粒附近、短臂的原則,使被選中的引物可以為蒙古冰草構(gòu)建簡易標(biāo)記連鎖圖。在http://wheat.pv.usda.gov上找到相應(yīng)的引物序列,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成共138對引物。PCR擴(kuò)增體系為dNTP 1.4 μL、MgCl22.0 μL、rTaq酶 0.3 μL、正反向引物各0.5 μL和模板DNA 1.5 μL,總體系25 μL。PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序為:94℃預(yù)變性5 min,94℃變性1 min,50~60℃(根據(jù)引物的退火溫度設(shè)定)復(fù)性50 s,72℃延伸90 s,共35個循環(huán),72℃延伸10 min,4℃保存。將PCR產(chǎn)物進(jìn)行8%的變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測,最后進(jìn)行銀染觀察其條帶情況[15]。

      在聚丙烯酰胺凝膠上以“0”和“1”統(tǒng)計SSR擴(kuò)增條帶,在相同的遷移率位置上,有擴(kuò)增條帶記為“1”,無擴(kuò)增條帶記為“0”,構(gòu)建原始“0,1”二元數(shù)列矩陣。用POPGEN 32軟件計算觀測等位基因變異數(shù)(observed number of alleles,NA)、有效等位變異數(shù)(effective number of alleles,NE)、多態(tài)位點百分比(percentage of polymorphic locus,PPL)、遺傳距離和遺傳一致性(Nei’s unbiased genetic distance and genetic identity)、香農(nóng)指數(shù)(Shannon’s information index, SI)。用AMOVA軟件分析居群間、居群內(nèi)遺傳變異。根據(jù)遺傳一致性,采用UPGMA法,利用NTSYS-pc v.2.02軟件作出聚類分析。并將聚類分析與地理距離用SPSS軟件進(jìn)行相關(guān)性分析。

      2結(jié)果與分析

      2.1流式細(xì)胞術(shù)檢測染色體倍性

      以小麥為參照物對3種分離液進(jìn)行篩選,發(fā)現(xiàn)分離液③中單細(xì)胞核數(shù)明顯多于其他分離液,所以選取分離液③用于后續(xù)實驗(表2)。

      從圖1的CK中看到,對照二倍體小麥的峰值在50道附近,即50道的G1期峰值為二倍體。調(diào)整閥值,使其G1期位于50道附近,以此檢測9個居群蒙古冰草的細(xì)胞核懸液。流式細(xì)胞儀測定結(jié)果顯示,所有居群的蒙古冰草G1期峰值處于50道附近,與對照小麥的倍性相同,均為二倍體,染色體基數(shù)為7(圖1,表3)。

      表2 不同分離液從小麥中分離的細(xì)胞核數(shù)

      2.2DNA提取結(jié)果

      利用CTAB法提取了9個蒙古冰草居群的90個單株的基因組DNA,稀釋10倍之后各取1 μL基因組DNA和1 μL 6×Loading buffer混好后,用0.7%瓊脂糖凝膠檢測。從圖2中可以看出,基因組DNA條帶清晰、整齊、亮度也好,說明DNA 含量高,DNA較完整,沒有蛋白質(zhì)污染,符合后續(xù)實驗要求。

      圖1 蒙古冰草染色體倍性熒光分析圖Fig.1 Fluorescence analysis of A. mongolicum ploidy

      居群Populations染色體倍性ChromosomeploidyS期細(xì)胞百分率ThepercentageofSperiodcells(%)G1期細(xì)胞百分率ThepercentageofG1periodcells(%)變異系數(shù)Coefficientofvariation(CV,%)居群Populations染色體倍性ChromosomeploidyS期細(xì)胞百分率ThepercentageofSperiodcells(%)G1期細(xì)胞百分率ThepercentageofG1periodcells(%)變異系數(shù)Coefficientofvariation(CV,%)CK257.3042.7010.84P5266.0633.6312.24P1258.6941.3110.99P6245.6854.3215.20P2256.4943.5111.91P7250.1549.8513.25P3257.7942.2113.39P8245.4954.5112.47P4258.0341.9712.56P9260.5839.4211.40

