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    金黃色葡萄球菌tst-1基因敲除菌株的構(gòu)建

    2015-12-27 01:31:35李勝軍張曉清呂昌龍
    微生物學(xué)雜志 2015年6期
    關(guān)鍵詞:埃希菌金黃色葡萄球菌

    李勝軍, 張曉清, 尉 冰, 張 荻, 呂昌龍

    (1. 中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 免疫學(xué)教研室,遼寧 沈陽 110122;2. 中國醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院 口腔修復(fù)學(xué)教研室 遼寧 沈陽 110001)

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    金黃色葡萄球菌tst-1基因敲除菌株的構(gòu)建

    李勝軍1, 張曉清1, 尉 冰1, 張 荻2, 呂昌龍1

    (1. 中國醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 免疫學(xué)教研室,遼寧 沈陽 110122;2. 中國醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院 口腔修復(fù)學(xué)教研室 遼寧 沈陽 110001)

    抽提金黃色葡萄球菌834菌株的基因組DNA,PCR克隆擴(kuò)增tst-1及tst-1的上、下游基因,通過將tst-1上、下游基因分別重組到載體質(zhì)粒pAULA中,形成同源重組質(zhì)粒pAULA-Δtst-1,將pAULA-Δtst-1電轉(zhuǎn)入細(xì)菌內(nèi),進(jìn)行同源重組,以PCR、Western blot鑒定tst-1基因敲除菌株無tst-1基因片段,且無TSST-1蛋白表達(dá),表明已成功構(gòu)建金黃色葡萄球菌tst-1基因的敲除菌株。

    金黃色葡萄球菌;tst-1;基因敲除

    金黃色葡萄球菌(Staphylococcusaureus,SA)是人類的主要致病菌[1],可引起各種類型的化膿性感染,如蜂窩組織炎、肺炎、骨髓炎、感染性心內(nèi)膜炎、敗血癥、中毒性休克綜合征、腸炎等[2-3]。 金黃色葡萄球菌可產(chǎn)生多種與致病力有關(guān)的毒素,如腸毒素(enterotoxin)、毒性休克綜合征毒素I(toxic shock syndrome toxin I,TSST-1)、葡萄球菌溶血素(staphylolysin)等[4]。TSST-1是由噬菌體I群金黃色葡萄球菌產(chǎn)生的超抗原外毒素,屬于致熱原性超抗原家族,分子量約22 ku[5-6]。TSST-1能引起中毒性休克綜合征(toxic shock syndrome,TSS),導(dǎo)致患者發(fā)熱、低血壓、多器官衰竭,有必要加深對TSST-1在SA感染中的致病機(jī)理的了解。本研究提取金黃色葡萄球菌的基因組,以PCR方法擴(kuò)增TSST-1編碼基因tst-1及其上游基因SAB0359、下游基因SAB0361,構(gòu)建基因敲除質(zhì)粒,進(jìn)而以同源重組方法構(gòu)建金黃色葡萄球菌834菌株的tst-1敲除菌株,以研究金黃色葡萄球菌的致病機(jī)制及TSST-1的功能。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 動物 8周齡的雌性C57BL/6小鼠20只(遼寧長生生物技術(shù)有限公司,動物許可證號:SCXK遼2010-0001),隨機(jī)分為金黃色葡萄球菌834菌株組和金黃色葡萄球菌834菌株的tst-1敲除菌株組,每組10只。

    1.1.2 菌株、質(zhì)粒及培養(yǎng)基 金黃色葡萄球菌834標(biāo)準(zhǔn)株(SA 834), 大腸埃希菌DH5α菌株, pCRII質(zhì)粒、pAULA質(zhì)粒(中國醫(yī)科大學(xué)免疫學(xué)教研室)。TSB (Tryptic Soy broth) 培養(yǎng)基、LB (Luria-Bertani)培養(yǎng)基 (BD 公司)。

    1.1.3 實(shí)驗(yàn)試劑BamHI、KpnI、SalI (限制性內(nèi)切酶,TaKaRa公司),DM2000、DM10000(DNA Marker,北京康為世紀(jì)生物科技有限公司),T4 DNA ligase(Promega公司),堿性磷酸酶(TaKaRa公司),基因組DNA小量抽提試劑盒(碧云天生物技術(shù)研究所), 細(xì)菌PCR試劑盒(GENERON公司),DNA凝膠回收試劑盒(碧云天生物技術(shù)研究所), Plasmid mini kit I(Omega公司),Western blot試劑盒(藍(lán)基生物科技)。

