不同提取工藝對黃芪總皂苷提取效果的研究

侯美如，劉宇，王巖，尹珺伊，周慶民，秦平偉，史同瑞，楊淑萍

(黑龍江省獸醫(yī)科學研究所 黑龍江齊齊哈爾 161006)

不同提取工藝對黃芪總皂苷提取效果的研究

侯美如，劉宇，王巖，尹珺伊，周慶民，秦平偉，史同瑞*，楊淑萍

(黑龍江省獸醫(yī)科學研究所 黑龍江齊齊哈爾 161006)

為了研究黃芪經(jīng)發(fā)酵后對黃芪總皂苷釋放量的影響。采用水浸法、水煎法提取黃芪與發(fā)酵黃芪中總皂苷，利用紫外分光光度法測定黃芪總皂苷的提取量。結果顯示，發(fā)酵黃芪經(jīng)水浸法、水煎法提取的總皂苷量分別為6.568、4.843 mg/g，顯著高于對照黃芪的提取量5.356、4.007 mg/g。黃芪經(jīng)產(chǎn)纖維素酶解淀粉芽孢桿菌發(fā)酵后，可有效提高黃芪總皂苷的釋放量，長時間水煎會致皂苷受損，致使含量降低。

發(fā)酵中藥；黃芪甲苷；釋放量

黃芪總皂苷是中藥黃芪中的重要生理活性成分，因此黃芪總皂苷常作為黃芪藥材的定性定量指標[1]。中草藥有效成分的釋放量直接影響著其藥效的發(fā)揮。根據(jù)中草藥種類及其有效活性成分性質的不同，應選擇較為適宜的提取工藝，以提升有效成分的提取率，提高中藥療效。中藥提取有著久遠的歷史，冷浸漬法、回流法、煎煮法、索氏提取法等都是傳統(tǒng)的提取分離手段[2]。然而這些提取工藝往往存在提取時間長，溶劑消耗大、提取效率低下、雜質含量大、操作流程復雜等缺點。隨著中藥發(fā)酵技術的不斷開展，大量學者運用發(fā)酵技術以實現(xiàn)中藥有效成分的釋放，這不僅能提高中藥有效成分的釋放量，而且還可通過微生物對中藥的纖維、糖類、蛋白質等成分的利用和轉化，產(chǎn)生包含多種活性成分的制劑或新藥[3]。

研究證實，黃芪中黃芪總皂苷是心臟正性肌力作用的主要有效成分，也是降壓的有效成分之一[4]。目前，黃芪皂苷提取方法常采用超聲波提取法、索氏提取器提取法、發(fā)酵法、酶解法、浸泡提取法和大孔樹脂吸附法[1,5]。研究利用分離篩選的產(chǎn)纖維素酶解淀粉芽孢桿菌對中藥黃芪進行了發(fā)酵，為檢驗生物發(fā)酵對中藥活性成分釋放量的影響，以黃芪總皂苷為考察指標，比較了生物發(fā)酵法與普通傳統(tǒng)提取方法對黃芪皂苷的提取效果，旨在為黃芪活性成分提取提供更為簡單、高效的方法。

1 材料與方法

1.1 藥品與試劑 黃芪，河北凱達藥業(yè)有限公司產(chǎn)品；黃芪甲苷對照品(批號：20151213)，上海金穗生物科技有限公司；其它試劑均為分析純。黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基：黃芪粉(過40目篩)30 g、黃豆粉10 g、CaCO30.2 g、水59.8 mL。解淀粉芽孢桿菌SSYB菌株，由本研究室分離鑒定并保存。

1.2 儀器設備 UV-1900PC雙束紫外可見分光光度計，上海佑科儀器儀表有限公司；分析天平，常州萬泰天平儀器有限公司；電熱恒溫干燥箱，天津市泰斯特儀器有限公司；低速離心機,上海安亭科學儀器廠；振蕩器,哈爾濱市東聯(lián)電子技術開發(fā)有限公司。

