黃 璜綜述,陳 虹審校(重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院呼吸與危重癥醫(yī)學(xué)科,重慶400016)
循環(huán)腫瘤細(xì)胞在肺癌診斷中的研究進(jìn)展
黃 璜綜述,陳 虹△審校
(重慶醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院呼吸與危重癥醫(yī)學(xué)科,重慶400016)
肺腫瘤/診斷; 血液循環(huán); 早期診斷; 預(yù)后; 綜述
肺癌是世界范圍內(nèi)最常見(jiàn)的惡性腫瘤之一,發(fā)病率及死亡率在惡性腫瘤中均位居前列[1-2],約40%的肺癌患者在初診時(shí)即合并遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移[3],從而嚴(yán)重影響肺癌患者預(yù)后。目前肺癌診斷方法(包括篩查血清腫瘤標(biāo)志物、影像學(xué)檢查、病理活檢等)的安全性、準(zhǔn)確性等不盡如人意。因此,新型肺癌診斷方法的探索存在需要的臨床意義。循環(huán)腫瘤細(xì)胞(CTCs)作為“液體活檢”,有助于肺癌診斷,可能成為未來(lái)肺癌診斷的重要方法。本文主要對(duì)CTCs在肺癌診斷中的研究進(jìn)展作一綜述。
肺癌是世界范圍內(nèi)癌癥相關(guān)性死亡的主要原因,每年有大約 1 800萬(wàn)新發(fā)病例,5年生存率大概為15%[4-5]。目前有研究表明,未發(fā)生轉(zhuǎn)移的早、中期肺癌患者的5年生存率約為發(fā)生轉(zhuǎn)移者的13倍[6],且早期肺癌患者有接受手術(shù)的機(jī)會(huì),從而可提高肺癌患者的5年生存率[7],故肺癌的早期診斷對(duì)于改善肺癌患者預(yù)后尤為重要。
肺癌的診斷方法包括篩查血清腫瘤標(biāo)志物、影像學(xué)檢查及病理活檢。就目前已經(jīng)廣泛應(yīng)用的肺癌腫瘤標(biāo)志物來(lái)說(shuō),包括癌胚抗原、細(xì)胞角蛋白片段抗原21-1、鱗狀細(xì)胞癌抗原及特異性烯醇化酶等,其敏感性及特異性仍遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于理想值[8-9]。而影像學(xué)檢查主要評(píng)估腫瘤位置及大小,不能良好地反映肺癌的惡性程度及侵襲能力[10]。病理活檢是目前肺癌診斷的“金標(biāo)準(zhǔn)”,但病理活檢作為一項(xiàng)有創(chuàng)操作,可能出現(xiàn)出血、氣胸等并發(fā)癥,同時(shí)由于各種限制,結(jié)果可能為陰性[11]。這些均導(dǎo)致了病理活檢的應(yīng)用低于臨床期望值,制約了病理活檢的發(fā)展。從而臨床上迫切需要具備高敏感性和特異性的腫瘤標(biāo)志物應(yīng)用于肺癌診斷或篩查,補(bǔ)足目前診斷方法的缺陷。
2.1 CTCs概述 CTCs是指由原發(fā)腫瘤或轉(zhuǎn)移灶上脫落下來(lái)進(jìn)入血液循環(huán)的腫瘤細(xì)胞,其脫落的關(guān)鍵機(jī)制包括腫瘤對(duì)血管的內(nèi)滲作用及腫瘤相關(guān)脈管系統(tǒng)軟化使細(xì)胞被動(dòng)脫落。CTCs具有與腫瘤原發(fā)灶一致的細(xì)胞學(xué)和遺傳學(xué)特征,且在早期腫瘤甚至癌前病變患者的外周血中即可檢測(cè)到CTCs。因此,CTCs作為“液體活檢”在肺癌診斷中存在極大價(jià)值[12]。CTCs的臨床應(yīng)用對(duì)于肺癌的準(zhǔn)確診斷提供了一種無(wú)創(chuàng)性的新型診斷方法,在肺癌的早期診斷中具有重要的臨床意義。
CTCs在血液中的含量極少(1/106~1/107),因此為了將檢測(cè)CTCs的敏感性提高到滿(mǎn)意程度,富集技術(shù)便顯得尤為重要。目前的富集方法包括使用免疫分離方法選取帶有腫瘤特異性標(biāo)記的靶細(xì)胞,以及根據(jù)形態(tài)標(biāo)準(zhǔn)選取相應(yīng)細(xì)胞。CTCs經(jīng)過(guò)富集技術(shù)濃縮后,即可通過(guò)細(xì)胞計(jì)數(shù)或反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)等方法進(jìn)行檢測(cè)[13]。
