利用基因芯片篩選烤煙早花基因初探

楊靜 ,陳杰 ,陳建軍 ,鄧世媛 ,邱妙文 ,趙偉才 ,王維

1 黔東南州煙草公司鎮(zhèn)遠(yuǎn)縣分公司，貴州鎮(zhèn)遠(yuǎn) 557700；

2 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院，廣東廣州 510642；

3 黔東南州煙草公司，貴州凱里 556000；

4 廣東省煙草南雄科學(xué)研究所，廣東南雄 5124002

利用基因芯片篩選烤煙早花基因初探

楊靜1,2,陳杰3,陳建軍2,鄧世媛2,邱妙文4,趙偉才4,王維2

1 黔東南州煙草公司鎮(zhèn)遠(yuǎn)縣分公司，貴州鎮(zhèn)遠(yuǎn) 557700；

2 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院，廣東廣州 510642；

3 黔東南州煙草公司，貴州凱里 556000；

4 廣東省煙草南雄科學(xué)研究所，廣東南雄 5124002

為研究與煙草早花有關(guān)的基因，本試驗利用安捷倫煙草全基因組基因芯片對烤煙品種K326及其抗早花變異系華煙06、K326LF花芽分化過程莖尖端基因表達(dá)譜進(jìn)行分析，篩選出其中與花芽分化可能有主要關(guān)系的基因：AGL20、CCR2、ELF4、ERD7、CBF1、COR413-PM1、EMF2、VIP4、COL1、AGL17、COL9、FPA、SWN等，其中 COL2、ELF4的表達(dá)差異達(dá)到了5倍；AGL62、CBF1、SWN、NAP與FPA的差異大于或等于10倍。該試驗可為進(jìn)一步研究煙草抗早花機理及培育抗早花新品種提供參考。

烤煙；早花；抗早花；基因芯片；基因

煙草是以收獲葉片為目的的經(jīng)濟作物，發(fā)生早花的煙株由于過早地從營養(yǎng)生長轉(zhuǎn)入生殖生長，煙株生長勢弱、葉數(shù)少，葉片窄小、葉片的產(chǎn)量和質(zhì)量降低[1,2]。擬南芥開花基因的研究開啟了植物開花基因研究的大門，通過對擬南芥開花基因同源基因的搜尋，水稻、谷物、果樹中與開花相關(guān)的基因的研究也已取得了很大的進(jìn)展，與開花相關(guān)的基因相繼被克隆[3-5]。Smykal等人[6]從煙草中克隆了與開花時間相關(guān)的基因Nicotiana SOC1(NtSOC1)和Nicotiana FUL(NtFUL)，并經(jīng)過試驗表明它們與光周期特性有關(guān)，過表達(dá)能引起煙草提早開花。李元元根據(jù)不同植物MADS-box家族基因的保守區(qū)序列，設(shè)計簡并引物，從烤煙品種NC82中克隆出了MADS-box家族的同源基因[7]。王小彥等[8]通過低溫等處理煙草后，分析了低溫誘導(dǎo)煙草早花中的SOC1以及一些與代謝相關(guān)的酶、部分植物生長物質(zhì)的基因表達(dá)變化。李爽等人[9]在煙草中轉(zhuǎn)入小黑楊PsnAP1基因，轉(zhuǎn)基因煙株提早開花。有研究發(fā)現(xiàn)，煙草中PtGT1 基因過表達(dá)會導(dǎo)致植株早花[10]。孫穎等人利用RNA-seq技術(shù)對油桐2個不同發(fā)育時期的花芽的轉(zhuǎn)錄組進(jìn)行比較分析，搜尋出103個開花相關(guān)基因[11]。隨著絨毛狀煙草和林煙草全基因組序列圖譜的完成和全球第一套煙草全基因組基因芯片制作的完成[12,13],煙草基因組研究已邁開步伐[14]。本研究選用Agilent煙草全基因組表達(dá)譜芯片檢測煙草早花及抗早花品系花芽形成過程中成千上萬個基因的表達(dá)情況。通過比較基因表達(dá)的差異，分析早花品種與抗早花品系在花芽形成機理上的不同，篩選出與抗早花可能有主要關(guān)系的基因，以期為進(jìn)一步研究煙草抗早花機理及培育抗早花新品種提供有價值的參考。