      2.3多態(tài)性引物的篩選

      圖2 蒙古冰草居群P1的10個單株基因組DNA電泳檢測圖Fig.2 The electrophoresis pattern of genome DNA of A. mongolicum from population P1

      多態(tài)性擴(kuò)增條帶數(shù)和其百分率是反映實驗材料多樣性程度的重要指標(biāo),同時也間接反映了引物的多態(tài)信息量。本研究采用的138對小麥SSR引物中有21對引物擴(kuò)增到明顯差異性條帶,共119條,引物篩選率15.2%。所有引物中,引物wmc744擴(kuò)增條帶數(shù)最多,為9條帶;引物wmc310、wmc491、wmc640(圖3)擴(kuò)增條帶數(shù)最少,為3條。有效等位基因數(shù)(NE)和多態(tài)性信息指數(shù)(polymorphism information coefficient,PIC)等參數(shù)是體現(xiàn)群體變異的重要指標(biāo)。PIC同時也反映了引物的多態(tài)性和區(qū)分居群的能力,其值依公式計算PIC=1-∑Pi2,其中Pi為第i個基因的基因頻率。SSR引物多態(tài)性信息指數(shù)(PIC)在0.321 (wmc640)~0.920 (cfd15) 之間,平均PIC為0.694(表5)。當(dāng)PIC大于0.5時多態(tài)性高,在本研究中,PIC大于0.5的引物共17對,占81%;當(dāng)PIC在0.25與0.5之間則多態(tài)性為中度,共有4對,分別為wmc109、wmc310、wmc468和wmc640,占19%;沒有引物的PIC低于0.25(低多態(tài)性)。說明這21對小麥SSR引物在蒙古冰草上具有較高的多態(tài)性,這21對引物可有效對9個居群進(jìn)行區(qū)分。

      圖3 引物wmc640對9個蒙古冰草居群單株基因組DNA的SSR擴(kuò)增圖譜Fig.3 SSR amplification pattern of A. mongolicum genomic DNA from 9 populations by primer wmc640

      2.4蒙古冰草居群遺傳多樣性

      在9個居群中,多態(tài)基因位點數(shù)最多的是居群P3,為52個;多態(tài)基因位點數(shù)最少的是居群P8,為33個(表4)。這表明居群P8是9個居群中多樣性程度最低的一個居群,而居群P3則是多樣性程度最高的居群。等位基因數(shù)、有效等位基因數(shù)是描述遺傳多樣性的重要指標(biāo)。等位基因數(shù)、有效等位基因數(shù)分別是居群P3、P4最高,表明這兩個居群內(nèi)多樣性程度較高;居群P5、P7最低,則代表了這兩個居群內(nèi)遺傳多樣性較低。

      2.5蒙古冰草居群遺傳分化

      居群的遺傳分化用Wright(1978)的F統(tǒng)計量來度量,其中Fis(the group of inbreeding coefficient,居群內(nèi)近交系數(shù))和Fit(the total number of inbred line, 總近交系數(shù))分別表示整個物種的基因頻率和居群的平均基因頻率偏離Hardy-weinberg遺傳平衡的程度,F(xiàn)st(the genetic differentiation,遺傳分化)表示居群間的遺傳變異占總遺傳變異的比率,用來衡量群體分化的程度。9個居群的居群內(nèi)近交系數(shù)Fis和總近交系數(shù)Fit變化范圍分別是:-1.000(引物wmc167)到0.421(引物wmc491)之間、-0.249(引物wmc109)到0.690(引物barc158)之間,平均值分別是-0.164和0.242。遺傳分化系數(shù)Fst的變化范圍0.095(引物wmc109)到0.832(引物wmc167)之間,平均0.333。居群內(nèi)近交系數(shù)Fis值為-0.164<0,表明供試材料居群內(nèi)的隨機(jī)交配雜合度過量;總近交系數(shù)Fit值為0.242≠0,表明蒙古冰草總體存在一定的近親交配?;蛄鱊m(gene flow,基因流)與居群間的基因分化有關(guān),即物種基因流越大,居群間遺傳分化越小,基因流Nm大,阻止居群間的遺傳分化。當(dāng)Nm<1時,居群間大部分遺傳分化由遺傳漂變引起;當(dāng)Nm>1時,則防止了因遺傳漂變而引起的居群間遺傳分化。本研究Nm在0.051(引物wmc167)到3.878(引物gwm664)之間,平均1.270(表5),表明供試材料居群間存在較大基因流,說明基因的遺傳漂變將不會導(dǎo)致種群遺傳分化。

