張愛霞
1.嘉應(yīng)學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,廣東梅州 514015; 2.中山大學(xué)中山醫(yī)學(xué)院干細(xì)胞與組織工程中心,廣東中山 510080
BMSCs 作為多能干細(xì)胞的一種,由于其取材方便,具有多向分化潛能,有較弱的免疫抗原性,體內(nèi)植入反應(yīng)較弱,正逐漸受到學(xué)者們的廣泛關(guān)注。BMSCs 不僅可以分化為成骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、肌細(xì)胞等[1-2]中胚層來源的細(xì)胞,它還具有強(qiáng)大的橫向分化潛能,除了向間質(zhì)組織分化外,BMSCs 還可跨越胚層限制向外胚層的神經(jīng)元、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞等外胚層分化,向胰島樣細(xì)胞、肝細(xì)胞等內(nèi)胚層來源的細(xì)胞分化。BMSCs 的細(xì)胞增殖分裂模式使外源基因易于導(dǎo)入和表達(dá),BMSCs 已成為重要的再生醫(yī)學(xué)種子細(xì)胞[3-4],具有重要的臨床應(yīng)用前景。
體外成功分離培養(yǎng)BMSCs 是實(shí)驗(yàn)研究和臨床應(yīng)用的重要前提。該實(shí)驗(yàn)應(yīng)用全骨髓貼壁培養(yǎng)法分離培養(yǎng)大鼠BMSCs,并觀察其生物學(xué)特性及成骨和成脂的分化潛能,為BMSCs 的體內(nèi)外研究應(yīng)用奠定基礎(chǔ),現(xiàn)報(bào)道如下。
4~6周齡SPF 級SD 大鼠,雌雄不限,體重100~150 g,購自中山大學(xué)中山醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動物中心。
L-DMEM 培養(yǎng)基、H-DMEM 培養(yǎng)基均購自美國GIBCO BRL公司;胎牛血清(FCS)、胰蛋白酶均購自Hyclone 公司;Vitamin C、 地塞米松、 牛胰島素均購自Sigma 公司;β-甘油磷酸鈉購自Calbiochem 公司。兔抗大鼠單克隆抗體CD29-FITC、CD44-FITC、CD45- PE-Cy5 購自BD phamingen 公司。
取SPF 級3~4 周齡SD 大鼠,斷頸處死,75%酒精浸泡5 min。無菌條件下分離大鼠雙側(cè)股骨,并徹底清除附著其上的肌肉組織,去除兩端骨骺,用含10%胎牛血清的L-DMEM 間質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)液反復(fù)沖洗骨髓腔,收集細(xì)胞,1 100 r/min 離心5 min, 棄去上清及脂肪層。以2×105 cells/cm2的密度接種于培養(yǎng)瓶中,置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)48 h 后首次換液,以后每3 d 換液1 次,每天觀察細(xì)胞的形態(tài)及生長情況。
收集第3 代細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為1.0×106個/mL,裝入1.5 mL的EP 管中,每管1 mL,1100 r/min 離心4 min,棄上清。每管加入100 μL PBS,混勻,分別加入CD29-FITC、CD44-FITC、CD45-PE-Cy5兔抗大鼠單克隆抗體1 μL(0.5~1 μg/106 細(xì)胞),混勻。37 ℃避光孵育20 min 后,每管加入1 mL PBS,1100 r/min 離心4 min,棄上清,再重復(fù)洗2 遍,以除去未結(jié)合抗體。0.5 mL PBS 重懸細(xì)胞,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測分析。同時(shí)每管樣品設(shè)立同型陰性對照。
1.5.1 成脂分化及油紅O 染色鑒定 取第3 代的大鼠BMSCs 接種于六孔板,加入含1 umol/L 的地塞米松,0.5 mmol/L 的3-異丁基-1-甲基黃嘌呤,10 mg/L 的牛胰島素,100 mmol/L 的消炎痛(indomethncin),10%FCS 的H-DMEM 誘導(dǎo)3 d,再用含10 mg/L的牛胰島素,10%FCS 的H-DMEM 處理1 d,鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)的變化和生長情況。成脂誘導(dǎo)后的細(xì)胞用PBS 洗滌3 次,10%多聚甲醛固定10 min,油紅O 染色5~10 min,60%異丙醇稍洗去多余染液,蒸餾水洗,Mayer 氏蘇木素淺染核,1%鹽酸水稍分化,水漂洗10 min。于倒置相差顯微鏡下觀察。
1.5.2 成骨分化及茜素紅S 染色 取第3 代的大鼠BMSCs 接種于六孔板,加入成骨細(xì)胞誘導(dǎo)液 (含10~7 mol/L 地塞米松,10 mmol/Lβ-甘油磷酸鈉,50 g/mLVitamin C)2 mL,置培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。誘導(dǎo)分化18 d 后,吸去成骨細(xì)胞誘導(dǎo)液,用PBS 洗滌3 次,然后加入適量的茜素紅-S 染液染10~15 min,顯微鏡下觀察結(jié)果。
