HbA1c水平對2型糖尿病患者紅細胞及胞內(nèi)血紅蛋白的影響*

葉少英，　阮　萍，　雍軍光，　沈洪濤，　廖志紅，　董曉蕾

(1廣東藥學(xué)院勞動衛(wèi)生與環(huán)境衛(wèi)生學(xué)系，廣東 廣州 510315； 2廣東藥學(xué)院生物醫(yī)學(xué)工程系，廣東 廣州 510310； 3廣東藥學(xué)院附屬門診部內(nèi)分泌科，廣東 廣州 510235； 4廣西師范大學(xué)物理科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，廣西 桂林 541001； 5中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌科，廣東 廣州 510080)

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HbA1c水平對2型糖尿病患者紅細胞及胞內(nèi)血紅蛋白的影響*

葉少英1，阮萍2△，雍軍光3，沈洪濤4，廖志紅5，董曉蕾1

(1廣東藥學(xué)院勞動衛(wèi)生與環(huán)境衛(wèi)生學(xué)系，廣東 廣州 510315；2廣東藥學(xué)院生物醫(yī)學(xué)工程系，廣東 廣州 510310；3廣東藥學(xué)院附屬門診部內(nèi)分泌科，廣東 廣州 510235；4廣西師范大學(xué)物理科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，廣西 桂林 541001；5中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院內(nèi)分泌科，廣東 廣州 510080)

[摘要]目的： 探討不同糖化血紅蛋白(HbA1c)水平對2型糖尿病(T2DM)患者紅細胞及胞內(nèi)血紅蛋白(Hb)的影響。方法：選取健康人30名為對照組(H組)，T2DM患者102例，按HbA1c水平分為3組：血糖控制良好組(A組)30例(HbA1c <7.0%)；血糖控制較差組(B組)36例(7.0%≤HbA1c<9.0%)；持續(xù)高血糖組(C組)36例(HbA1c≥9.0%)。利用新型靜態(tài)顯微圖像分析技術(shù)和紫外-可見光譜技術(shù)，對各組紅細胞及胞內(nèi)Hb進行檢測。結(jié)果：與H組比較，A、B、C組紅細胞的圓度因子明顯增大(P<0.05)且與HbA1c水平呈正相關(guān)；B組紅細胞的截面積和C組紅細胞的全部形態(tài)參數(shù)均較H組明顯增大(P<0.05)；A、B、C組，除A、B組間紅細胞長短軸參數(shù)無顯著差異，其它組間參數(shù)比較差異有統(tǒng)計學(xué)顯著性。與H組比較，A、B、C組Hb的紫外-可見光譜的譜型和譜峰未出現(xiàn)明顯差異，但B、C組Hb的吸光度較H組明顯下降(P<0.01)，且C組Hb的吸光度也明顯低于A組(P<0.05)，隨HbA1c水平的升高呈逐漸下降趨勢。結(jié)論：隨HbA1c水平的升高，T2DM患者紅細胞的形態(tài)發(fā)生改變，變形功能逐漸減弱，胞內(nèi)Hb的結(jié)構(gòu)可能發(fā)生改變。

[關(guān)鍵詞]HbA1c； 紅細胞； 血紅蛋白； 2型糖尿病

2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus，T2DM)是一類病因尚未明確的非胰島素依賴型的終身性疾病，可引發(fā)嚴重并發(fā)癥，已成為繼癌癥和冠心病之后的又一嚴重威脅人類健康的全球性疾病[1]。糖化血紅蛋白(glycosylated hemoglobin type A1c，HbA1c)是評價患者血糖控制情況、療效判定和預(yù)測并發(fā)癥的重要指標。已有研究表明，HbA1c水平升高加重了糖尿病患者體內(nèi)的氧化應(yīng)激[2]，增加了全血黏度和血小板的聚集[3]，與糖尿病多種并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)，是糖尿病發(fā)病機制的重要影響因素。