      表4 9個蒙古冰草居群擴(kuò)增情況

      表5 引物擴(kuò)增情況

      Nm=1/4(1/Fst-1).

      AMOVA分析結(jié)果表明,居群間變異為16.36%,居群內(nèi)個體的變異百分比為83.64%(表6)。說明了蒙古冰草的差異主要是來自居群內(nèi)個體之間。

      表6 9個蒙古冰草居群遺傳結(jié)構(gòu)的分子方差分析

      圖4 9個蒙古冰草居群的UPGMA聚類圖 Fig.4 The UPGMA dendrogram for 9 A. mongolicum populations

      2.6蒙古冰草居群聚類分析

      利用POPGEN 32軟件計算各居群間遺傳距離和遺傳一致度,如表7。在居群間的遺傳一致度系數(shù)中,居群P2和居群P8之間遺傳一致度系數(shù)最小,為0.735,表明這兩個居群間遺傳距離最遠(yuǎn);居群P5和居群P6之間遺傳一致度系數(shù)最大,為0.959,表明這兩個居群間遺傳距離最近。依據(jù)Nei’s(1978)遺傳一致度數(shù)據(jù),利用NTSYS軟件對9個蒙古冰草居群,采用UPGMA的方法進(jìn)行聚類分析(圖4),在遺傳相似系數(shù)為0.80時,9個居群被分為三大類,前6個居群被集中于第一類,居群P7、P8被分為第二類,居群P9被單獨分為一類。將聚類結(jié)果與地理距離利用SPSS軟件進(jìn)行相關(guān)性分析,Pearson 相關(guān)性指數(shù)0.138<0.2,為無相關(guān)性。

      3討論

      蒙古冰草以其青綠期長,適口性好,被很多牲畜所喜食等諸多優(yōu)點成為中國北方草原的優(yōu)良草種,研究它的遺傳差異性為培育新品種提供理論基礎(chǔ);并且其作為小麥等糧食作物的野生近緣種,又含有與抗旱、抗寒、耐貧瘠等相關(guān)的優(yōu)良抗性基因,研究它的遺傳多樣性可為小麥等糧食作物的改良提供遺傳基礎(chǔ)。

      細(xì)胞在分裂過程中因發(fā)生染色體異常性分離而導(dǎo)致的后代細(xì)胞中核內(nèi)染色體數(shù)目不是染色體基數(shù)的整倍數(shù)的現(xiàn)象稱非整倍體發(fā)生。非整倍體是染色體變異材料,它的發(fā)現(xiàn)與應(yīng)用是遺傳研究和染色體工程育種的一項重要內(nèi)容。在植物及低等動物中,非整倍體對發(fā)育影響較小,很多非整倍體是可以存活的[16],它的出現(xiàn)為遺傳多樣性研究提供了寶貴材料。

      本研究從染色體倍性與DNA序列多態(tài)性兩個方面檢測蒙古冰草遺傳多樣性。利用流式細(xì)胞儀技術(shù)檢測發(fā)現(xiàn)所選蒙古冰草材料均屬二倍體植株,染色體基數(shù)為7,并不存在染色體非整倍性問題,供試材料在染色體倍性方面亦無遺傳多樣性,驗證了二倍體植物非整倍體的自然發(fā)生率較低的結(jié)論[17]。蒙古冰草與小麥染色體基數(shù)相同,因此試圖利用小麥SSR引物對蒙古冰草構(gòu)建簡易染色體標(biāo)記連鎖圖。用138對小麥SSR引物對采自不同地區(qū)的9個居群進(jìn)行分析,共篩選出有明顯特異性擴(kuò)增條帶的引物21對,篩選率15.22%。SSR引物具有通用性,通過梯度PCR技術(shù)利用小麥的SSR引物Xgwm32-3A對冰草進(jìn)行了成功擴(kuò)增[18]。于卓等[19]利用200對高粱(Sorghumbicolor)SSR引物對高丹草(sorghum hybrid sudangrass)新品系進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)有12對(6%)可擴(kuò)增出有多態(tài)性、清晰的條帶。因蒙古冰草與小麥的近緣關(guān)系,因此測得的引物篩選率還是較高的。