1 材料與方法

1.1 試驗材料種植及采樣

本試驗選用烤煙品種K326及其抗早花變異系華煙06、K326LF作為材料。為了使易早花品種K326與其抗早花品種（品系）華煙06和K326LF的開花時間差異更明顯，試驗播種時間比生產(chǎn)上正常播種期提前20天，使煙苗前期充分感受低溫脅迫。漂浮育苗，成苗后移栽至大田，并于移栽后第20天開始對各品種莖尖端進(jìn)行花芽分化觀察、適時取樣，每個采樣點取三個莖尖端混合提取RNA作為重復(fù)，并且標(biāo)記好各樣品代號。按照上海生物芯片有限公司提供的采樣指南，所采樣品用液氮固定后冷凍保存（-80℃）備用。采樣時間及試驗材料代號如下：

1.2 RNA的抽提和純化

采用TRIZOL Reagent (Cat#15596-018,Life technologies,Carlsbad,CA,US)，抽提所得total RNA質(zhì)檢合格后使用RNeasy mini kit (Cat#74106,QIAGEN,GmBH,Germany)和 RNase-Free DNase Set(Cat#79254,QIAGEN,GmBH,Germany)純化。試驗樣品RNA采用試劑盒Low Input Quick Amp Labeling Kit,One-Color (Cat#5190-2305,Agilent technologies,Santa Clara,CA,US)和標(biāo)準(zhǔn)操作流程對樣品total RNA中的mRNA進(jìn)行放大和標(biāo)記，并用RNeasy mini kit (Cat#74106,QIAGEN,GmBH,Germany) 純化標(biāo)記后的cRNA。

1.3 芯片雜交掃描

按照Agilent表達(dá)譜芯片配套提供的雜交標(biāo)準(zhǔn)流程和配套試劑盒，Gene Expression Hybridization Kit(Cat#5188-5242,Agilent technologies,Santa Clara,CA,US)雜交，并在洗缸staining dishes (Cat#121,Thermo Shandon,Waltham,MA,US)中洗片。完成雜交的芯片采用Agilent Microarray Scanner (Cat#G2565CA，Agilent technologies,Santa Clara,CA,US)進(jìn)行掃描。

1.4 基因芯片數(shù)據(jù)分析

掃描數(shù)據(jù)采用Gene Spring Software 11.0 (Agilent technologies,Santa Clara,CA,US) 進(jìn)行歸一化處理，所用的算法為Quantile。歸一化的數(shù)據(jù)根據(jù)試驗設(shè)計兩兩比較（表1），計算倍數(shù)差異Fold Change（FC）=SignalA/ SignalB，算法為 2（歸一化A-歸一化B）。登陸上海伯豪生物服務(wù)在線網(wǎng)站(http://www.shanghaibiotech.com/)，利用在線SAS系統(tǒng)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。通過GO（Gene Ontology）分析對兩倍以上的差異表達(dá)基因進(jìn)行功能注釋，結(jié)合NCBI中的基因信息選出可能與開花存在主要關(guān)系的基因，分析差異倍數(shù)并做聚類分析。

表1 基因芯片檢測結(jié)果比較Tab.1 Comparison of gene chip detection results

1.5 熒光定量 PCR驗證

利用煙草Actin基因(AB158612)為內(nèi)參,從基因芯片分析結(jié)果中隨機挑選出5個與開花相關(guān)的基因，進(jìn)行實時熒光定量PCR,三次重復(fù)，反應(yīng)條件為95℃，10min；接著進(jìn)行40個循環(huán)：95℃，15秒；60℃，30 秒。算法為 log22-ΔΔCt。

2 結(jié)果

2.1 縱向比較中與開花相關(guān)的差異基因表達(dá)

2.1.1 各品種（品系）花芽分化過程中開花相關(guān)基因的表達(dá)