2.2 富集技術(shù) CTCs富集技術(shù)主要通過(guò)辨別細(xì)胞形態(tài)特征所完成,該方法使用免疫磁珠(陰性富集或陽(yáng)性富集)及通過(guò)微流體進(jìn)行免疫分離:(1)基于形態(tài)學(xué)的富集技術(shù)。對(duì)大于白細(xì)胞(>8 μm)的細(xì)胞進(jìn)行過(guò)濾,但目前鮮有研究證實(shí)所有的CTCs均大于8μm,故此種方法尚缺乏說(shuō)服力[14]。(2)免疫磁珠。免疫磁性分選系統(tǒng)是用于捕獲由磁珠所標(biāo)記細(xì)胞的專(zhuān)門(mén)工具,通過(guò)細(xì)胞膜或細(xì)胞內(nèi)染色達(dá)到目的,其后續(xù)步驟為透化及固定。例如CD326,其是參與細(xì)胞黏附的細(xì)胞表面分子,在大多數(shù)上皮癌中呈高度表達(dá),以及腫瘤細(xì)胞抗原表皮生長(zhǎng)因子受體2均可與用單克隆抗體所包被的磁珠結(jié)合,從而使CTCs的富集順利進(jìn)行[15]。(3)干細(xì)胞技術(shù)。干細(xì)胞技術(shù)是一種陰性富集技術(shù),其原理為CD45+細(xì)胞和多個(gè)紅細(xì)胞通過(guò)雙特異性四聚體抗體復(fù)合物交叉結(jié)合成細(xì)胞團(tuán),隨著這類(lèi)非檢測(cè)需要的細(xì)胞密度增加,密度梯度離心后,CD陽(yáng)性的細(xì)胞聚集在下層,而CD陰性的單核細(xì)胞則被隔離在介質(zhì)和等離子體之間,從而達(dá)到富集目的[16]。
2.3 細(xì)胞計(jì)數(shù)法 細(xì)胞計(jì)數(shù)法基于抗原表達(dá)的原理分離和計(jì)數(shù)單個(gè)細(xì)胞,其中作用于特異性上皮抗原的單克隆抗體得到廣泛應(yīng)用。與核酸檢測(cè)法比較,細(xì)胞計(jì)數(shù)法可保持細(xì)胞的完整性,從而可更加深入地描述CTCs,同時(shí)以便進(jìn)一步對(duì)CTCs進(jìn)行形態(tài)及分子鑒別。但是細(xì)胞計(jì)數(shù)法的主要特點(diǎn)是當(dāng)前特異性抗體的缺乏,但這個(gè)問(wèn)題可通過(guò)對(duì)CD45進(jìn)行復(fù)染彌補(bǔ)一部分。在提高敏感性和特異性方面,則可通過(guò)多標(biāo)志物的應(yīng)用來(lái)處理,這能夠在一定程度上克服由于腫瘤的異質(zhì)性帶來(lái)的檢測(cè)難題[17]。
2.4 核酸檢測(cè)法 CTCs也可通過(guò)檢測(cè)具有特定基因序列的腫瘤細(xì)胞來(lái)測(cè)定,如原癌基因或腫瘤抑制基因的DNA突變、致癌病毒序列的檢測(cè)均可用于CTCs的鑒定。但由于DNA的變異僅僅發(fā)生在發(fā)育異常的病變或成熟的腫瘤中,故循環(huán)游離DNA可能僅僅反映了核酸的存在,而非腫瘤細(xì)胞的存在,故目前檢測(cè)游離DNA并未用于臨床實(shí)踐。在臨床實(shí)踐中,更多使用的是通過(guò)檢測(cè)mRNA來(lái)反映CTCs的存在,常用方法包括PCR、RT-PCR等。有研究表明,RT-PCR的敏感性?xún)?yōu)于免疫細(xì)胞化學(xué),但遺憾的是,該研究無(wú)對(duì)照組的數(shù)據(jù)[18]。其中定量RT-PCR增加了正常細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞的mRNA區(qū)分度的表達(dá),但與細(xì)胞計(jì)數(shù)法相似,RT-PCR也存在缺少特異性組織標(biāo)記的問(wèn)題。由于正常細(xì)胞的標(biāo)記有時(shí)難以與腫瘤細(xì)胞的標(biāo)記相區(qū)分,導(dǎo)致核酸檢測(cè)法具有較高的敏感性,但特異性卻難以達(dá)到令人滿(mǎn)意的程度,同時(shí)核酸檢測(cè)法操作相對(duì)復(fù)雜,易受污染,應(yīng)用也受到限制。