      遺傳分化是反映遺傳結(jié)構(gòu)的重要指標(biāo)。蒙古冰草居群間變異百分比為16.36%,居群內(nèi)個體的變異百分比為83.64%,且差異均達(dá)顯著水平。表明蒙古冰草的遺傳多樣性主要來自居群內(nèi)。這與蒙古冰草的異花授粉和風(fēng)媒傳粉密切相關(guān)。這種結(jié)果與解新明等[8]研究結(jié)果相一致。這說明在蒙古冰草種質(zhì)資源保護(hù)中,不僅要保護(hù)每個居群,同時更應(yīng)該注重居群內(nèi)個體間異質(zhì)性的保護(hù)?;蛄饕欢ǔ潭壬夏芊从尘尤洪g遺傳物質(zhì)的交流。大于1的基因流會抵制遺傳漂變的作用,防止由此導(dǎo)致的居群遺傳分化的發(fā)生。本研究中測得的居群間基因流Nm值為1.27,表明影響蒙古冰草遺傳結(jié)構(gòu)的主導(dǎo)因素是由于居群內(nèi)各個體間的差異。

      對9個居群進(jìn)行聚類分析發(fā)現(xiàn),遺傳距離與地理距離并無相關(guān)性。居群P3與P8采自中國內(nèi)蒙古巴彥淖爾市不同的旗縣,其遺傳相似系數(shù)為0.759,和居群P5與P6間遺傳相似系數(shù)0.959相比較小。表明供試9個蒙古冰草居群各自的地理分布并不是影響其群體遺傳結(jié)果的決定性因素。

      4結(jié)論

      采自中國北方境內(nèi)的9個居群的蒙古冰草染色體基數(shù)為7,均為二倍體,9個蒙古冰草居群在染色體倍性方面不存在多態(tài)性,不存在非整倍體現(xiàn)象;21對SSR引物共擴(kuò)增出特異性條帶119條,平均每對引物擴(kuò)增出特異性條帶5.6條。在遺傳相似系數(shù)為0.80時,9個居群被分為三大類。本研究揭示了蒙古冰草的遺傳多樣性及遺傳結(jié)構(gòu)影響因素,為物種種質(zhì)資源保護(hù)和利用提供了重要依據(jù)。

      References:

      [1]Yun J F, Mi F G. The species and distribution ofAgropyrongaertngrass. Chinese Journal of Grassland, 1989, (3): 14-17.

      [2]Yun J F, Mi F G.AgropyronmongolicumKeng: a good grass in the drought region. Grassland and Prataculture, 1990, (2): 70-71.

      [3]An Y, Wang Y Q, Chen M,etal. Research of the interseeding technique and effects of the practice on sandy pasture. Journal of Grassland, 1997, (1): 33-41.

      [4]Li L H, Yang X M, Li X Q,etal. Introduction of desirable genes fromAgropyroncristatuminto common wheat by intergeneric hybridization.Scientia Agricultura Sinica, 1998, 31(6): 1-5.

      [5]Jensen K B. Cytogenetics ofElymusmagellanicusand its intra-generic and inter-generic hybrids withPseudoroegneriaspicata,Hordeumviolaceum,Elymustrachycaulus,E.lanceolatus, andE.glaucus(Poaceae, Triticeae). Genome, 1993, 36(1): 72-76.

      [6]Yang Y, Liu D J. Production, morphology and cytogenetics of intergeneric hybrids ofElymusspecies withTriticumaestivumL. and their backcross derivatives.Genome, 1987, 29(5): 689-694.