K326花芽未分化和分化相比較，對外界刺激應(yīng)答的相關(guān)基因和生殖發(fā)育過程相關(guān)的具有功能注釋的差異基因28個，其中上調(diào)的有7個，下調(diào)的有21個；表達(dá)差異在10倍以上的相關(guān)基因有5個，其中上調(diào)的有1個，下調(diào)的有4個。K326花芽分化與分化后五天相比，表達(dá)差異在兩倍以上的，與開花、抗寒及干旱脅迫可能有主要關(guān)系的基因有18個，其中上調(diào)的有11個，下調(diào)的有7個；10倍以上的相關(guān)基因有5個，1個下調(diào)，4個上調(diào)。華煙06未分化1與未分化2相比與開花相關(guān)的差異基因有15個，其中上調(diào)1個，下調(diào)14個，2倍差異的有6個，3倍差異的有4個，4倍、5倍的均有1個，10倍以上的有3個。未分化2與分化相比，與開花相關(guān)的差異基因有16個，其中上調(diào)10個，下調(diào)6個，2倍差異的有6個，3倍差異的有5個，4倍、5倍、6倍的均有1個，8倍的1個，10倍以上的有1個。K326LF未分化與分化相比與開花相關(guān)的差異表達(dá)基因有16個，其中上調(diào)10個，下調(diào)6個，2倍差異的有11個，3倍差異的有1個，5倍、6倍、7倍的均有1個，10倍以上的有1個。

表2 各品種（品系）花芽分化過程中開花相關(guān)基因的表達(dá)Tab.2 Expression of flowering related genes of various varieti es (strains) in flower bud differentiation process

2.1.2 各品種（品系）縱向比較中開花相關(guān)差異表達(dá)基因的異同

由表3可以看出，在三者的花芽分化過程中，促進(jìn)開花的基因AGL20[15]在K326、華煙06及K326LF花芽分化過程中均有表達(dá)且不斷上調(diào)，說明其對煙株開花具有重要的調(diào)控作用。AGL17過表達(dá)會導(dǎo)致植株早花[16]， K326在未觀察到花芽分化時AGL17已大量表達(dá)，這與其早花也許存在著一定的關(guān)系。EFL4這個與晝夜節(jié)律相關(guān)的基因也隨著環(huán)境變化在三者中表達(dá)情況一致；與環(huán)境脅迫相關(guān)的基因COR413-PM1和COL1在三者中調(diào)控方向一致；其他基因的表達(dá)水平在不同品種（品系）中存在差異。

表3 各品種（品系）花芽分化過程中共有的差異的基因的表達(dá)Tab.3 Expression of differential gene shared by various variet ies(strains) in flower bud differentiation process

K326、華煙06及K326LF花芽分化過程中共同出現(xiàn)兩倍以上差異表達(dá)的基因有AGL20，CCR2，ELF4，ERD7，CBF1，COR413-PM1，EMF2，VIP4，COL1。將K326、華煙06及K326LF花芽分化過程中與開花相關(guān)的差異基因表達(dá)的異同歸納如下：

圖2 K326、HY06、K326LF 花芽分化過程中與開花有關(guān)的基因Fig.2 Flowering related genes of K326,HY06,K326LF in flower bud differentiation process

2.2 橫向比較中與開花相關(guān)的差異基因分析

2.2.1 K326分化當(dāng)天各品種（品系）間與開花相關(guān)的差異基因

K326分化當(dāng)天， HY06和K326LF同時采樣，與K326相比較，基因芯片中檢測到的差異在2倍以上的與開花相關(guān)的基因表達(dá)情況歸納為表4。其中K326（1.1.8J）中與開花相關(guān)的基因大多相對華煙06（1.2.8J）和K326LF（1.3.8J）上調(diào)，華煙06中大多數(shù)開花相關(guān)的基因相對K326LF下調(diào)。

表4 K326花芽分化當(dāng)天各品種（品系）間開花相關(guān)的基因表達(dá)Tab.4 Expression of flowering related genes of various varieti es (strains) in K326 flower bud differentiation process