T2DM是多病因所致的內(nèi)分泌疾病，從血液循環(huán)系統(tǒng)入手研究其發(fā)病機制具有重要意義。紅細胞是人體重要的循環(huán)細胞，主要承擔人體內(nèi)O2和CO2的運輸，這一功能的正常發(fā)揮取決于紅細胞的形態(tài)以及胞內(nèi)血紅蛋白(hemoglobin，Hb)的結(jié)構(gòu)和功能。已有研究報道，溫度、pH值、滲透壓等生存環(huán)境的改變可引起紅細胞形態(tài)、變形性以及Hb結(jié)構(gòu)改變，導(dǎo)致紅細胞和Hb的功能受損，生理活性降低[4-6]。這些改變都會引起微血管的血液流變學(xué)改變，引發(fā)微循環(huán)障礙。T2DM患者的高血糖改變了正常的血液環(huán)境，可能影響紅細胞和Hb的結(jié)構(gòu)及功能，但當前仍缺少HbA1c水平對單個紅細胞的具體形態(tài)、變形性以及胞內(nèi)Hb影響的分析。

本研究利用新型顯微靜態(tài)圖像分析技術(shù)對健康人和不同HbA1c水平的T2DM患者的單個活態(tài)紅細胞的形態(tài)進行觀察和測量，同時結(jié)合紫外-可見光譜技術(shù)對紅細胞內(nèi)的Hb進行檢測分析，探討HbA1c水平對T2DM患者紅細胞及胞內(nèi)Hb的影響。

材料和方法

1研究對象

選取2015年1～7月期間于中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院體檢的健康人為對照組，內(nèi)分泌科住院的T2DM患者為病例組。其中，健康人30名(H組；男15例，女15例)，確診T2DM患者102例，均以黃脲類聯(lián)合雙胍類治療，如血糖控制不佳者改為胰島素強化治療，按其HbA1c水平分為3組：血糖控制良好組(A組)30例(HbA1c<7.0%；男15例，女15例)；血糖控制較差組(B組)36例(7.0%≤HbA1c<9.0%；男18例，女18例)；持續(xù)高血糖組(C組)36例(HbA1c≥9.0%；男20例，女16例)。上述研究對象的性別、年齡無顯著差異。入選標準：(1)符合1999年WHO糖尿病診斷標準；(2)無急慢性糖尿病并發(fā)癥；(3)無惡性腫瘤、嚴重感染等疾病，無心、腦、腎等重要器官并發(fā)癥及消化系統(tǒng)疾病；(4)無貧血等血液系統(tǒng)疾病，近1個月內(nèi)未使用抗生素免疫抑制劑、抗血小板凝集類藥物。

2方法

2.1樣本采集與臨床指標測定所有研究對象均禁食8 h，次晨空腹抽取靜脈血3 mL,EDTA-K2抗凝，測定空腹血糖(fasting plasma glucose，F(xiàn)PG)和HbA1c。FPG采用葡萄糖氧化酶法，HbA1c采用高效液相法。記錄研究對象的性別、年齡，測量其身高、體重，計算體重指數(shù)(body mass index，BMI)。

2.2紅細胞形態(tài)測定1 mL全血2 000 r/min離心5 min，除上層血漿，血小板及白細胞，余壓積紅細胞。以等滲PBS[6]混勻紅細胞，2 000 r/min離心5 min，重復(fù)洗滌3次，至上清液澄清透明。以1∶1 000抽取洗滌后壓積紅細胞與含5%小牛血清白蛋白的PBS (pH 7.4)配制紅細胞懸液，用于檢測紅細胞靜態(tài)形態(tài)。將制好的紅細胞懸液置于Nikon TS100-F倒置顯微鏡下，利用自主研發(fā)的新型顯微成像系統(tǒng)[7]觀察和拍攝紅細胞的靜態(tài)圖像，結(jié)合顯微圖像分析技術(shù)和Image-Pro Plus 6.0專業(yè)分析軟件對每個紅細胞的接觸面積、長短軸以及圓度因子(roundness effect factor，REF)等幾何參數(shù)進行測量分析。每個樣本測量50～80個細胞。

2.3胞內(nèi)Hb光譜測定取1.5 mL抗凝全血，2 000 r/min離心10 min，除上層血漿、血小板及白細胞。壓積紅細胞以10倍體積預(yù)冷的0.9% NaCl溶液混勻，3 500 r/min離心5 min，除上清，重復(fù)洗滌3次。以10倍體積預(yù)冷蒸餾水振動裂解紅細胞，置4 ℃冰箱過夜，充分釋放胞內(nèi)Hb。次日4 ℃、12 000 r/min離心45 min，抽取上層Hb粗提液，0.22 μm一次性濾膜過濾后以葡聚糖G-75凝膠柱純化，收集洗脫液，并以SDS-PAGE進行Hb純度鑒定，純度達到95%以上，Hb透析除鹽濃縮后置于4 ℃保存。