2.5 CellSearch系統(tǒng) 該系統(tǒng)是目前美國(guó)食品藥物管理局唯一批準(zhǔn)的CTCs檢測(cè)方法。CellSearch系統(tǒng)是一種將富集和檢測(cè)結(jié)合起來(lái)的半自動(dòng)技術(shù),分析檢測(cè)的快速性及樣本的可回收性是CellSearch系統(tǒng)的一大特色。CellSearch的檢測(cè)原理是因?yàn)閬?lái)源于中胚層的白細(xì)胞可表達(dá)CD45,而來(lái)源于外胚層的腫瘤細(xì)胞表達(dá)細(xì)胞角蛋白(CK)及上皮細(xì)胞黏附分子(EpCAM),但不表達(dá)CD45,故在富集過(guò)程中,采用CK和苯基吲哚(DAPI)進(jìn)行熒光染色,造血細(xì)胞則由CD45進(jìn)行對(duì)比染色,然后使用自動(dòng)熒光顯微鏡篩選出EpCAM+/CK+/DAPI+/ CD45-的細(xì)胞,可將其界定為CTCs。國(guó)外有研究者證實(shí),在使用CK、EpCAM及DAPI標(biāo)記時(shí),特異度可達(dá)100%[19],但該項(xiàng)研究樣本數(shù)較少,故CellSearch系統(tǒng)的在檢測(cè)CTCs中的敏感性和特異性可能需要更多研究證實(shí)。
2.6 CTC-chip法 該法與CellSearch系統(tǒng)原理基本相同,在芯片上約有78 000個(gè)顯微位點(diǎn),每一個(gè)顯微位點(diǎn)均包埋有EpCAM抗體,當(dāng)檢測(cè)樣本通過(guò)芯片時(shí),CTCs即可被位點(diǎn)捕獲,該方法以CKs和DAPI為陽(yáng)性,以CD45為陰性為標(biāo)準(zhǔn)[20],從目前研究來(lái)看,CTC-chip具有更高的敏感性,可在1 mL血液中檢測(cè)出CTCs,其分離純度約為CellSearch的100倍,但因其局限于使用EpCAM檢測(cè)CTCs,故CTC-chip法在應(yīng)用過(guò)程中可能出現(xiàn)假陽(yáng)性[21]。
2.7 酶聯(lián)免疫斑點(diǎn)法(ELISPOT) ELISPOT可使用黏蛋白-1和CK19作為標(biāo)記,去除CD45+的細(xì)胞,富集得到腫瘤轉(zhuǎn)移相關(guān)蛋白(CXCR4)陽(yáng)性的細(xì)胞,檢測(cè)CTCs釋放的特定蛋白質(zhì),因此可取得較高的敏感性和特異性[22]。目前還不存在CTCs檢測(cè)的“金標(biāo)準(zhǔn)”,仍需通過(guò)不斷努力研究提高上述方法的可靠性。
肺癌的早期診斷對(duì)于選擇治療方式及提高肺癌患者的5年生存率至關(guān)重要,是改善肺癌預(yù)后的關(guān)鍵步驟之一。目前國(guó)內(nèi)外針對(duì)CTCs在肺癌中的診斷價(jià)值都進(jìn)行了較多的研究。有研究結(jié)果顯示,CTCs在肺癌診斷中的敏感性為30.4%~89.0%,特異性為84.1%~100.0%[23-27]。其中Lou等[24]和Yu等[27]在2013年均設(shè)計(jì)了以PCR檢測(cè)CTCs的研究,設(shè)計(jì)的臨界值分別為8.64 CTCs單位及8.5 CTCs單位,對(duì)共計(jì)225例非小細(xì)胞肺癌患者進(jìn)行了診斷,結(jié)果顯示敏感度分別為73.20%和81.80%,特異度分別為84.10%和93.20%,其中Yu等[27]報(bào)道的曲線(xiàn)下面積(AUC)為0.823。Chen等[23]則在2014年應(yīng)用熒光原位雜交技術(shù)(FISH)對(duì)50例非小細(xì)胞肺癌患者外血清內(nèi)的CTCs進(jìn)行了檢測(cè),臨界值為每3.2毫升2個(gè)細(xì)胞單位,敏感度和特異度分別為84.00%、97.60%。而Fiorelli等[25]在2015年設(shè)計(jì)了以免疫組織化學(xué)為檢測(cè)方法的相關(guān)研究,限定臨界值為CTCs計(jì)數(shù)大于25個(gè),對(duì)60例平均年齡為65.5歲的肺癌患者進(jìn)行了CTCs篩查,得到的敏感度和特異度分別為89.00%、100.00%。上述4項(xiàng)研究均顯示,CTCs具有較好的敏感性及特異性,但Tanaka等[26]于2009年報(bào)道的CTCs在肺癌中的應(yīng)用數(shù)據(jù)顯示(臨界值為CTCs計(jì)數(shù)大于1個(gè)),125例肺癌患者中,真陽(yáng)性、假陽(yáng)性、真陰性及假陰性患者分別為38、3、22、87例,從而得到敏感度和特異度分別為30.40%、88.00%,AUC為0.598。