    1.1.4 實(shí)驗(yàn)儀器 PTC-200型PCR儀(MJ RESEARCH公司),MUPID電泳儀(Advance公司), GDS-8000型全自動凝膠成像分析儀(UVP公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 制備金黃色葡萄球菌834標(biāo)準(zhǔn)株基因組DNA SA 834經(jīng)TSB培養(yǎng)基37 ℃恒溫振蕩過夜培養(yǎng),收集菌體,使用基因組DNA抽提試劑盒抽提基因組DNA。

    1.2.2 克隆、擴(kuò)增tst-1及其上下游基因片段(SAB0359、SAB0361) 以基因組DNA為模板, 采用正向引物和反向引物(表1)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件: 94 ℃ 4 min, 94 ℃ 30 s, 60 ℃ 30 s, 72 ℃ 55 s, 72 ℃ 4 min,共29個(gè)循環(huán)。PCR產(chǎn)物電泳后,回收目的基因片段。連接回收的基因片段與載體質(zhì)粒pCRII,轉(zhuǎn)化入大腸埃希菌DH5α菌株, 在平板培養(yǎng)后篩選陽性克隆,在37 ℃恒溫振蕩條件下培養(yǎng)24 h, 從培養(yǎng)后的大腸埃希菌中提取質(zhì)粒,并分別命名為pCRII-tst-1、pCRII-SAB0359、pCRII-SAB0361。分別以限制性內(nèi)切酶KpnI、BamHⅠ和BamHⅠ、SalI雙酶切3種質(zhì)粒,電泳后回收目的基因片段。

    1.2.3 構(gòu)建敲除質(zhì)粒 以限制性內(nèi)切酶KpnI、BamHⅠ雙酶切載體質(zhì)粒pAULA, 在pAULA線性化后,以堿性磷酸酶使pAULA線性化載體質(zhì)粒尾端去磷酸化,回收、純化pAULA線性化載體質(zhì)粒。連接SAB0359片段與pAULA線性化載體質(zhì)粒?;厥者B接物,常規(guī)轉(zhuǎn)化大腸埃希菌DH5α,以KpnI、BamHⅠ限制性內(nèi)切酶雙酶切鑒定連接成功的質(zhì)粒,并命名為pAULA-SAB0359。以同樣的方法,在用BamHⅠ、SalI限制性內(nèi)切酶雙酶切pAULA-SAB0359后,連接SAB0361片段與pAULA-SAB0359線性化載體質(zhì)粒,獲得pAULA-Δtst-1敲除質(zhì)粒。

    表1 研究中所用引物序列

    1.2.4 構(gòu)建基因敲除菌株 將pAULA-Δtst-1敲除質(zhì)粒電轉(zhuǎn)入SA 834,反應(yīng)條件為2.5 kV、5 ms,以LB-Em培養(yǎng)基篩選出溫度敏感突變株(Δtst)[7]。

    1.2.5 蛋白質(zhì)的提取與鑒定 以TSB培養(yǎng)基在37 ℃下振蕩培養(yǎng)SA 834、Δtst,24 h后回收細(xì)菌,細(xì)菌裂解后,離心并取上清液,進(jìn)行蛋白定量,然后以Western blot方法鑒定TSST-1。

    1.2.6 生存率分析 將SA 834、Δtst濃度調(diào)整為2×107cfu/mL,分別尾靜脈注射0.1 mL至小鼠體內(nèi),觀察小鼠14 d生存率。

    2 結(jié)果與分析

    2.1tst-1及其上下游基因片段的克隆、擴(kuò)增及鑒定

    將PCR擴(kuò)增的tst-1、SAB0359、SAB0361與 pCRII連接后,常規(guī)轉(zhuǎn)化大腸埃希菌DH5α,從LB-Amp-X-gal選擇性平板上挑取單個(gè)生長的白色菌落,擴(kuò)增后小量抽提質(zhì)粒,雙酶切后以瓊脂糖凝膠電泳檢測基因片段。檢測結(jié)果證明已成功地克隆出tst-1(678 bp)、SAB0359(570 bp)、SAB0361(327 bp)基因片段 (見圖1)。

    2.2 敲除質(zhì)粒的構(gòu)建、鑒定

    以KpnⅠ和SacⅠ酶切鑒定敲除質(zhì)粒,在瓊脂糖凝膠上可見敲除質(zhì)粒的2個(gè)條帶:897 bp條帶和未切完全的原質(zhì)粒(約9 kb) 條帶(見圖2) 。

    2.3 敲除菌株的鑒定

    采用tst基因正向、反向引物,PCR擴(kuò)增SA 834、Δtst基因組DNA,PCR產(chǎn)物的電泳結(jié)果顯示:SA 834有tst基因片段,Δtst無tst基因片段(圖3)。收集并裂解過夜培養(yǎng)的SA 834、Δtst,離心并取上清液,蛋白定量后以Western blot方法檢測TSST-1,檢測結(jié)果顯示SA 834有TSST-1表達(dá),Δtst無TSST-1表達(dá)(圖4)。