取100 μL純化Hb溶液，以2 mL去離子水稀釋，待測。采用島津UV-3010型紫外-可見光譜儀，掃描范圍190～800 nm，波長精度±0.1 nm，測定各樣本的紫外-可見吸收光譜，每個樣本重復(fù)測定3次，取其均值圖譜分析。

3統(tǒng)計學(xué)處理

數(shù)據(jù)采用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析，所有數(shù)據(jù)均進行正態(tài)性檢驗，不符合正態(tài)分布的參數(shù)進行秩和檢驗，符合正態(tài)分布的參數(shù)統(tǒng)一以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示，組間比較采用單因素方差分析，組間兩兩比較采用Bonferroni檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

結(jié)果

1各組臨床資料比較

健康對照組H與病例組A、B、C的年齡、性別差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性，與H組相比，B、C組的BMI明顯升高，差異有統(tǒng)計學(xué)顯著性(P<0.05)。與H組相比，A、B、C組的FPG以及HbA1c水平明顯增高(P<0.05)；與A組相比，B、C組的FPG以及HbA1c水平明顯升高(P<0.05)；C組FPG以及HbA1c水平均較A、B組明顯升高(P<0.05),見表1。

表1　4組病人的一般臨床資料比較

*P<0.05vsgroup H;#P<0.05vsgroup A;△P<0.05vsgroup B.

2各組紅細胞形態(tài)參數(shù)比較

紅細胞的接觸面積、長軸、短軸和REF是描述紅細胞形態(tài)的指標，表2為H組與A、B、C組的紅細胞形態(tài)參數(shù)分析結(jié)果。由表1可知，T2DM患者的紅細胞形態(tài)參數(shù)均隨HbA1c水平升高逐漸增大。A組紅細胞的接觸面積、長軸和短軸與H組比較差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性；B組紅細胞除接觸面積明顯大于H組外，其長短軸參數(shù)與H組比較差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性；C組紅細胞的全部形態(tài)參數(shù)均明顯大于H組(P<0.05)。A、B、C組，除A、B組間紅細胞長短軸參數(shù)的差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性外，其它參數(shù)的組間比較差異有統(tǒng)計學(xué)顯著性(P<0.05)。與H組相比，A、B、C組的REF均明顯增大(P<0.05)，且A、B、C組間差異有統(tǒng)計學(xué)顯著性(P<0.05)，隨HbA1c水平的升高逐漸增大。

3T2DM患者HbA1c水平與紅細胞REF相關(guān)性分析

REF是衡量紅細胞變形性的重要參數(shù)，其值在0～1之間，與紅細胞的變形能力呈負相關(guān)，REF越小表明紅細胞的變形能力越好，若REF趨近于1，表明紅細胞趨近于圓球形，剛性越大。為進一步分析HbA1c水平對T2DM患者紅細胞變形能力的影響，對患者的HbA1c水平與紅細胞REF描繪散點圖并進行直線相關(guān)分析,結(jié)果表明患者的REF與HbA1c水平呈正相關(guān)(r2=0.657，P<0.01),見圖1。

4各組Hb紫外-可見光譜比較

以H組Hb的平均紫外-可見光譜為對照，與A、B、C組Hb的平均光譜進行對比分析。Hb的紫外-可見吸收光譜主要有5個吸收峰，其中414 nm歸屬于血紅素的特征吸收峰，540 nm和576 nm分別為氧合血紅蛋白(HbO2)的α和β吸收峰，可反映Hb的攜氧能力，因此本文主要針對這3個吸收峰進行分析。4組Hb吸收光譜的譜型、譜峰相似，無顯著差異，但各組Hb的吸光度差異顯著。因此，對4組Hb的414 nm、540 nm以及576 nm的吸光度值進行比較顯示，A組與H組Hb的吸光度差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性，但B、C組Hb的吸光度均較H組明顯下降(P<0.01)；與A組相比，B組Hb的吸光度降低，但差異無統(tǒng)計學(xué)顯著性，C組Hb的吸光度較A組明顯降低(P<0.05)，A、B、C組Hb的吸光度呈現(xiàn)隨HbA1c水平的升高而逐漸下降的趨勢，見圖2。

表2　4組紅細胞的形態(tài)參數(shù)比較

REF: roundness effect factor.*P<0.05vsgroup H;#P<0.05vsgroup A;△P<0.05vsgroup B.