上述研究結(jié)果提示,CTCs在肺癌診斷的應(yīng)用中雖具備較好的敏感性及特異性,但可能存在不足:(1)不同研究樣本數(shù)的影響,在5篇文獻(xiàn)中,樣本數(shù)均偏小,可能是造成其敏感性波動(dòng)范圍較大的原因[23-27];(2)研究對(duì)象中肺癌不同病理類(lèi)型對(duì)于診斷結(jié)果的影響,如Lou等[24]和 Yu等[27]所報(bào)道的肺癌類(lèi)型為非小細(xì)胞肺癌,其敏感性及特異性相對(duì)接近;(3)CTCs檢測(cè)方法的不同,在上述文獻(xiàn)中,其檢測(cè)方法包括PCR、FISH、免疫細(xì)胞化學(xué)等,在進(jìn)行CTCs檢測(cè)時(shí)即可出現(xiàn)誤差;(4)不同研究者對(duì)于臨界值定義的不同,5位研究者其研究設(shè)計(jì)的臨界值分別為8.64、2、8.5、25、1個(gè)CTCs單位,而臨界值的設(shè)定直接關(guān)系到敏感性和特異性的計(jì)算,由此可見(jiàn),在目前研究中,臨界值差異可能是造成誤差的主要原因之一;(5)納入的肺癌患者分期的不同,目前研究表明,不同分期的肺癌可造成外周血中CTCs計(jì)數(shù)的不同,故在比較過(guò)程中,亞組分析是關(guān)鍵的一步,但Chen等[23]及 Fiorellli等[25]并未進(jìn)行亞組分析。因此為確定CTCs在肺癌診斷中是否存在較大優(yōu)勢(shì),可能需要更多、大型、前瞻性的研究證實(shí)。
綜上所述,作為潛在的新型肺癌腫瘤標(biāo)志物,CTCs具有較好的敏感性及特異性,是一種快速、無(wú)創(chuàng)的診斷方法,因此CTCs是一種有潛力的外周血腫瘤標(biāo)志物,但仍需更多的研究評(píng)估其臨床意義,從而指導(dǎo)臨床應(yīng)用。
[1]Vallières E,Pintos J,Parent ME,et al.Occupational exposure to wood dust and risk of lung cancer in two population-based case-control studies in Montreal,Canadat[J].Environ Health,2015,14:1.
[2]Meza R,Meernik C,Jeon J,et al.Lung cancer incidence trends by gender,raceandhistologyintheunitedstates,1973-2010[J].PloSOne,2015,10(3):1-14.
[3]Lim E,Tay A,Von Der Thusen J,et al.Clinical results of microfluidic antibody-independent peripheral blood circulating tumor cell capture for the diagnosis of lung cancer[J].J Thorac Cardiovasc Surg,2013,147(6):1936-1938.
[4]Molina JR,Adjei AA,Jett JR.Advances in chemotherapy of non-small cell lung cancer[J].Chest,2006,130(4):1211-1219.
[5]Torre LA,Bray F,Siegel RL,et al.Global cancer statistics,2012[J].CA Cancer J Clin,2015,65(2):87-108.
[6]Siegel RL,Miller KD,Jemal A.Cancer statistics,2015[J].CA Cancer J Clin,2015,65(1):5-29.
[7]Yu JB,Soulos PR,Cramer LD,et al.Comparative effectiveness of surgery and radiosurgery for stage i non-small cell lung cancer[J].Cancer,2015,121(14):2341-2349.