      [7]Li J X. Genetic Diversity of Germplasm Resources ofAgropyroncristatumin Inner Mongolia[D]. Hohhot: Inner Mongolia Agriculture University, 2005.

      [8]Xie X M, Yun J F, Zhao B,etal. Allozyme analysis of genetic diversity ofAgropyronmongolicum. Pratacultural Science, 2001, 18(6): 6-11.

      [9]Lan B X, Li L H, Wang H. Genetic diversity ofAgropyronmongolicumKeng populations. Scientia Agricultura Sinica, 2005, 38(3): 468-473.

      [10]Bao M L, Yu Z, Ma Y H,etal. ISSR analysis on chromosome doubling plants F2of reciprocal hybrids betweenAgropyronmongolicumandA.cristatumcv. Fairway. Chinese Journal of Grassland, 2010, 32(5): 31-35.

      [11]Han B, Zhao M L, Zhang H M,etal. Study on extraction method of genome DNA inStipa. Journal of Inner Mongolia Agricultural University, 2002, (4): 32-35.

      [12]Li T J, Shi J Y, Zhang X W. The preparation method of periwinkle leaf cell suspension.Research and Practice of Chinese Medicines, 2009, (4): 31-32.

      [13]Gui Y J, Wang C, Quan L Y. Comparative analysis ofPhyllostachysheterocycla(Carr.) Mitford cv.pubescensgenome size and sequence. Science in China C: Life Science, 2007, 37(4): 488-492.

      [14]Roder M S, Korzun V, Wendehake K,etal. A microsatellite map of wheat.Genetics, 1998, 149(4): 2007-2023.

      [15]Panaud O, Chen X, McCouch S R. Development of a microsatellite markers and characterization of simple sequence length polymorphism (SSLP) in rice (OryzasativaL.). Molecular and General Genetics, 1996, 252: 597-607.

      [16]Tang Q L. Identification of Genome Components Among Species of Genus Zea and Introgression of Maize Relatives for Maize Improvement[D]. Yaan: Sichuan Agriculture University, 2003.

      [17]Khush G. Cytogenetics of Aneuploids[M]. New York: Academic Press, 1973.

      [18]Shan D, Zhao M L, Yun J F,etal. Preliminary study on application ofStipakryloviiandAgropyroncristatumby SSR primers derived from wheat. Grassland of China, 2005, (4): 20-34.

      [19]Yu Z, Xie R, Yu X X,etal. SSR analysis of sorghum-sudangrass new strains with low hydrocyanic acid content. Acta Prataculturae Sinica, 2014, 23(1): 223-228.

      參考文獻(xiàn):

      [1]云錦鳳, 米福貴. 冰草屬牧草的種類與分布. 中國草地學(xué)報, 1989, (3): 14-17.

      [2]云錦鳳, 米福貴. 干旱地區(qū)一種優(yōu)良牧草——蒙古冰草. 草原與草業(yè), 1990, (2): 70-71.

      [3]安淵, 王育青, 陳敏, 等. 沙地草場補(bǔ)播技術(shù)及其生態(tài)效益研究.草地學(xué)報, 1997, (1): 33-41.

      [4]李立會, 楊欣明, 李秀全, 等. 通過屬間雜交向小麥轉(zhuǎn)移冰草優(yōu)異基因的研究. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 1998, 31(6): 1-5.

      [7]李景欣. 內(nèi)蒙古冰草種質(zhì)資源遺傳多樣性研究[D]. 呼和浩特: 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2005.

      [8]解新明, 云錦鳳, 趙冰, 等. 蒙古冰草遺傳多樣性的等位酶分析. 草業(yè)科學(xué), 2001, 18(6): 6-11.

      [9]蘭保祥, 李立會, 王輝. 蒙古冰草居群遺傳多樣性研究. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2005, 38(3): 468-473.

      [10]包美蓮, 于卓, 馬艷紅, 等. 蒙古冰草與航道冰草正反交雜種染色體加倍植株 F2的 ISSR分析. 中國草地學(xué)報, 2010, 32(5): 31-35.