Figure 1.The scatter plot of HbA1c level and the roundness effect factor (REF) of the erythrocytes.

圖1HbA1c水平與紅細胞圓度因子的散點圖

討論

T2DM是以慢性高血糖為主要特征，伴有糖、脂肪、蛋白質(zhì)等代謝紊亂的內(nèi)分泌疾病。隨病程的發(fā)展，患者的毛細血管基底膜增厚，微血管管腔狹窄導(dǎo)致微循環(huán)障礙，引發(fā)微血管病變等慢性并發(fā)癥[8]。HbA1c與患者血糖水平呈正相關(guān)，可良好地反映患者近8～12周的平均血糖水平，是糖尿病長期控制情況的指標之一。紅細胞變形能力和生理功能的正常發(fā)揮是保證微循環(huán)有效灌注的重要條件，也是從血液流變學(xué)角度探討T2DM及其并發(fā)癥發(fā)生發(fā)展機理和預(yù)防的重要手段和客觀指標，其中紅細胞的形態(tài)和胞內(nèi)Hb結(jié)構(gòu)是影響紅細胞變形能力和功能的重要因素[9]。紅細胞的形態(tài)、大小對其變形能力有反作用，紅細胞的直徑和表面積越大，紅細胞的變形能力越低。實驗結(jié)果表明，A、B、C病例組紅細胞的截面積和長短軸均大于對照組H，提示T2DM患者紅細胞的形態(tài)和變形能力可能已受損。A、B、C組紅細胞的截面積、長短軸逐漸增大且組間差異顯著，表明HbA1c水平的升高，可能影響紅細胞的形態(tài)變化。由于T2DM患者長期血糖控制不良易導(dǎo)致HbA1c水平升高，高血糖環(huán)境的作用可能使紅細胞的截面積和直徑均增大，形態(tài)大小改變，從而降低紅細胞的變形性。REF為紅細胞的長短軸之比，REF高表示紅細胞變形能力下降，A、B、C組紅細胞的REF均顯著大于H組，提示T2DM患者的紅細胞已從雙凹形結(jié)構(gòu)逐漸轉(zhuǎn)化為近球型[9]，紅細胞變形能力降低。進一步分析T2DM患者HbA1c水平與REF的關(guān)系，結(jié)果表明兩者呈正相關(guān)，提示HbA1c水平的升高，高血糖可能與紅細胞膜蛋白產(chǎn)生糖基化作用[10]，使紅細胞膜的成分和結(jié)構(gòu)改變，導(dǎo)致紅細胞膜流動性減弱、剛性增大，促使紅細胞趨近圓球型結(jié)構(gòu)，從而降低紅細胞的變形能力，與相關(guān)研究結(jié)論相符[11]。

Figure 2.The average ultraviolet-visible spectra of the normal Hb (H) and the Hb of the T2DM patients (A, B and C), and the absorbance change at 414 nm, 540 nm and 576 nm in different groups.**P<0.01vsgroup H;#P<0.05vsgroup A.