1.3 總皂苷提取方法

1.3.1 發(fā)酵水浸法 取解淀粉芽孢桿菌SSYB菌株普通肉湯培養(yǎng)種子液，按2%接種量接種黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基，置37 ℃環(huán)境培養(yǎng)72 h。取發(fā)酵黃芪樣品100 g，加入超純水500 mL，混勻，置振蕩器中振蕩浸泡60 min，以4000 r/min離心10 min，取上清液，置于500 mL容量瓶中定容。

1.3.2 水浸法 取含2%普通肉湯的黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基，置37 ℃環(huán)境放置70～72 h，然后取未經(jīng)發(fā)酵的黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基100 g，加入超純水500 mL，混勻，置振蕩器中振蕩浸泡60 min，以4000 r/min離心10 min，取上清液，置于500 mL容量瓶中定容。

1.3.3 發(fā)酵水煎法 取按1.3.1發(fā)酵法發(fā)酵的黃芪樣品100 g，加入超純水500 mL，混勻，浸泡30 min，以武火煮沸后，再以文火煮1 h，邊水煎邊補水。水煎黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)物經(jīng)4000 r/min離心10 min，取上清液，置于500 mL容量瓶中定容。

1.3.4 水煎法 取含2%普通肉湯的黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基，置37 ℃環(huán)境放置70～72 h，然后取未經(jīng)發(fā)酵的黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基100 g，加入超純水500 mL，混勻，浸泡30 min，以武火煮沸后，再以文火煮1 h，邊水煎邊補水。水煎黃芪固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基經(jīng)4000 r/min離心10 min，取上清液，置于500 mL容量瓶中定容。

1.4 樣品中黃芪總皂苷的提取 參照文獻方法[6]，取1.3所述四種方法的提取液各50 mL，分別置于分液漏斗中，加入正丁醇50 mL，進行萃取。棄液再次用正丁醇萃取，合并正丁醇萃取液，加入1% NaOH溶液100 mL，洗滌3次，除色素后用超純水洗至中性，收集正丁醇溶液，置70 ℃水浴揮干溶劑，加甲醇溶解，定容于25 mL容量瓶中，備用。

1.5 黃芪總皂苷的測定

1.5.1 對照品溶液的制備 精密稱取黃芪甲苷對照品15.0 mg，置于25 mL容量瓶中，加入甲醇溶解定容，混勻，即得黃芪甲苷對照品溶液。

1.5.2 黃芪甲苷標準曲線的建立 準確吸取黃芪甲苷對照品溶液0、0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.06 mL于試管中，置70 ℃水浴中揮干溶劑，加入新配制的5%香草醛-冰醋酸溶液0.2 mL，高氯酸0.8 mL，70 ℃水浴作用15 min，取出放冰水浴中，冷卻，加入冰醋酸5 mL，搖勻，以試劑作空白對照，在篩選確定的測定波長543 nm處測定黃芪甲苷吸光度值。用甲苷質量濃度(C)作橫坐標，以吸光度值(A)作縱坐標，繪制標準曲線。

1.5.3 樣品溶液及其顯色后的穩(wěn)定性試驗 取發(fā)酵法黃芪皂苷提取液，置室溫分別放置0、1、2、3、4 h，取提取液25 μL，按1.4.2方法進行顯色后測定吸光度值。另取黃芪皂苷提取液25 μL，依法進行顯色，在室溫分別放置0、1、2、3、4 h，測定吸光度值，計算樣品中每克黃芪的總皂苷含量。

1.5.4 重復性試驗 取同批發(fā)酵法黃芪皂苷提取液樣品6份，按1.5.2方法測定吸光度值，計算樣品中每克黃芪的總皂苷含量。

1.5.5 回收率試驗 精密稱取已知甲苷含量的發(fā)酵黃芪皂苷提取液樣品6份，加入一定量的甲苷對照品溶液，按1.5.2方法顯色后測定吸光度值，計算樣品中的皂苷含量，并計算回收率。1.5.6 總皂苷提取量的測定 取樣品提取液25 μL，分別放入干燥試管中，水浴揮干溶劑，按1.5.2方法顯色，在543 nm波長處測定吸光度值，代入標準曲線及計算公式，得黃芪總皂苷提取量。