2.2.2 K326、華煙06、K326LF分化時相比與開花相關(guān)的差異基因

HY06、K326LF與K326分化時，具有兩倍及兩倍以上差異的與開花相關(guān)主要基因的差異情況歸納為表5，其中K326（1.1.8J）相對華煙06（1.2.12J）和K326LF（1.3.13J），大量與開花相關(guān)的基因上調(diào)。

表5 各品種（品系）分化時與開花相關(guān)的差異基因Tab.5 Flowering related differential genes of various varieties (strains) in flower bud differentiation process

2.3 與開花相關(guān)的基因的聚類分析

利用SAS在線系統(tǒng)對挑選出的與開花有著主要關(guān)系的基因探針進(jìn)行Heatmap運算，所得結(jié)果如圖3所示，圖中紅色區(qū)域表示基因上調(diào)，綠色區(qū)域表示基因下調(diào)，黑色表示表達(dá)無變化。由聚類結(jié)果可以看出，對所采樣品而言，樣品1.1.8J，1.2.8J，1.3.8J的基因表達(dá)最相近，即K326花芽分化當(dāng)天所采樣品的基因表達(dá)相接近；1.1.2J與1.2.6J的基因表最相近，即距離K326花芽分化19天時所采的K326莖尖端樣品與距離華煙06花芽分化19天時所采的華煙06莖尖端樣品基因表達(dá)最相近。從開花相關(guān)的主要基因來看，AGL20，AGL24，AGL17這三個 MADS-box家族基因與VRN2的聚類結(jié)果相近。

圖3 各品種（品系）開花相關(guān)的主要基因聚類分析Fig.3 Cluster analysis of the main flowering related genes of various varieties (strains)

2.4 芯片數(shù)據(jù)有效性分析

為了驗證芯片分析結(jié)果，隨機挑選了5個與開花有關(guān)并具有代表性的差異基因（CCR2，ELF4，AGL20，CBF1，COL9）進(jìn)行熒光定量PCR驗證。熒光定量PCR所用材料與基因芯片的材料及處理方式完全一樣。從檢測結(jié)果中隨機選擇15個比較項進(jìn)行數(shù)據(jù)分析，表明驗證結(jié)果與芯片試驗結(jié)果雖存在一些差異，但總體上基本一致，芯片雜交獲得的基因表達(dá)譜信息具有較高的可靠性。

圖4 芯片數(shù)據(jù)與 Real Time-PCR 結(jié)果對比Fig.4 Comparison of gene chip data and Real Time PCR results

3 討論

從表2可看出，在華煙06和K326LF花芽分化過程中，與開花相關(guān)的基因表達(dá)具有一定的偏向，整個分化過程中呈大部分上調(diào)或者大部分下調(diào)；K326花芽分化過程中與開花相關(guān)的差異基因不僅種類多，而且既有一部分上調(diào)，同時又有一部分下調(diào)，沒有出現(xiàn)偏向表達(dá)。

由表4和表5可以看出，同一天采樣的基因表達(dá)相比較差異基因少（表4），雖然莖尖端處于同一種狀態(tài)（表5），但是由于采樣日期不同，各樣品間相比差異基因較多。這可能與影響植株大部分基因表達(dá)的因素主要是環(huán)境有關(guān)。Lee等[17]研究表明，植物對環(huán)境刺激相當(dāng)敏感，簡單的觸碰和黑暗處理都有可能影響基因的表達(dá)變化。在本試驗聚類結(jié)果中，K326開花當(dāng)天所采三個品種（品系）樣品的基因表達(dá)最相近，進(jìn)一步說明基因的表達(dá)受環(huán)境影響關(guān)系很大，但不同品種（品系）中調(diào)控開花的關(guān)鍵基因仍通過差異表達(dá)決定開花。同時，通過試驗的聚類結(jié)果可看到，K326花芽分化前19天所采樣品的表達(dá)與華煙06花芽分化前19天所采樣品的表達(dá)最相近，這說明無論早花還是晚花的烤煙，在感應(yīng)到開花信息，達(dá)到開花準(zhǔn)備的相同時期時，基因的調(diào)控機制相近。

