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    利用產(chǎn)脂肪酶B的畢赤酵母工程菌生物拆分制備西司他丁關(guān)鍵手性中間體的體系優(yōu)化

    2015-11-11 07:04:15何軍邀
    生物加工過程 2015年3期
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)酶二甲基脂肪酶

    鄭 磊,何軍邀,2,黃 金,王 普

    (1.浙江工業(yè)大學(xué) 藥學(xué)院,浙江 杭州 310032;2.浙江醫(yī)藥高等??茖W(xué)校,浙江 寧波 315100)

    利用產(chǎn)脂肪酶B的畢赤酵母工程菌生物拆分制備西司他丁關(guān)鍵手性中間體的體系優(yōu)化

    鄭 磊1,何軍邀1,2,黃 金1,王 普1

    (1.浙江工業(yè)大學(xué) 藥學(xué)院,浙江 杭州 310032;2.浙江醫(yī)藥高等專科學(xué)校,浙江 寧波 315100)

    S-(+)-2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸(S-(+)-DMCPA)是合成西司他丁的關(guān)鍵手性中間體。構(gòu)建的畢赤酵母工程菌生產(chǎn)的脂肪酶可高選擇性催化外消旋2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸乙酯(DMCPE)不對稱水解制備S-(+)-DMCPA。對該工程菌產(chǎn)胞外脂肪酶的產(chǎn)酶條件及生物拆分反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化,以提高其催化效率。優(yōu)化獲得重組畢赤酵母最佳產(chǎn)酶條件:采用BMMY培養(yǎng)基,培養(yǎng)基初始pH 8.0,500mL搖瓶裝50mL培養(yǎng)基,每隔4 h向培養(yǎng)基中補(bǔ)加終體積分?jǐn)?shù)為1%的甲醇。培養(yǎng)192 h后,發(fā)酵液中脂肪酶比酶活為4.41 U/L,較優(yōu)化前提高了90.9%。利用含脂肪酶的發(fā)酵上清液進(jìn)行DMCPE的生物拆分反應(yīng),底物濃度為15mmol/L,30℃反應(yīng)36 h,S-(+)-DMCPA的產(chǎn)率可達(dá)43.8%,e.e.值為99.8%。

    西司他?。划叧嘟湍?;脂肪酶;S-(+)-2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸;生物拆分

    西司他丁是第一個應(yīng)用于臨床的腎脫氫二肽酶抑制劑,S-(+)-2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸(S-(+)-DMCPA)是合成西司他丁的關(guān)鍵手性中間體[1-2]。目前,西司他丁手性中間體主要通過化學(xué)法合成,但存在污染大、合成條件苛刻等缺點(diǎn)[3-4]。由于生物催化法具有反應(yīng)條件溫和、立體選擇性高和環(huán)境污染小等優(yōu)點(diǎn),將其應(yīng)用于藥物手性中間體的合成已逐漸成為研究熱點(diǎn)[1]。Wang等[5]從土壤中篩選得到可不對稱水解2,2-二甲基環(huán)丙烷甲腈制備S-(+)-2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸的菌株Rhodococcus sp.AJ270,產(chǎn)率達(dá)44%,e.e.值為88%。Yeom等[6]利用Rhodococcus erythropolis不對稱水解外消旋2,2-二甲基環(huán)丙烷甲腈合成S-(+)-DMCPA,產(chǎn)率為45%,e.e.值為81.8%。

    筆者所在實(shí)驗(yàn)室成員前期采用脂肪酶435催化2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸乙酯(DMCPE)不對稱水解合成西司他丁關(guān)鍵手性中間體S-(+)-DMCPA[7],當(dāng)脂肪酶435用量為16g/L、底物DMCPE濃度為65mmol/L時,以pH 7.2的1mol/L H3PO4緩沖液為反應(yīng)介質(zhì),30℃反應(yīng)64 h,產(chǎn)物的產(chǎn)率和e.e.值分別為45.6%和99.2%。但由于商品脂肪酶價格較高,成為限制其工業(yè)化應(yīng)用的重要因素之一[8],利用微生物產(chǎn)脂肪酶替代商品脂肪酶將成為降低工業(yè)化應(yīng)用成本的途徑之一。