[8]Okamura K,Takayama K,Izumi M,et al.Diagnostic value of cea and cyfra 21-1 tumor markers in primary lung cancer[J].Lung cancer,2013,80(1):45-49.
[9] Chu XY,Hou XB,Song WA,et al.Diagnostic values of scc,cea,cyfra21-1 and nse for lung cancer in patients with suspicious pulmonary masses:a single center analysis[J].Cancer Biol Ther,2011,11(12):995-1000.
[10]Zieglschmid V,Hollmann C,B?cher O.Detection of disseminated tumor cells in peripheral blood[J].Crit Rev Clin Lab Sci,2005,42(2):155-196.
[11]Chen Q,Ge F,Cui W,et al.Lung cancer circulating tumor cells isolated by the epcam-independent enrichment strategy correlate with cytokeratin 19-derived cyfra21-1 and pathological staging[J].Clin Chim Acta,2013,419:57-61.
[12]Ilie M,Hofman V,Long E,et al.Current challenges for detection of circulating tumor cells and cell-free circulating nucleic acids,and their characterization in non-small cell lung carcinoma patients.What is the best blood substrate for personalized medicine?[J].Ann Transl Med,2014,2(11):107.
[13]Mostert B,Sleijfer S,F(xiàn)oekens JA,et al.Circulating tumor cells(CTCs):detection methods and their clinical relevance in breast cancer[J].Cancer Treat Rev,2009,35(5):463-474.
[14]Vona G,Sabile A,Louha M,et al.Isolation by size of epithelial tumor cells:a new method for the immunomorphological and molecular characterization of circulatingtumor cells[J].Am J Pathol,2000,156(1):57-63.
[15]Allard WJ,Matera J,Miller MC,et al.Tumor cells circulate in the peripheral blood of all major carcinomas but not in healthy subjects or patients with nonmalignant diseases[J].Clin Cancer Res,2004,10(20):6897-6904.
[16]Naume B,Borgen E,T?ssvik S,et al.Detection of isolated tumor cells in peripheral blood and in BM:evaluation of a new enrichment method[J].Cytotherapy,2004,6(3):244-252.
[17]Connelly M,Wang Y,Doyle,et al.Re:Anti-epithelial cell adhesion molecule antibodies and the detection of circulating normal-like breast tumor cells[J].J Natl Cancer Inst,2009,101(12):895.
[18]Smith BM,Slade MJ,English J,et al.Response of circulating tumor cells to systemic therapy in patients with metastatic breast cancer:comparison of quantitative polymerase chain reaction and immunocytochemical techniques[J].J Clin Oncol,2000,18(7):1432-1439.
[19]Balic M,Dandachi N,Hofmann G,et al.Comparison of two methods for enumerating circulating tumor cells in carcinoma patients[J].Cytometry B Clin Cytom,2005,68(1):25-30.
[20]Uhr JW.Cancer diagnostics:one-stop shop[J].Nature,2007,450(7173):1168-1169.
[21]Stott SL,Hsu CH,Tsukrov DI,et al.Isolation of circulating tumor cells using a microvortex-generating herringbone-chip[J].Proc Natl Acad Sci USA,2010,107(43):18392-18397.
[22]Alix-Panabières C,Vendrell JP,Pellé O,et al.Detection and characterization of putative metastatic precursor cells in cancer patients[J].Clin Chem,2007,53(3):537-539.
[23]Chen YY,Xu GB.Effect of circulating tumor cells combined with negative enrichment and cd45-fish identification in diagnosis,therapy monitoring and prognosis of primary lung cancer[J].Med Oncol,2014,31(12):240.
[24]Lou J,Ben S,Yang G,et al.Quantification of rare circulating tumor cells in non-small cell lung cancer by ligand-targeted pcr[J].PloS One,2013,8(12):e80458.
[25]Fiorelli A,Accardo M,Scrima M,et al.Circulating tumor cells in diagnosing lung cancer:clinical and morphologic analysis[J].Ann Thorac Surg,2015,99(6):1899-1905.
[26]Tanaka F,Yoneda K,Kondo N,et al.Circulating tumor cell as a diagnostic marker in primary lung cancer[J].Clin Cancer Res,2009,15(22):6980-6986.
[27]Yu Y,Chen Z,Dong J,et al.Folate receptor-positive circulating tumor cells as a novel diagnostic biomarker in non-small cell lung cancer[J].Transl Oncol,2013,6(6):697-702.
10.3969/j.issn.1009-5519.2016.16.027
A
1009-5519(2016)16-2521-03
,E-mail:417335669@qq.com。
2016-03-01)