前人研究結(jié)果表示，基因FPA能夠抑制基因FLC的表達(dá)從而促進(jìn)開花[18,19]。在本試驗中，K326花芽分化過程中FPA的表達(dá)在未分化到分化過程中上調(diào)了10倍，而在花芽分化過后急劇下降，其對調(diào)控K326開花可能有較大影響。AGL20是調(diào)控開花的重要基因[20]，本試驗中AGL20在K326花芽未分化到分化過程中上調(diào)了6倍；與K326相比，華煙06花芽分化過程中雖然AGL20也上調(diào)了10倍以上，但抑制開花的基因EMF2和COL9在此過程中也出現(xiàn)上調(diào)，這應(yīng)該與華煙06較晚開花有關(guān)，同時說明植株開花是基因共同調(diào)控的結(jié)果。

研究表明CBF家族基因具有促進(jìn)FLC表達(dá)的作用，導(dǎo)致植株晚花[21]。本試驗中K326分化當(dāng)天，華煙06和K326LF中CBF1的表達(dá)相對K326上調(diào)兩倍以上，與K326相比，K326LF中促進(jìn)開花的MADS-box家族基因AP1[13]的表達(dá)量低于K326；華煙06中AGL17和AGL20的表達(dá)相對K326LF下調(diào)，但其卻早于K326LF出現(xiàn)花芽分化，這應(yīng)該與華煙06中FPA相對K326LF上調(diào)有關(guān)。

前人研究表明，AGL20與AP2相互抑制調(diào)控開花，AGL20通過抑制CBFs的表達(dá)促進(jìn)開花[22]。 本試驗中K326和K326LF花芽分化過程中都檢測出了AP2，但華煙06中未檢測出，這應(yīng)該與華煙06花芽分化過程中AGL20出現(xiàn)高于10倍的差異變化，從而抑制了AP2的表達(dá)有關(guān)（表2）。

安新民等研究表示，從毛白楊中獲得的擬南芥開花相關(guān)基因AP3的同源基因PtAP3有可能在誘導(dǎo)植株早花中起到重要的作用[23]。Kelly 等人[24]從煙草中克隆了FLORICAULA(FLO)和LFY的同源基因NFL1和NFL2(Nicotiana FLO/LFY)，但試驗證明它們與植株開花并無直接關(guān)系。艾育芳等[25]通過同源克隆法從油菜中得到LFY的同源基因BnLFY,試驗表明其在油菜不同時期的根、莖、葉、蕾各器官都有表達(dá)，是組成型表達(dá)。通過前人的研究可以看出，性狀的表現(xiàn)是基因相互作用的結(jié)果，具有相近的序列不一定功能相同。因此，基因芯片檢測出的與開花可能存在主要關(guān)系的基因有可能只是與已知的開花基因具有同源性，其功能有待進(jìn)一步研究。

4 結(jié)論

本研究通過分析各品種（品系）自身花芽分化過程基因表達(dá)差異的縱向比較及早花品種、抗早花品系間基因表達(dá)差異的橫向比較，從中篩選了與開花相關(guān)的差異表達(dá)基因。在花芽分化過程中起主要作用的基因主要有AGL20、CCR2、ELF4、ERD7、CBF1、COR413-PM1、EMF2、VIP4、COL1、AGL17、COL9、FPA、SWN等。AGL20從K326花芽未分化到分化上調(diào)了6倍；從華煙06未分化1（距離其花芽分化的時間與K326花芽未分化到分化的間隔時間相同）到未分化2（K326花芽分化當(dāng)天）上調(diào)了10倍以上，從未分化2到花芽分化又上調(diào)了3倍；從K326LF未分化到分化上調(diào)了2倍?；ㄑ糠只^程中，COL2、ELF4的表達(dá)差異達(dá)到了5倍；AGL62、CBF1、SWN、NAP與FPA的差異大于或等于10倍。