      [11]韓冰, 趙萌莉, 張紅梅, 等. 針茅屬植物基因組DNA提取方法的研究. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2002, (4): 32-35.

      [12]李鐵軍, 石俊英, 張孝衛(wèi). 長春花葉片細(xì)胞核懸液的簡便制備方法. 現(xiàn)代中藥研究與實踐, 2009, (4): 31-32.

      [13]桂毅杰, 王晟, 全麗艷. 毛竹基因組大小和序列構(gòu)成的比較分析. 中國科學(xué) C 輯: 生命科學(xué), 2007, 37(4): 488-492.

      [16]唐祈林. 玉蜀黍?qū)倩蚪M構(gòu)成及創(chuàng)制玉米新種質(zhì)研究[D]. 雅安: 四川農(nóng)業(yè)大學(xué), 2003.

      [18]珊丹, 趙萌莉, 云錦鳳, 等. 小麥微衛(wèi)星引物在克氏針茅和冰草中應(yīng)用的初步研究. 中國草地, 2005, (4): 20-34.

      [19]于卓, 謝銳, 于肖夏, 等. 低氫氰酸含量高丹草新品系及其親本的SSR分析. 草業(yè)學(xué)報, 2014, 23(1): 223-228.

      The genetic diversity of 9 populations of dry-desertAgropyronmongolicumcollected in northern China

      LI Xiao-Quan1,2, GAO You-Han1, LIU Yang1, SUO Pei-Fen1, Han Bing1,2*

      1.CollegeofLifeSciencesInnerMongoliaAgriculturalUniversity,Hohhot010010,China; 2.GrasslandResearchInstituteofChineseAcademyofAgriculturalSciences,Hohhot010010,China

      Abstract:Agropyron mongolicum is one of the dominant species in desert steppe across Eurasia, due primarily to its cold and drought resistance. In this study, we analyzed chromosome polymorphism and DNA polymorphism in 9 populations of A. mongolicum in northern China. The chromosome number of the 9 populations was 7. Cells were diploid and showed no polymorphism in chromosome ploidy. A total of 138 pairs of wheat SSR primers were amplified and analyzed. A total of 21 primer pairs were amplified with specific fragments. The screening rate of SSR primers was 15.2%. A total of 119 specific bands were amplified: specificity was 5.6 and the polymorphism of DNA was rich. POPGEN 32 software was used to calculate the genetic diversity of the 9 populations of A. mongolicum. Population P8 was found to have the least level of diversity, while P3 had the highest. AMOVA software was used to analyze genetic differentiation, indicating that genetic differences come mainly from individuals in the populations. The UPGMA method was used for a cluster analysis of the 9 populations. When the genetic similarity coefficient is 0.80, the materials tested divided into three groups: P1-P6, P7-P8 and P9. This paper lays the foundation for the development and utilization of new varieties of A. mongolicum.

      Key words:Agropyron mongolicum; chromosome ploidy; SSR; genetic diversity

      *通信作者

      Corresponding author. E-mail:hb_nmg@163.com

      作者簡介:李曉全(1991-),男,河北衡水人,在讀碩士。E-mail:1206966950@qq.com

      基金項目:國家自然科學(xué)基金(31060057),中國科學(xué)院西部之光“人才培養(yǎng)”項目匹配經(jīng)費和中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院草原研究所農(nóng)業(yè)科技創(chuàng)新工程資助。

      收稿日期:2015-04-24;改回日期:2015-07-17

      DOI:10.11686/cyxb2015219

      http://cyxb.lzu.edu.cn

      李曉全,高有漢,劉揚(yáng),索培芬,韓冰. 我國北方9份旱生-沙生植物蒙古冰草遺傳多樣性研究. 草業(yè)學(xué)報, 2016, 25(3): 77-85.

      LI Xiao-Quan, GAO You-Han, LIU Yang, SUO Pei-Fen, Han Bing. The genetic diversity of 9 populations of dry-desertAgropyronmongolicumcollected in northern China. Acta Prataculturae Sinica, 2016, 25(3): 77-85.

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