    脂肪酶廣泛存在于動植物和微生物中,由于微生物具有種類多、繁殖快、易發(fā)生遺傳突變等特點(diǎn),目前微生物源脂肪酶已成為研究熱點(diǎn)。酵母菌是國內(nèi)外研究最多的微生物之一,且大部分酵母的發(fā)酵產(chǎn)物被認(rèn)為對人體安全無害,因而酵母菌成為脂肪酶的重要來源之一,如來源于皺褶假絲酵母(Candida rugosa)和南極假絲酵母(Candida antarctica)的脂肪酶[9]。脂肪酶B是從南極假絲酵母中分離得到的一種具有高效專一性的脂肪酶[10],目前已被克隆表達(dá)于多種宿 主,如 Aspergillus oryzae[11]、Pichia pastoris[12]、Saccharomyces cerevisiae[13]、Escherichia coli[14]和Yarrowia lipolytica[15]。 Liu 等[16]將 C.antarctica ZJB09193中的脂肪酶基因在P.pastoris X33中成功表達(dá),并利用該脂肪酶催化合成維生素A酯。利用基因工程菌表達(dá)外源蛋白催化合成藥物手性中間體將成為醫(yī)藥工業(yè)的研究新方向。

    筆者所在實(shí)驗(yàn)室成員以Pichia pastoris為宿主菌株,以pPICZaA為表達(dá)載體,采用PCR裝配法,成功克隆表達(dá)了脂肪酶B基因,利用該重組菌產(chǎn)生的胞外脂肪酶可高選擇性催化外消旋DMCPE不對稱水解制備得到西司他丁關(guān)鍵手性中間體S-(+)-DMCPA。本研究中,筆者通過對該菌株的最佳產(chǎn)酶條件和生物拆分條件進(jìn)行優(yōu)化,以期提高該菌株所產(chǎn)脂肪酶的催化效率,進(jìn)而為后續(xù)的深入研究提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 菌種

    含脂肪酶B基因的畢赤酵母(Pichia pastoris)菌株(表達(dá)載體pPICZaA),由筆者所在實(shí)驗(yàn)室成員自行構(gòu)建、保藏。

    1.2 培養(yǎng)基

    1.2.1 斜面培養(yǎng)基

    酵母粉-蛋白胨-葡萄糖(YPD)培養(yǎng)基(g/L):酵母浸出粉10,蛋白胨20,葡萄糖20,瓊脂粉15。

    1.2.2 種子培養(yǎng)基

    甘油基礎(chǔ)緩沖培養(yǎng)基(BMGY)(1 L):無氨基酵母氮源(YNB)13.4g,500×生物素2mL,甘油10g,酵母浸出粉10g,蛋白胨20g,1mol/L pH 6.0磷酸鹽緩沖液100mL。

    1.2.3 發(fā)酵培養(yǎng)基

    甲醇基礎(chǔ)緩沖培養(yǎng)基(BMMY)(1 L):YNB 13.4g,500×生物素2mL,無水甲醇10mL,酵母浸出粉10g,蛋白胨20g,1mol/L pH 6.0磷酸鹽緩沖液100mL。

    1.3 培養(yǎng)條件

    將保藏菌種劃線轉(zhuǎn)接至YPD培養(yǎng)基上活化,30℃恒溫培養(yǎng)48 h,將單菌落接種至50mL BMGY培養(yǎng)基,200r/min、30℃振蕩培養(yǎng)至600nm的吸光度值OD600為2~6。

    以10%的接種量將種子液接入裝有50mL BMMY培養(yǎng)基的500mL三角瓶中,200r/min、30℃下,每24 h按培養(yǎng)基體積分?jǐn)?shù)的1%補(bǔ)加無水甲醇,培養(yǎng)96 h后檢測發(fā)酵液中胞外脂肪酶的酶活。