由于本試驗所用煙草芯片中很多基因的功能都還未知，許多與開花相關(guān)的基因的研究仍需要通過合成引物，利用RT-PCR檢測、測序、序列比對等技術(shù)進(jìn)行進(jìn)一步的探索，以明確煙草中存在的與早花相關(guān)的基因。本研究僅僅針對烤煙早花品種及其抗早花品系基因芯片的結(jié)果進(jìn)行了分析研究，為烤煙開花相關(guān)的基因研究提供了初步的、最基礎(chǔ)的分析預(yù)測。具體烤煙中該表達(dá)片段的序列及其在烤煙中的功能仍有待通過測序、克隆、轉(zhuǎn)基因等進(jìn)行更深入的研究以明確其在烤煙中的作用。

[1]劉建鋒．煙草早花產(chǎn)生的原因及生產(chǎn)對策[J]．陜西農(nóng)業(yè)科學(xué)，2005，(2)：91 ，130．

[2]金磊，晉艷，周冀衡，等．煙草早花機理及控制的研究進(jìn)展[J]．中國煙草學(xué)報，2008，14(1)：58-62．

[3]Franklin,KA.Light and temperature signal crosstalk in plant development[J].Current Opinion in Plant Biology,2009,12：63-68．

[4]Horvath D .Common mechanisms regulate flowering and dormancy [J].Plant Science,2009,177(6)：523-531．

[5]Matsuda N,Ikeda K,Kurosaka M,et al.Early Flowering phenotype in transgenic pears (Pyrus communis L.)expressing the CiFT gene[J].J.Japan.Soc.Hort.Sci.2009,78(4)：410–416．

[6]Smykal P,Gennen J,De Bodt S,et al.Flowering of strict photoperiodic Nicotiana varieties in non-inductive conditions by transgenic approaches[J].Plant Mol Biol,2007,65(3)：233-242．

[7]李元元．低溫誘導(dǎo)煙草早花研究與煙草MADS-box基因的同源克隆[J]．中國煙草科學(xué)，2011，32(3)：21-27．

[8]王小彥．低溫誘導(dǎo)煙草早花相關(guān)因子的分析[D]．河南農(nóng)業(yè)大學(xué)碩士論文，2009．

[9]李爽，鄭唐春，臧麗娜，等.小黑楊PsnAP1基因轉(zhuǎn)化煙草的研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué)，2014,42（8）：2278-2281,2308.

[10]Wang Yanwen,Wang Wenchao,Jin Shanghui,et al.Overexpression of a putative poplar glycosyltransferase gene,PtGT1,in tobacco increases lignin content and causes early flowering[J].Journal of Experimental Botany,2012,63(7):2799-2808.

[11]孫穎，譚曉風(fēng)，羅敏，等.油桐花芽2個不同發(fā)育時期轉(zhuǎn)錄組分析[J].林業(yè)科學(xué)，2014,50（5）：70-74.

[12]中國煙草基因組計劃取得重大突破 絨毛狀煙草和林煙草全基因組序列圖譜完成[N/OL].中國煙草，2011-12-13.http://www.tobacco.gov.cn/html/30/3004/3893491_n.html

[13]全球第一套煙草全基因組基因芯片制作完成[N/OL].中國煙草，2013-01-15.http://www.tobacco.gov.cn/html/30/3001/4258838_n.html

[14]煙草全基因組覆瓦式（Tiling）基因芯片設(shè)計理念實現(xiàn)及差異基因圖譜繪制[J].中國煙草學(xué)報，2013,（2）：F0002-F0002.

[15]馬騰飛，林新春.植物SOC1／AGL20基因研究進(jìn)展[J].浙江農(nóng)林大學(xué)學(xué)報，2013，30（6）：930-937.

[16]Han P,García-Ponce B,Fonseca-Salazar G,et al.AGAMOUS-LIKE 17,a novel flowering promoter,acts in a FT-independent photoperiod pathway [J].Plant J.2008,55(2)：253-65．

[17]Lee D,Polisensky DH,Braam J.Genome-wide identification of touch- and darkness- regulated Arabidopsis genes: a focus on calmodulin-like and XTH genes [J].New Phytologist,2005,165(2):429-444.