圖2各組Hb的紫外-可見吸收光譜以及在414 nm、540 nm和576 nm處吸光度值

Hb吸收峰的高度不僅與紅細胞內(nèi)Hb溶液濃度的高低有關(guān),而且還與Hb的理化性質(zhì)(如溶解性、穩(wěn)定性和氧化狀態(tài)等)有關(guān)[6]。結(jié)果表明，A組Hb的紫外-可見吸收光譜與H組相似，未出現(xiàn)顯著差異，但B、C組Hb的吸光度均顯著低于H組，提示T2DM患者的Hb可能發(fā)生改變。A、B、C組Hb的血紅素和HbO2的吸光度隨HbA1c水平升高逐漸降低，且A、C組間差異顯著。Hb是紅細胞的重要內(nèi)容物，紅細胞的內(nèi)黏度對紅細胞的變形能力有反作用。實驗結(jié)果提示，HbA1c水平的升高，T2DM患者的高血糖狀態(tài)可使葡萄糖滲入到紅細胞內(nèi)部，使紅細胞內(nèi)的Hb發(fā)生非酶糖化，Hb發(fā)生聚集，可溶性降低，致使紅細胞的內(nèi)黏度增大，紅細胞變形能力下降。高血糖可能也加速了患者體內(nèi)的糖基化反應(yīng)，Kristinsson等[12]研究表明蛋白糖基化反應(yīng)可降低血液環(huán)境的pH，引起Hb結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性下降，Hb的血紅素環(huán)發(fā)生位移或降解[13]，影響Hb的結(jié)構(gòu)，降低Hb與氧的親和力，減弱Hb攜氧運氧的功能，使周圍組織供氧不足，這可能是造成糖尿病慢性并發(fā)癥的重要原因之一[14]。此外，持續(xù)高血糖也可能加劇患者體內(nèi)的氧化應(yīng)激，導(dǎo)致自由基等氧化應(yīng)激產(chǎn)物增加，可能引起Hb結(jié)構(gòu)改變，影響Hb的生理功能[15]，致使HbO2含量減少，加速糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展。

實驗結(jié)果表明，T2DM患者紅細胞的變形能力隨HbA1c水平的升高逐漸降低，Hb的結(jié)構(gòu)也可能改變，提示HbA1c水平可能是造成T2DM患者紅細胞變形能力降低的重要因素，患者的血脂異常等其它因素也可能起協(xié)同作用使紅細胞變形能力進一步降低。紅細胞變形能力降低和胞內(nèi)Hb結(jié)構(gòu)改變，可使紅細胞僵硬難以通過微血管，引起微循環(huán)障礙，使周圍血管的血流量減少，紅細胞攜氧釋氧的能力降低，加重周圍組織缺血缺氧，促進糖尿病高黏血癥、糖尿病腎病、糖尿病視網(wǎng)膜病變等并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展。嚴格控制患者的HbA1c水平，早期注重改善患者紅細胞的變形能力及預(yù)防胞內(nèi)Hb結(jié)構(gòu)和功能的改變，將有助于提高2型糖尿病的療效，預(yù)防糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展。

[參考文獻]

[1]DeFronzo RA, Banerji Ma, Bray GA, et al. Determinants of glucose tolerance in impaired glucose at baseline in the Actos Now for Prevention of Diabetes (ACT NOW) study[J]. Diabetologia, 2010, 53(3):435-445.

[2]Monnier L, Colette C, Mas E, et al. Regulation of oxidative stress by glycaemic control: evidence for an independent inhibitory effect of insulin therapy[J]. Diabetologia, 2010, 53(3):562-571.

[3]Xu D, Kaliviotis E, Munjiza A, et al. Large scale simulation of red blood cell aggregation in shear flows[J]. J Biomech, 2013, 46(11):1810-1817.

[4]Jandaruang J, Siritapetawee J, Thumanu K, et al. The effects of temperature and pH on secondary structure and antioxidant activity ofCrocodylussiamensishemoglobin[J]. Protein J, 2012, 31(1):43-50.

[5]Yan YB, Wang Q, He HW, et al. Protein thermal aggregation involves distinct regions: sequential events in the heat-induced unfolding and aggregation of hemoglobin[J]. Biophys J, 2004, 86(3):1682-1690.

[6]姚成燦，黃耀熊，李校坤，等. pH 值對紅細胞膜力學(xué)特性和胞內(nèi)蛋白結(jié)構(gòu)與功能的影響[J]. 科學(xué)通報，2003, 48(10):1050-1053.

[7]Ruan P, Yong LG, Sheng HT, et al. Monitoring dynamic reactions of red blood cells to UHF electromagnetic waves radiations using a novel micro-imaging technology[J]. Electromagn Biol Med, 2012, 31(4):365-374.

[8]Fowler MJ. Microvascular and macrovascular complications of diabetes[J]. Clin Diabetes, 2008, 26(2):77-82.

[9]郝希平，岳糧躍，雷健明，等. 冠心病危重病人紅細胞流變特性和血紅蛋白結(jié)構(gòu)的研究[J]. 中國病理生理雜志，2012, 28(5):937-940, 943.

[10]Mahmoud SS. The impact of elevated blood glycemic level of patients with type 2 diabetes mellitus on the erythrocyte membrane: FTIR Study[J]. Cell Biochem Biophys, 2010, 58(1):45-51.