    1.4 產(chǎn)酶條件優(yōu)化

    為了考察畢赤酵母工程菌的最佳產(chǎn)酶條件,分別對裝液量、發(fā)酵培養(yǎng)基初始pH、補(bǔ)加甲醇濃度、甲醇添加時間間隔和產(chǎn)酶發(fā)酵時間進(jìn)行優(yōu)化,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,每項(xiàng)優(yōu)化結(jié)果都用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    1.5 生物拆分DMCPE制備S-(+)-DMCPA的反應(yīng)條件優(yōu)化

    為了考察重組菌株所產(chǎn)脂肪酶不對稱拆分DMCPE制備S-(+)DMCPA的最佳反應(yīng)條件,采用最佳產(chǎn)酶條件下培養(yǎng)得到的含酶發(fā)酵液,分別選取不同反應(yīng)溫度(25~45℃)、底物濃度(10~30mmol/L)和反應(yīng)時間進(jìn)行生物拆分反應(yīng),氣相色譜法(GC)檢測得到S-(+)-DMCPA產(chǎn)率和e.e.值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,每項(xiàng)優(yōu)化結(jié)果都用于以后的實(shí)驗(yàn)。

    1.6 檢測方法與酶活力定義

    底物DMCPE和產(chǎn)物S-(+)-DMCPA的濃度和e.e.值采用氣相色譜法檢測,具體測定條件參照文獻(xiàn)[16]。

    酶活力定義:在30℃下,1min內(nèi)不對稱水解DMCPE生成1 μmol S-(+)-DMCPA所需的酶量,定義為1個酶活單位(U)。

    酶活力檢測方法:取10mL發(fā)酵上清液于50mL錐形瓶中,加入0.02g底物DMCPE,30℃、200r/min反應(yīng)6 h。反應(yīng)結(jié)束后,加入2倍體積的乙酸乙酯,30℃、200r/min振蕩萃取45min,靜置分層后取乙酸乙酯相檢測產(chǎn)物S-(+)-DMCPA的生成量,計(jì)算得到單位體積發(fā)酵液的脂肪酶酶活(U/L)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 產(chǎn)酶條件優(yōu)化

    2.1.1 裝液量對產(chǎn)酶的影響

    在發(fā)酵產(chǎn)酶時,培養(yǎng)基裝液量會影響搖瓶內(nèi)的溶氧水平,進(jìn)而影響菌體生長和目的蛋白的表達(dá)。為了考察裝液量對產(chǎn)酶的影響,將種子液接至不同裝液量(25、50、75、100和150mL BMMY培養(yǎng)基)的500mL三角瓶中,按發(fā)酵培養(yǎng)條件對基因工程菌P.pastoris進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),培養(yǎng)96 h后檢測發(fā)酵液中脂肪酶的酶活,結(jié)果如圖1所示。

    由圖1可知:當(dāng)裝液量為50mL時,比酶活達(dá)到最大值(2.31 U/L),繼續(xù)增加裝液量,酶活逐漸下降。原因可能是裝液量過少會增加發(fā)酵過程中發(fā)酵液的蒸發(fā)損失,使有害代謝物濃度上升,從而影響菌體的生長及脂肪酶的表達(dá)。適量增加裝液量可部分緩解上述問題,但裝液量過多會導(dǎo)致培養(yǎng)基中溶氧水平降低,影響菌體生長和蛋白表達(dá)。因此,最佳裝液量為500mL三角瓶中裝液50mL。

    圖1 裝液量對產(chǎn)酶的影響Fig.1 Effect of loaded volume on enzyme activity

    2.1.2 發(fā)酵培養(yǎng)基初始pH對產(chǎn)酶的影響

    重組畢赤酵母可在pH 3.0~7.0范圍內(nèi)正常生長,但外源蛋白表達(dá)的適宜pH隨著目的蛋白不同存在很大的差異??疾彀l(fā)酵培養(yǎng)基初始pH對產(chǎn)酶的影響,將種子液接入初始 pH分別為5.0、6.0、7.0、8.0、9.0和10.0的BMMY培養(yǎng)基中,按發(fā)酵液培養(yǎng)條件對基因工程菌P.pastoris進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),96 h后檢測發(fā)酵液中脂肪酶的酶活,結(jié)果如圖2所示。