[18]Sonmez C,B?urle I,Magusin A,et al.RNA 3’ processing functions of Arabidopsis FCA and FPA limit intergenic transcription[J].Proc Natl Acad Sci USA,2011,108(20)：8508-8513．

[19]Willmann M R,Poethig R S.The effect of the floral repressor FLC on the timing and progression of vegetative phase change in Arabidopsis[J].Development,2011,138(4):677-685.

[20]Lee H,Suh S S,Park E,et al.The AGAMOUS-LIKE 20 MADS domain protein integrates floral inductive pathways in Arabidopsis[J].Genes Developme nt,2011,14(18):2366-2376.

[21]Seo E,Lee H,Jeon J,et al.Crosstalk between Cold Response and Flowering in Arabidopsis Is Mediated through the Flowering-Time Gene SOC1 and Its Upstream Negative Regulator FLC [J].ThePlantCell,2009,21：3185–3197．

[22]Tao Zhen,Shen Lisha,Liu Chang,et al.Genomewide identification of SOC1 and SVP targets during the floral transition in Arabidopsis[J].The Plant Journal,2012,70(4):549-561.

[23]An Xinmin,Ye Meixia,Wang Dongmei,et al.Ectopic expression of a poplar APETALA3-like gene in tobacco causes early flowering and fast growth[J].Biotechnology Letters,2011,33(6):1239-1247.

[24]Kelly A J,Bonnlander M B,Meeks-Wagner D R.NFL ,the tobacco homolog of FLORICAULA and LEAFY,is transcriptionally expressed in both vegetative and floral meristems[J].Plant Cell,1995,7:225-234．

[25]艾育芳，陳觀水，周以飛，等.早熟油菜成花相關(guān)基因LFY的克隆與分析[J].西北植物學(xué)報，2012,32（10）：1965-1970.

A preliminary research on screening of premature fowering gene in fue-cured tobacco by microarray

YANG Jing1,2，CHEN Jie3，CHEN Jianjun2，DENG Shiyuan2，QIU Miaowen4，ZHAO Weicai4，WANG Wei2
1 Qiandongnan Zhenyuan County Tobacco Company,Zhenyuan 557700，Guizhou,China;
2 College of Agriculture,South China Agricultural University,Guangzhou 510642,China;
3 Qiandongnan Tobacco Company,Kaili 556000,Guizhou,China;
4 Nanxiong Institute of Tobacco Science,Nanxiong 5124002,Guangdong,China

Agilent Tobacco Oligo Microarray was used to deduce expression profiling of flue-cured tobacco K326 and its premature flowering resistance variety Huayan06,K326LF during flower bud differentiation process.Genes related to flower bud differentiation were screened out: AGL20,CCR2,ELF4,ERD7,CBF1,COR413-PM1,EMF2,VIP4,COL1,AGL17,COL9,FPA andSWN,etc.Among them,COL2 and ELF4 had 5 times difference in terms of expression level while AGL62,CBF1,SWN,NAP had 10 times or above difference with FPA.The study provided a reference for further study of flue-cured tobacco premature flowering resistance mechanism and premature flowering resistance varieties breeding.

flue-cured tobacco;premature flowering;premature flowering resistance;gene chip;gene

楊靜,陳杰,陳建軍,等.利用基因芯片篩選烤煙早花基因初探[J].中國煙草學(xué)報，2015,21（3）

國家煙草專賣局重點科技項目“耐低溫抗早花烤煙新品種選育及遺傳生理機理研究”（110200902043）；廣東省煙草專賣局(公司)科技項目“耐低溫抗早花烤煙新品種選育”（200816）

楊靜（1988—），碩士研究生，研究方向為煙草遺傳育種， Email:yangjinggzchina@163.com

王維（1972—），博士，副教授，碩士生導(dǎo)師，主要從事煙草生理生化研究，Email: wangwei@scau.edu.cn

2014-08-29

: YANG Jing，CHEN Jie，CHEN Jianjun,et al.A preliminary research on screening of premature flowering gene in flue-cured tobacco by microarray [J].Acta Tabacaria Sinica,2015,21(3)