計算公式：X=(C×V0×V1×N)/(M×V2×1000)

式中：X為樣品中每克黃芪總皂苷含量(mg/g);V0為經(jīng)萃取后的樣品總皂苷提取液(mL)；V1為顯色反應體系體積(mL)；V2為測定吸取體積(mL)；C為從標準曲線計算出的待測液中總皂苷濃度(μg/mL)；M為樣品中黃芪質量(g)；N為樣品提取液與待萃取樣品提取液的體積比。

1.6 統(tǒng)計學分析軟件 數(shù)據(jù)統(tǒng)計使用SAS (SAS forw indows, Version 8.2)軟件包中的stat模塊中的平衡試驗設計中的Anova過程，多重比較用Duncan法進行。

2 結 果

2.1 黃芪甲苷標準曲線 以543 nm為檢測波長，測定濃度為1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0 μg/mL溶液的吸光度值，結果分別為0.043、0.069、0.091、0.116、0.139、0.165。回歸方程為：A=0.0241C+0.0193R2=0.9996。試驗表明，在1.0～6.0 μg/mL濃度范圍內，吸光度值與濃度呈良好的線性關系。

2.2 樣品溶液及其顯色后溶液的穩(wěn)定性 樣品溶液及其顯色后穩(wěn)定性試驗結果顯示，其RSD分別為0.0693%和0.1473%，結果表明，樣品溶液及其顯色后溶液在4 h內穩(wěn)定，見表1。

表1 穩(wěn)定性試驗結果

2.3 重復性試驗結果 由表2可知，黃芪總皂苷平均含量為6.561±0.0045 mg/g，RSD為0.0678%，方法重復性良好。

2.4 回收率試驗結果 由表3可知，其平均回收率為100.12±0.26%，RSD為0.2543%，結果表明，本法具有良好的回收率。2.5 不同工藝對黃芪總皂苷的提取效果 由表4可知，發(fā)酵水浸法黃芪總皂苷提取量最高，達到6.568±0.0068 mg/g，其次為水浸法，為5.356±0.0061 mg/g，水煎法最低，為4.007±0.0123 mg/g。發(fā)酵水浸法較水浸法的總皂苷的提取量提高了22.63%，水煎法組較水浸法組質量分數(shù)降低了33.67%，發(fā)酵水煎組較水煎法組總皂苷質量分數(shù)有所增加，但仍低于水浸法組。

表2 重復性試驗測定結果

表3 回收試驗測定結果

表4 不同工藝對黃芪甲苷的提取效果(n=3)

同一列中上標字母完全相同者差異不顯著(P>0.05)，完全不同者差異極顯著(P<0.05)，有相同字母者差異顯著。

3 討 論

目前，常用的定量測定黃芪中黃芪總皂苷的方法有薄層掃描法、高效液相色譜法、薄層色譜-分光光度法、比色法、紫外分光光度法等測定方法[7]。紫外分光光度法不僅能測定有色物質，還能精確測定有共軛結構的無色物質，屬于經(jīng)典、成熟的方法。因其簡便、靈敏、適應面廣、常用于皂苷的分析[8]。因此本試驗采用紫外分光光度法測定總皂苷含量。

試驗結果表明，水煎法黃芪總皂苷的提取量均低于相應的水浸法，說明皂苷的熱穩(wěn)定性可能較差，長時間的高溫處理會使皂苷受損而致含量下降，這與一些學者研究結果一致。黃芪甲苷在藥材中主要是以其結構中C-3位木糖基上不同位置羥基的乙?；锏男问酱嬖冢芯恐邪l(fā)現(xiàn)，因黃芪甲苷乙酰化物的化學不穩(wěn)定性，在制劑生產(chǎn)工藝過程中黃芪甲苷含量受不同處理條件影響較大[9]。郁帥陸等[10]研究證實，黃芪經(jīng)高溫處理后，其皂苷含量降低了63.2%，推測是在高溫處理的過程中，可能使極性皂苷中連接苷元和多糖的糖苷鍵部分斷裂生成非極性的皂苷元，從而不能經(jīng)極性較大的甲醇提取出來，同樣本試驗也采用了醇類作為萃取劑對黃芪皂苷進行萃取，因此導致皂苷提取量較低。