    圖2 培養(yǎng)基初始pH對產(chǎn)酶的影響Fig.2 Effect of pH on enzyme activity

    由圖2可知:培養(yǎng)基初始pH為8.0時比酶活最高(3.0 U/L)。當(dāng)pH低于8.0時,脂肪酶酶活隨pH升高明顯增加,這可能是由于發(fā)酵過程中菌體產(chǎn)生的酸性代謝產(chǎn)物使發(fā)酵液酸性增強(qiáng),從而影響細(xì)胞代謝和脂肪酶酶活。當(dāng)pH高于8.0時,堿性條件會抑制畢赤酵母的生長,從而抑制脂肪酶的表達(dá)。故培養(yǎng)基初始pH以8.0為宜。

    2.1.3 甲醇體積分?jǐn)?shù)對產(chǎn)酶的影響

    發(fā)酵培養(yǎng)階段,甲醇可作為重組畢赤酵母的C源和產(chǎn)酶誘導(dǎo)劑,誘導(dǎo)醇氧化酶(AOX)的合成[17],因此,甲醇體積分?jǐn)?shù)可能會影響胞外蛋白的表達(dá)量。按發(fā)酵液培養(yǎng)條件對基因工程菌P.pastoris進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),每隔24 h按培養(yǎng)基體積分?jǐn)?shù)的0.5%、0.75%、1.0%、1.25%、1.5%和2.0%補(bǔ)加無水甲醇,培養(yǎng)96 h后檢測發(fā)酵液中脂肪酶的酶活,結(jié)果如圖3所示。

    圖3 甲醇體積分?jǐn)?shù)對產(chǎn)酶的影響Fig.3 Effect of methanol volume fraction on enzyme activity

    由圖3可知:當(dāng)甲醇體積分?jǐn)?shù)為0.5%時,已有胞外脂肪酶的表達(dá),但酶活較低,表明0.5%的甲醇不能有效維持重組畢赤酵母的菌體生長代謝及胞外蛋白表達(dá)。隨著甲醇體積分?jǐn)?shù)的增加,脂肪酶活力逐漸提高;當(dāng)甲醇體積分?jǐn)?shù)為1.0%時,脂肪酶比酶活力最高(3.32 U/L);繼續(xù)提高甲醇體積分?jǐn)?shù),脂肪酶比酶活力下降迅速,原因可能是甲醇積累抑制了細(xì)胞生長[18]。因此選擇甲醇的最佳誘導(dǎo)體積分?jǐn)?shù)為1.0%。

    2.1.4 甲醇添加時間間隔對產(chǎn)酶的影響

    畢赤酵母含有2個AOX基因,分別為AOX1和AOX2,其中AOX1為強(qiáng)啟動子,細(xì)胞中絕大多數(shù)醇氧化酶活力由 AOX1提供[19]。將種子液接入BMMY培養(yǎng)基中,按發(fā)酵液培養(yǎng)條件對基因工程菌P.pastoris進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),每隔4、8、12和24 h補(bǔ)加甲醇1次,培養(yǎng)96 h后檢測發(fā)酵液中脂肪酶的酶活,結(jié)果如圖4所示。

    圖4 甲醇添加時間間隔對產(chǎn)酶的影響Fig.4 Effects of time interval of adding methanol on enzyme activity

    由圖4可知:在24 h內(nèi)甲醇添加總量不變的情況下,甲醇添加時間間隔為4 h時比酶活最高(4.06 U/L),隨著添加時間間隔的變大,酶活逐漸下降。這主要是由于重組畢赤酵母對甲醇濃度的瞬間變化較敏感,甲醇濃度頻繁波動會導(dǎo)致AOX1活力降低,并可能導(dǎo)致細(xì)胞死亡,因此維持發(fā)酵液中甲醇濃度相對穩(wěn)定對提高重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)有重要意義[20-21]。

    2.1.5 培養(yǎng)時間對酶活的影響

    按發(fā)酵液培養(yǎng)條件對基因工程菌P.pastoris進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng),每隔24 h取樣檢測發(fā)酵液中脂肪酶的酶活,分別培養(yǎng)24、48、72、96、120、144、168、192和216 h,考察培養(yǎng)時間對產(chǎn)酶的影響,結(jié)果如圖5所示。