原代培養(yǎng)時(shí),骨髓細(xì)胞接種于培養(yǎng)瓶后,細(xì)胞呈圓型,懸浮于培養(yǎng)液中。培養(yǎng)24 h 后即有細(xì)胞貼壁,換液后可見短梭形、星形細(xì)胞分散貼壁生長,第4~5 d 可形成分散的細(xì)胞集落,細(xì)胞形態(tài)不一,梭形細(xì)胞為主,見圖1A。第8~9 d 細(xì)胞呈集落生長,細(xì)胞間相互緊密貼附生長,沿胞體長軸有序排列,呈螺旋狀或漩渦狀,可達(dá)80%~90%融合,見圖1B。消化傳代后,傳代細(xì)胞12 h 完全貼壁生長,3~4 d 可傳代1 次。傳代至第3 代的細(xì)胞形態(tài)均一,呈梭形生長,見圖1C。
圖1 不同時(shí)期骨髓間質(zhì)干細(xì)胞的形態(tài)學(xué)觀察(×100)
流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果顯示,培養(yǎng)的第3 代大鼠BMSCs CD29、CD44 表達(dá)陽性,而CD45 呈陰性,見圖2。
圖2 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志物的表達(dá)
BMSCs 加入脂肪誘導(dǎo)液誘導(dǎo)2 周后,細(xì)胞中有大小不等的脂肪滴出現(xiàn),細(xì)胞逐漸由原來的梭形變?yōu)閳A形或多角形,經(jīng)油紅O 染色,蘇木素復(fù)染核,鏡下觀察可見脂滴為橙紅色,胞核為藍(lán)色,見圖3A。BMSCs 經(jīng)成骨誘導(dǎo)液誘導(dǎo)2 周后,細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)槎嘟切渭?xì)胞,呈多層重疊生長,可觀察到較大的細(xì)胞結(jié)節(jié),有明顯的鈣沉積,茜素紅S 染色后鏡下可見散在大量橘紅色的鈣結(jié)節(jié),為茜素紅與鈣鹽形成的橘紅色的復(fù)合物,見圖3B。
圖3 大鼠骨髓間質(zhì)干細(xì)胞成脂成骨誘導(dǎo)分化鑒定
骨髓間質(zhì)干細(xì)胞是骨髓內(nèi)除造血干細(xì)胞之外的另一類干細(xì)胞,是骨髓造血微環(huán)境的重要組成部分。BMSCs 在全骨髓中比例很低,只占骨髓有核細(xì)胞總數(shù)的0.001%~0.01%[9]。目前已經(jīng)建立了多種體外分離培養(yǎng)BMSCs 的方法,主要有全骨髓貼壁培養(yǎng)法、密度梯度離心法、流式細(xì)胞儀分選法和免疫磁珠分選法,不同的方法具有不同的優(yōu)缺點(diǎn)[1,10]。全骨髓貼壁培養(yǎng)法基于BMSCs 的粘附特性,是獲得這種細(xì)胞的最簡單方法。本實(shí)驗(yàn)采用的是全骨髓貼壁培養(yǎng)法,用L-DMEM + 10% FBS 作為基本培養(yǎng)基,通過反復(fù)、 多次換液去除未貼壁的造血干細(xì)胞,獲得貼壁生長的BMSCs,通過傳代進(jìn)行純化和擴(kuò)增培養(yǎng)。研究顯示,體外培養(yǎng)的BMSCs,在形態(tài)上呈紡錘形成纖維細(xì)胞狀,能貼壁生長,呈螺旋狀或漩渦狀[11]。該研究也證實(shí)了上述觀察結(jié)果。
BMSCs 的多向分化潛能受到多種因素的影響,研究表明,MicroRNA-9-1 可增加BMSCs 向神經(jīng)細(xì)胞的分化比率[12],熟地含藥血清能夠促進(jìn)BMSCs 向神經(jīng)細(xì)胞的分化[13]。王貞等[14]研究發(fā)現(xiàn),人血小板裂解液可以促進(jìn)BMSCs 成骨分化,抑制其成脂分化,朱小虎等[15]證實(shí)硝酸甘油也可促進(jìn)BMSCs 向成骨分化。BMSCs 的疾病治療方面也得到廣泛的研究,并取得較好的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,BMSCs 經(jīng)BMP-2 預(yù)誘導(dǎo)后移植治療大鼠再灌注后心肌梗死,對心肌梗死再灌注損傷有一定治療作用[16]。BMSCs 聯(lián)合腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子用于大鼠腦出血的實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn)[17],移植后可促進(jìn)大鼠腦出血損傷部位結(jié)構(gòu)和功能的修復(fù)。
該研究利用骨髓全貼壁培養(yǎng)法成功分離培養(yǎng)了大鼠BMSCs,所得細(xì)胞具有間質(zhì)干細(xì)胞的生物學(xué)特性,具有多向分化潛能,這將為進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究和應(yīng)用打下堅(jiān)實(shí)的基礎(chǔ)。
[1]李曉峰,趙勁民,蘇偉,等.大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的培養(yǎng)與鑒定[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù), 2011,15(10):1721-1725.