有關黃芪總皂苷熱穩(wěn)定性的研究報道較少，但對人參總皂苷熱穩(wěn)定性的研究相對較多。余瀟苓等[11]研究證實，對紅參須中的5種皂苷高溫處理后，其皂苷含量均有所下降，5種皂苷發(fā)生了不同程度的降解反應，并發(fā)現(xiàn)皂苷糖基的不同結構決定了降解速率的差異。林龍飛等[12]對人參莖葉水提液中的2種皂苷的熱穩(wěn)定性進行了研究，發(fā)現(xiàn)2種皂苷均發(fā)生了不同程度的降解，并隨加熱時間延長和溫度的升高，其降解速率也隨之加快，在100 ℃、80 ℃和60 ℃條件下加熱12 h，皂苷分別降至初始含量的20%、60%及80%，推測是加熱條件下發(fā)生水解、脫掉糖基，生成皂苷元，使2種皂苷含量下降。由于黃芪總皂苷與人參總皂苷的組成成分及比例存在一定差異，高溫引起總皂苷含量下降的原因也可能存在差異。高溫處理引起黃芪皂苷含量降低是由于皂苷極性轉變影響了測定結果，還是由于皂苷發(fā)生了降解或轉化成其它物質，尚需進一步研究加以解釋。

試驗采用水浸法和水煎法兩種工藝，比較了發(fā)酵黃芪對活性成分總皂苷釋放的影響，結果表明，不論是水浸法，還是水煎法，發(fā)酵黃芪總皂苷的提取量均顯著高于非發(fā)酵黃芪。這說明黃芪經(jīng)過產(chǎn)纖維素酶解淀粉芽孢桿菌發(fā)酵后，發(fā)酵菌產(chǎn)生的纖維素酶降解了中草藥細胞壁的組成成分纖維素、木質素等，使包裹在細胞壁內活性成分得以釋放，因此，應用產(chǎn)纖維素酶微生物發(fā)酵中藥有利于活性成分的釋放[13]。中藥發(fā)酵無需化學提取劑，工藝簡單，成本低，且本試驗采用解淀粉芽孢桿菌作為發(fā)酵菌種，安全性好，一些學者[14-16]將其作為益生菌添加劑添加到飼料，以提高動物生產(chǎn)性能，因此，發(fā)酵法在提高中藥有效成分釋放的同時，還可補充益生菌，兩者協(xié)同作用，增強動物抗病力，提高動物生產(chǎn)性能。

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(編輯：陳希)

Effect of Different Extraction Processes on the Content of the Total Saponins of Astragalus

HOU Mei-ru，LIU Yu，WANG Yan，YIN Jun-yi，ZHOU Qin-min，QIN Ping-wei，SHI Tong-rui*，YANG Shu-ping

(HeilongjiangInstituteofVeterinaryMedicineScience，Qiqihaer，Heilongjiang161006，China)

In the present, the influence of fermented extraction of the total saponins in astragalus was investigated. Water immersion method and water decoction method were used to extract the total saponins in astragalus and fermented astragalus. The extracted content of total saponins in astragalus were detection using UV spectrophotometry. The content of total saponins in fermented astragalus extracted utilizing water immersion method and water decoction method were 6.568 and 4.843 mg/g, respectively, the result was significantly higher than the control group, which the content of total saponins were 5.356 and 4.007 mg/g, respectively. This results indicated that the release content of the total saponins in astragalus could be efficiently improved after the astragalus was fermented by cellulase-producingBacillusamyloliquefaciens, and long-time decoction will caused damage to saponins and resulted in reducing of the content of total saponins.

fermentation of traditional Chinese medicine； total saponins；release amount

黑龍江科技計劃項目：生物發(fā)酵中藥制劑的研究與開發(fā)(GC13B404)

2016-07-15

A

1002-1280 (2016) 12-0024-05

S853.7