    圖5 發(fā)酵時間對產(chǎn)酶的影響Fig.5 Effect of fermentation time on enzyme activity

    由圖5可知:隨著發(fā)酵時間的延長,脂肪酶活力逐漸提高,在192 h時比酶活最高(4.41 U/L),比優(yōu)化前(2.31 U/L)提高90.9%。192 h后有所下降,推測為菌體密度大、營養(yǎng)缺乏、酵母細(xì)胞衰老、表達(dá)外源蛋白能力減弱,酵母細(xì)胞分泌的蛋白酶積累,降解外源蛋白,從而導(dǎo)致酶活下降[22]。因此,確定最佳發(fā)酵時間為192 h。據(jù)文獻(xiàn)[2]報道,脂肪酶435比酶活為0.92 U/g,因此,每升該發(fā)酵液酶活力相當(dāng)于4.79g脂肪酶435酶活力。

    2.2 生物拆分制備S-(+)-DMCPA的條件優(yōu)化

    2.2.1 反應(yīng)溫度對拆分產(chǎn)率和e.e.值的影響

    反應(yīng)溫度在手性拆分過程中對酶活力以及對映體選擇性具有關(guān)鍵作用??疾觳煌瑴囟龋?5、30、35、40和45℃)對產(chǎn)物S-(+)-DMCPA產(chǎn)率和e.e.值的影響,結(jié)果如圖6所示。

    由圖6可知:當(dāng)溫度為30℃時,S-(+)-DMCPA產(chǎn)率最高。隨著溫度升高,產(chǎn)率逐漸下降,這可能是由于高溫導(dǎo)致脂肪酶失活。而e.e.值隨溫度變化不大,均在99%以上。因此最佳反應(yīng)溫度為30℃。

    圖6 溫度對拆分產(chǎn)率和e.e.值的影響Fig.6 Effects of temperature on yield and e.e.value of S-(+)-DMCPA

    2.2.2 底物濃度對產(chǎn)率和e.e.值的影響

    底物濃度越高,酶與底物接觸的幾率就越高,反應(yīng)也越充分;當(dāng)?shù)孜餄舛容^低時,酶催化反應(yīng)速度與底物濃度成正比,反應(yīng)速度隨著底物濃度的增加而加快。當(dāng)?shù)孜餄舛瘸^一定值后,反應(yīng)速度的上升與底物濃度不再成正比,而是逐漸趨向平衡,此時繼續(xù)增大底物濃度已無意義。為此,考察不同底物濃度(10、15、20、25和30mmol/L)對產(chǎn)物S-(+)-DMCPA產(chǎn)率和 e.e.值的影響,結(jié)果如圖 7所示。

    圖7 底物濃度對拆分產(chǎn)率和e.e.值的影響Fig.7 Effects of substrate concentration on yield and e.e.value of S-(+)-DMCPA

    由圖7可知:當(dāng)?shù)孜餄舛鹊陀?5mmol/L時,S-(+)-DMCPA產(chǎn)率均保持在40%以上,e.e.值為99%以上。繼續(xù)增加底物濃度,產(chǎn)率降低,綜合考慮產(chǎn)率和e.e.值,選擇最適底物濃度為15mmol/L。底物濃度高于 Wang等[5]報道的利用 Rhodococcus sp.AJ270不對稱水解1mmol/L的2,2-二甲基環(huán)丙烷甲腈制備S-(+)-DMCPA,產(chǎn)物e.e.值也優(yōu)于其報道的88%。

    2.2.3 反應(yīng)時間對產(chǎn)率和e.e.值的影響

    為考察反應(yīng)時間對產(chǎn)率和e.e.值的影響,反應(yīng)8 h后每隔4 h取樣檢測,考察產(chǎn)物產(chǎn)率和e.e.值隨時間的變化規(guī)律,結(jié)果如圖8所示。

    圖8 反應(yīng)時間對產(chǎn)率和e.e.值的影響Fig.8 Effects of time course on yield and e.e.value of S-(+)-DMCPE