[11]王麗娜，周慧敏，穆立芹，等. 2 型糖尿病患者糖化血紅蛋白水平與紅細胞變形能力的相關(guān)性研究[J]. 中國血液流變學(xué)雜志, 2011, 21(3):431-433.

[12]Kristinsson HG. Acid-induced unfolding of flounder hemoglobin: evidence for a molten globular state with enhanced pro-oxidative activity[J]. J Agric Food Chem, 2002, 50(26):7669-7676.

[13]Goodarzi M, Moosavi-Movahedi AA, Habibi-Rezaei M, et al. Hemoglobin fructation promotes heme degradation through the generation of endogenous reactive oxygen species[J]. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc, 2014, 130:561-567.

[14]Chalew SA, McCarter RJ, Hempe JM. Biological variation and hemoglobin A1c: relevance to diabetes management and complications[J]. Pediatr Diabetes, 2013, 14(6):391-398.

[15]Banerjee S, Chakraborti AS. Structural alterations of hemoglobin and myoglobin by glyoxal: a comparative study[J]. Int J Biol Macromol, 2014, 66: 311-318.

(責任編輯： 陳妙玲， 羅森)

Effect of HbA1c level on erythrocytes and hemoglobin in type 2 diabetics

YE Shao-ying1, RUAN Ping2, YONG Jun-guang3, SHEN Hong-tao4, LIAO Zhi-hong5, DONG Xiao-lei1

(1DepartmentofOccupationalandEnvironmentalHealth,GuangdongPharmaceuticalUniversity,Guangzhou510315,China;2DepartmentofBiomedicalEngineering,GuangdongPharmaceuticalUniversity,Guangzhou510310,China;3DepartmentofEndocrinology,TheAffiliatedOutpatientDepartmentofGuangdongPharmaceuticalUniversity,Guangzhou510235,China;4CollegeofPhysicsandTechnology,GuangxiNormalUniversity,Guilin541001,China;5DepartmentofEndocrinologyofTheFirstAffiliatedHospital,SunYat-senUniversity,Guangzhou510080,China.E-mail: 326737727@qq.com)

[ABSTRACT]AIM: To explore the effect of HbA1c level in the patients with type 2 diabetes mellitus (T2DM) on the rheological properties of erythrocytes and the structure of hemoglobin (Hb). METHODS: The patients with T2DM were classified into 3 groups: the patients with good glycaemic control (group A, HbA1c<7.0%), the patients with poor glycaemic control (group B, 7.0%≤HbA1c<9.0%) and the patients with persistent hyperglycemia (group C, HbA1c≥9.0%). The rheological properties of a single living erythrocyte were analyzed by the techniques of static imaging and analysis. Ultraviolet-visible spectroscopy was used to study the structure of Hb. RESULTS: Compared with group H, the roundness effect factor (REF) of erythrocytes, which was positively related with HbA1c level, was significantly increased in groups A, B and C (P<0.05). The contact area of erythrocytes in group B and all the morphological parameters of erythrocytes in group C were significantly higher than those in group H (P<0.05). There were significant differences among groups A, B and C in deformation capacity and elastic parameters of the cell membrane (P<0.05), but with no difference in the long axis and short axis between group A and group B. Compared with group H, no obvious change in the spectral pattern and spectrum peak of Hb in groups A, B and C was observed. However, the absorbance of Hb, which showed a trend of gradual decline with the increase in HbA1c level, in group B and group C was significantly decreased as compared with group H (P<0.01), and the Hb absorbance in group C were also lower than that in group A (P<0.05). CONCLUSION: With the increase in HbA1c level, the morphology along with the deformation function of erythrocytes in T2DM changes and declines gradually, and the structure of Hb may also change.

[KEY WORDS]HbA1c; Erythrocytes; Hemoglobin; Type 2 diabetes mellitus

doi:10.3969/j.issn.1000- 4718.2016.03.027

[中圖分類號]R589.1; R363

[文獻標志碼]A

通訊作者△Tel: 020-39352207； E-mail: 326737727@qq.com

*[基金項目]廣東省科技計劃(No.2012B031800429; No.2014807)；國家自然科學(xué)基金資助項目(No.11265005)

[收稿日期]2015- 11- 02[修回日期] 2015- 12- 29

[文章編號]1000- 4718(2016)03- 0549- 05

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