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    兩種反轉(zhuǎn)錄熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)檢測(cè)HCV RNA的對(duì)比分析

    2016-03-10 04:40:44唐章平
    關(guān)鍵詞:受血者丙型肝炎高精度

    唐章平

    (四川省德陽(yáng)市羅江縣人民醫(yī)院檢驗(yàn)科 618500)

    ·經(jīng)驗(yàn)交流·

    兩種反轉(zhuǎn)錄熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)檢測(cè)HCV RNA的對(duì)比分析

    唐章平

    (四川省德陽(yáng)市羅江縣人民醫(yī)院檢驗(yàn)科618500)

    目的探討常規(guī)反轉(zhuǎn)錄熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)與高精度RT-qPCR檢測(cè)丙型肝炎病毒(HCV)RNA的差異,為醫(yī)院開(kāi)展院內(nèi)感染監(jiān)控提供參考。方法對(duì)2014年1月至2015年12月的459例住院受血者,采用兩種RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA,比較兩種檢測(cè)方法RNA陽(yáng)性率的表達(dá)差異。結(jié)果高精度RT-qPCR和常規(guī)RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA的陽(yáng)性率分別為3.70%(17例)、1.74%(8例),高精度RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA陽(yáng)性表達(dá)明顯高于常規(guī)RT-qPCR檢測(cè),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=11.326,P<0.05)。結(jié)論合理應(yīng)用高精度RT-qPCR對(duì)輸血前患者進(jìn)行HCV RNA檢測(cè),可以提高對(duì)HCV RNA的檢出率,減少了醫(yī)源性感染,提高了對(duì)受血患者健康狀況的判斷能力。

    丙型肝炎病毒;高精度實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈法;醫(yī)源性感染

    丙型肝炎病毒(HCV)是單股正鏈RNA病毒,近年來(lái),我國(guó)丙型肝炎患者逐漸增多,一般人群HCV陽(yáng)性率為3.2%,可引起急性肝炎,或發(fā)展成慢性肝炎,嚴(yán)重者可發(fā)展成肝硬化,甚至肝癌[1]。實(shí)驗(yàn)室檢查主要包括免疫學(xué)及分子生物學(xué)檢測(cè),反轉(zhuǎn)錄熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)是目前采用較多的檢測(cè)HCV RNA方法,是表示傳染性及復(fù)制病毒最可靠的指標(biāo),也是顯示HCV感染狀態(tài)及治療效果的重要指標(biāo)[2-3]。本研究采用兩種RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA,比較兩種檢測(cè)方法RNA陽(yáng)性率的表達(dá)差異。

    1資料與方法

    1.1一般資料本院2014年1月至2015年12月的459例住院受血者,其中男203例,女256例,年齡5~87歲,平均(33.6±15.1)歲。

    1.2儀器與試劑熒光定量PCR法均采用羅氏LightCycler*480Ⅱ?qū)崟r(shí)熒光定量PCR儀,常規(guī)RT-qPCR采用上海科華生物工程股份有限公司生產(chǎn)的HCV核酸定量試劑盒(PCR-熒光探針?lè)?,檢測(cè)的線性范圍:103~107IU/mL,高精度RT-qPCR采用羅氏診斷產(chǎn)品(上海)有限公司生產(chǎn)的丙型肝炎病毒核酸定量試劑盒(PCR-熒光探針?lè)?,檢測(cè)的線性范圍:1~15×108IU/mL,均嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。每份陽(yáng)性標(biāo)本均重復(fù)檢測(cè)2次。

    1.3檢測(cè)方法均在輸血前抽取受血著靜脈血,同時(shí)進(jìn)行高精度RT-qPCR檢測(cè)及常規(guī)RT-qPCR檢測(cè)。

    1.4統(tǒng)計(jì)學(xué)處理采用SPSS15.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理及統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,組間比較采用方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2結(jié)果

    高精度RT-qPCR和常規(guī)RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA的陽(yáng)性率分別為3.70%(17例)、1.74%(8例),高精度RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA陽(yáng)性表達(dá)明顯高于常規(guī)RT-qPCR檢測(cè),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(χ2=11.326,P<0.05)。

    3討論

    丙型肝炎是由HCV感染引起的一種主要經(jīng)血液傳播的傳染性疾病,呈世界流行趨勢(shì),其感染途徑可能有輸血感染、密切接觸、不良性行為和吸毒等。隨著《輸血法》的完善,供血中心已嚴(yán)格監(jiān)測(cè)血制品傳染性指標(biāo),保障受血者的用血安全是各個(gè)血站的一項(xiàng)重要工作[4]。但是,近年來(lái)人們發(fā)現(xiàn)經(jīng)血液傳播的HCV傳染病越來(lái)越多見(jiàn)于非輸血人群,醫(yī)務(wù)人員對(duì)患者進(jìn)行各項(xiàng)診治工作時(shí)必須提高警惕,加強(qiáng)自身安全防護(hù)措施,而提高檢測(cè)技術(shù)對(duì)HCV監(jiān)測(cè)的靈敏度和特異度是最行之有效的解決醫(yī)院交叉感染和避免醫(yī)患矛盾的途徑之一。