    圖1 PCR擴(kuò)增的tst-1、SAB0359、SAB0361序列Fig.1 PCR amplification of tst-1, SAB0359, and SAB03611:DM2 000 marker; 2:tst-1; 3:SAB0359; 4:SAB0361

    圖2 對敲除質(zhì)粒pAULA-Δtst-1的限制性酶切分析Fig.2 Restriction enzyme digestion analysis of pAULA-Δtst-11:DM10 000 marker; 2:pAULA-Δtst-1

    圖3 PCR擴(kuò)增的SA 834、Δtst-1的tst-1序列Fig.3 PCR amplification of tst-1 in SA 834 orΔtst-1

    圖4 SA 834、Δtst-1的TSST-1表達(dá)的Western blot檢測Fig.4 Western blot analysis of TSST-1 in SA834 or Δtst-1

    2.4 敲除菌株生長特性的鑒定

    過夜培養(yǎng)SA 834、Δtst,調(diào)整培養(yǎng)液的濃度至OD600為1.0,取5 mL接種到100 mL TSB培養(yǎng)基中,37 ℃恒溫振蕩培養(yǎng)24 h,分別在0、1、2、4、6、12、24 h檢測菌體的生長情況,敲除菌株與標(biāo)準(zhǔn)菌株生長趨勢基本一致(圖5)。

    2.5 敲除菌株生存率的觀察

    過夜培養(yǎng)SA 834、Δtst,調(diào)整菌液的濃度至2×107cfu/mL,分別取0.1 mL菌液,尾靜脈注射至小鼠體內(nèi),觀察小鼠14 d生存率(圖6)。

    圖5 SA 834、Δtst-1的生長曲線Fig.5 Growth curve of SA 834,Δtst-1

    圖6 SA 834、Δtst-1感染小鼠的生存率Fig.6 Survival rate of mice infected with SA 834,Δtst-1

    3 討 論

    許多研究指出,在金黃色葡萄球菌的感染過程中,金黃色葡萄球菌黏附宿主細(xì)胞,金黃色葡萄球菌逃避宿主免疫機(jī)制,以及金黃色葡萄球菌在宿主細(xì)胞內(nèi)的生存和增殖都發(fā)揮著重要的作用[7-9]。

    鑒于TSST-1是SA的重要致病因子,有必要闡明TSST-1在SA侵襲細(xì)胞中所發(fā)揮的作用。為此,本研究在已經(jīng)表達(dá)、提純重組TSST-1蛋白的基礎(chǔ)上,以PCR的方法擴(kuò)增SA 834的tst-1基因及其上、下游的SAB0359、SAB0361基因,并構(gòu)建pAULA-Δtst-1基因敲除質(zhì)粒, 將pAULA-Δtst-1轉(zhuǎn)入SA 834后,以同源重組方法構(gòu)建了金黃色葡萄球菌的tst-1基因敲除菌株(Δtst-1)。本研究有助于將來進(jìn)一步闡明TSST-1在金黃色葡萄球菌感染機(jī)制中所發(fā)揮的作用。

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    Construction oftst-1-deletion mutant ofStaphylococcusaureus

    LI Sheng-jun1, ZHANG Xiao-qing1, WEI Bing1, ZHANG Di2, Lü Chang-long1

    (1.Teach. &Res.Div.ofImmun.,Coll.ofBasicMed.Sci.,Shengyang110122; 2.Teach. &Res.Div.ofProstheticDentistry,Coll.ofDentalMed.,ChinaMed.Uni.,Shenyang110001)

    The genomic DNA ofStaphylococcusaureusstrain 834 was extracted. Thetst-1 gene and it ’s upstream, downstream genes ofS.aureuswere amplified with PCR and cloned into plasmid pCRII. The upstream, downstream genes oftst-1 gene were inserted into plasmid pAULA to form homogenous recombinant plasmid pAULA-Δtst-1. The pAULA-Δtst-1 was electroporated intoS.aureusto carry out homogenous recombination. Thetst-1-deletion mutant ofS.aureuswas characterized with PCR, Western blot for non-tst-1 fragment, no TSST-1 protein expression was found, suggested that the construction oftst-1-deletion mutant ofS.aureuswas successful.

    Staphylococcusaureus;tst-1;gene knockout

    遼寧省博士科研啟動基金項(xiàng)目(20111109)

    李勝軍 男,副研究員,博士。研究方向?yàn)檎衬っ庖吲c感染免疫。 E-mail: lsj73@hotmail.com

    2014-09-23;

    2014-11-06

    Q939.1;R61

    A

    1005-7021(2015)06-0056-04

    10.3969/j.issn.1005-7021.2015.06.010

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