[2]鄧海燕,曾俊義,魏云峰,等.微小RNA-1 慢病毒載體介導(dǎo)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分化為心肌樣細(xì)胞的研究[J].中華老年心腦血管病雜志,2013,15(5):514-520.
[3]王舒陽,韓瑞,張廣宇,等.Oct3/4 在體外誘導(dǎo)大鼠骨髓間質(zhì)干細(xì)胞神經(jīng)分化中的作用[J]中國病理生理雜志,2012,28(3):385-392.
[4]滕春燕,于庭,劉愛忠,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)的胰島樣細(xì)胞治療大鼠胰腺損傷[J].中國老年學(xué)雜志,2009,29(7):799-802.
[5]徐洪軍,關(guān)曉輝,關(guān)興卓.大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向肝細(xì)胞的分化[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2008,12(43):8481-8484.
[6]徐彩霞,項(xiàng)鵬,陳蕊,等.綠色熒光蛋白標(biāo)記骨髓間質(zhì)干細(xì)胞示蹤技術(shù)在體外構(gòu)建組織工程骨中的應(yīng)用研究 [J].生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)雜志,2011,28(1):121-137.
[7]陳艷,宣愛國,方繼榮.Brn-4 基因修飾骨髓間質(zhì)干細(xì)胞移植對老年癡呆鼠學(xué)習(xí)記憶的影響[J].中國老年學(xué)雜志,2012,32(1):82-85.
[8]朱從元,李建平.間充質(zhì)干細(xì)胞聯(lián)合胰島細(xì)胞治療1 型糖尿病研究進(jìn)展[J].世界華人消化雜志,2011,19(24):2546-2550.
[9]Minguell JJ, Erices A, Conget P.Mesenchymal stem cells [J].Exp Biol Med (Maywood), 2001, 226(6):507.
[10]趙林,馮智慧,焦淑賢,等.全骨髓貼壁法分離培養(yǎng)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞及其生物學(xué)特性[J].中國組織工程研究與臨床康復(fù),2011,15(32):5923-5927.
[11]王翠艷,魏芳晶,陰淑瑩,等.大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離、培養(yǎng)和鑒定[J].中國老年學(xué)雜志,2013,33(5):1086-1088.
[12]景黎君,賈永林,魯晶晶,等.MicroRNA-9-1 慢病毒載體的構(gòu)建及其對小鼠骨髓間質(zhì)干細(xì)胞誘導(dǎo)分化為神經(jīng)細(xì)胞的影響[J].中國病理生理雜志,2011,27(2):326-331.
[13]黃勇,吳建軍,劉凱,等.熟地含藥血清對骨髓間質(zhì)干細(xì)胞向神經(jīng)細(xì)胞分化的影響[J].中國老年學(xué)雜志,2011,31(20):3979-3981.
[14]王貞,夏文杰,葉欣,等.人血小板裂解液對骨髓間質(zhì)干細(xì)胞成骨成脂分化的影響[J].中國輸血雜志,2011,24(10):853-857.
[15]朱小虎,程宇核,王剛,等.硝酸甘油對人骨髓間質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化的影響[J].中國骨質(zhì)疏松雜志,2012,18(11):1025-1028.
[16]苗忠澄,高航.BMP-2 預(yù)誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植治療大鼠再灌注后心肌梗死的實(shí)驗(yàn)研究[J].解放軍醫(yī)學(xué)雜志,2014,39(8):601-608.
[17]施迎兵,黃良國,蔣國紅.骨髓間質(zhì)干細(xì)胞聯(lián)合腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子用于大鼠腦出血的實(shí)驗(yàn)研究[J].中風(fēng)與神經(jīng)疾病雜志,2011,28(10):879-882.