    自1989年科學(xué)家發(fā)現(xiàn)HCV以來(lái),已建立了針對(duì)HCV抗體、HCV RNA和HCV抗原的各種檢測(cè)方法,可定性和定量檢測(cè)HCV RNA,常見(jiàn)的方法有RT-PCR定性法、bDNA檢測(cè)技術(shù)、RT-qPCR定量法等,其中RT-qPCR的基本原理是通過(guò)引物擴(kuò)增并檢測(cè)特異性mRNA 來(lái)證實(shí)HCV的存在,具有高效率、高靈敏度、高特異度的優(yōu)點(diǎn),且操作簡(jiǎn)便,是檢測(cè)HCV RNA 比較有效的方法,也是預(yù)測(cè)和觀察抗病毒效果的重要指標(biāo)[5]。常規(guī)RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA的線性范圍為103~107IU/mL,而高精度RT-qPCR是(1~15)×108IU/mL[6],后者靈敏度明顯高于前者,這是因?yàn)楦呔萊T-qPCR是采用COBAS HCV RNA二代定量試劑,增加了針對(duì)HCV基因型4 的探針和引物,即用靶基因特異的裂解雙重標(biāo)記寡核苷酸檢測(cè)探針檢測(cè)HCV RNA,提高了檢測(cè)靈敏度[7]。高精度RT-qPCR還采用一已知數(shù)量的HCV定量標(biāo)準(zhǔn)(QS)RNA分子,是一種非傳染性體外轉(zhuǎn)錄RNA(aRNA),組成并含有與HCV靶RNA完全相同引物結(jié)合位點(diǎn)的HCV序列片段,是一種獨(dú)特的探針結(jié)合區(qū),使HCV QS擴(kuò)增子與HCV靶擴(kuò)增子區(qū)分開(kāi),還有彌補(bǔ)抑制作用并控制制備和擴(kuò)增過(guò)程,使每個(gè)標(biāo)本中HCV RNA的定量更加準(zhǔn)確[8]。

    本研究采用兩種RT-qPCR檢測(cè)HCV RNA,比較了高精度RT-qPCR與常規(guī)RT-qPCR檢測(cè)本院459例住院受血者HCV RNA陽(yáng)性率的表達(dá)差異,結(jié)果發(fā)現(xiàn),高精度RT-qPCR與常規(guī)RT-qPCR檢測(cè)HCV抗體的陽(yáng)性例數(shù)分別為17例(3.70%)、8例(1.74%)。高精度RT-qPCR對(duì)HCV抗體RNA陽(yáng)性表達(dá)率明顯高于常規(guī)RT-qPCR,其檢測(cè)精度高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。因此,采用高精度RT-qPCR對(duì)輸血前患者進(jìn)行HCV RNA檢測(cè),可以提高對(duì)HCV RNA的檢測(cè)率,但是,高精度RT-qPCR的試劑盒價(jià)格昂貴,導(dǎo)致檢測(cè)費(fèi)用大大高于常規(guī)RT-qPCR,因此,筆者認(rèn)為在臨床應(yīng)用中,監(jiān)測(cè)HCV RNA定量時(shí),可以先用常規(guī)RT-qPCR定量試劑檢測(cè),當(dāng) HCV RNA濃度下降到103以下時(shí),再用高精度RT-qPCR定量檢測(cè),是比較合理適用的檢測(cè)流程。

    本研究資料表明,為了預(yù)防輸血引起的醫(yī)療糾紛,明確輸血事故的責(zé)任,杜絕和減少醫(yī)療機(jī)構(gòu)的損失,首先應(yīng)嚴(yán)格控制血液制品的質(zhì)量,同時(shí)認(rèn)真檢測(cè)患者輸血前血液傳染性指標(biāo)。合理應(yīng)用常規(guī)和高精度RT-qPCR,可明顯提高對(duì)HCV RNA的檢出率,有助于為醫(yī)療糾紛提高可靠舉證和防止院內(nèi)感染。

    [1]李蓉.丙肝抗-HCV檢測(cè)與熒光定量PCR HCV-RNA檢測(cè)結(jié)果對(duì)比分析[J].臨床醫(yī)學(xué),2015,35(5):110-111.

    [2]王文博,許剛,查占山,等.獻(xiàn)血者HCV RNA 實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法的建立[J].中國(guó)輸血雜志,2012,25(4):351-353.

    [3]葉賢林,李活,許曉絢,等.核酸擴(kuò)增技術(shù)在獻(xiàn)血者血液HBV DNA、HCV RNA及HIV-1RNA篩查中的應(yīng)用研究[J].中國(guó)輸血雜志,2010,23(1):6-10.

    [4]戴萬(wàn)案,邱妮妮,陳麗艷,等.熒光定量PCR法與微粒子酶免分析法同步檢測(cè)血液傳播性疾病的對(duì)比分析[J].中華醫(yī)院感染學(xué)雜志,2013,23(5):1214-1216.

    [5]Schmidf M,Scifried E.Improving blood donor screening by nucleic acid technology(NAT)[J].ISBT Science Series,2010,5(1):219-229.

    [6]孫梅,談國(guó)蕾,王建芳,等.羅氏COBAS HCV RNA定量一代和二代檢測(cè)試劑對(duì)556例丙型肝炎患者HCV RNA定量檢測(cè)結(jié)果的比較[J].臨床肝膽病雜志,2014,30(12):1315-1317.

    [7]Chevalifz S,Bouvier-Alias M,Rodriguez C,et al.The Cobas AmpliPrep/Cobas TaqMan HCV test,version 2.0,real-time PCR assay accurately quantifies hepatitis C virus genotype 4 RNA[J].J Clin Microbiol,2013,51(4):1078-1082.

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    2016-01-10修回日期:2016-03-15)

    10.3969/j.issn.1673-4130.2016.12.064

    B

    1673-4130(2016)12-1737-02

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