    由圖8可知:S-(+)-DMCPA產(chǎn)率隨著時間的延長而增高,e.e.值均在99%以上,36 h時產(chǎn)率最大,為43.8%,產(chǎn)物濃度達(dá)6.6mmol/L。繼續(xù)延長反應(yīng)時間未能提高產(chǎn)率,綜合考慮產(chǎn)率和e.e.值,選擇反應(yīng)時間為36 h。

    3 結(jié)論

    利用工程菌產(chǎn)生的胞外脂肪酶催化外消旋2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸乙酯不對稱水解合成西司他丁關(guān)鍵手性中間體S-(+)-2,2-二甲基環(huán)丙烷甲酸。當(dāng)500mL三角瓶裝液量為50mL,發(fā)酵培養(yǎng)基初始pH為8.0,產(chǎn)酶培養(yǎng)過程中每隔4 h向培養(yǎng)基中補(bǔ)加終體積分?jǐn)?shù)為1.0%的甲醇,200r/min、30℃下誘導(dǎo)發(fā)酵192 h,酶活可達(dá)到4.41 U/L,較優(yōu)化前(2.31 U/L)提高90.9%。優(yōu)化獲得最佳轉(zhuǎn)化條件:200r/min、30℃、底物濃度15mmol/L、反應(yīng)36 h,產(chǎn)物S-(+)-DMCPA產(chǎn)率為43.8%,e.e.值為99.8%。

    采用重組脂肪酶催化DMCPE不對稱水解合成西司他丁關(guān)鍵手性中間體S-(+)-DMCPA,與采用產(chǎn)胞內(nèi)脂肪酶的全細(xì)胞催化相比,以含胞外脂肪酶的發(fā)酵上清液直接催化具有預(yù)處理簡單、反應(yīng)過程中傳質(zhì)阻力小等優(yōu)點(diǎn);與脂肪酶435的催化相比,具有成本低廉的優(yōu)點(diǎn)。但目前工藝仍然存在菌體產(chǎn)酶周期較長、催化水解的底物濃度較低等缺點(diǎn),如何縮短菌體培養(yǎng)時間、提高底物濃度及脂肪酶重復(fù)利用將會成為后續(xù)的研究方向。

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    (責(zé)任編輯 管 珺)

    Process optimization catalyzed by recombinant Pichia patoris derived lipase B for the synthesis of cilastatin

    ZHENG Lei1,HE Junyao1,2,HUANG Jin1,WANG Pu1
    (1.College of Pharmaceutical Science,Zhejiang University of Technology,Hangzhou 310032,China;2.Zhejiang Pharmaceutical College,Ningbo 315100,China)

    S-(+)-2,2-dimethylcyclopropane carboxylic acid (S-(+)-DMCPA) is a key chiral intermediate for the synthesis of cilastatin.A recombinant Pichia patoris can convert racemic ethyl-2,2-dimethylcyclopropane carboxylate(DMCPE)to S-(+)-DMCPA with high enantioselectivity.In order to enhance its catalytic efficiency,the lipase-producing conditions and catalytic conditions were optimized. The optimal conditions for lipase production were as follows:the optimal loaded volume was 50mL/500mL,initial pH of fermentation medium was 8.0.Methanol was added into the medium to a final concentration of 1%(V/V)at every 4 h intervals.Under the optimal conditions,the lipase activity of the recombinant reached 4.41 U/L within 192 h,with an increase of 90.9%compared to the control.The supernatant containing lipase was then used for biocatalytic resolution of DMCPE to S-(+)-DMCPA at 15mmol/L substrate concentration at 30℃ for 36 h.Under above conditions,the best yield of 43.8%was obtained with enantiomeric excess(e.e.)value of 99.8%.

    cilastatin;Pichia pastoris;lipase;S-(+)-2,2-dimethylcyclopropane carboxylic acid;biocatalytic resolution

    Q815

    A

    1672-3678(2015)03-0070-06

    10.3969/j.issn.1672-3678.2015.03.013

    2014-03-26

    浙江省科技廳重大科技攻關(guān)項(xiàng)目(2010C11040);浙江省級公益性技術(shù)應(yīng)用研究計(jì)劃(2011C33005);浙江省教育廳科研項(xiàng)目(Y201226056)

    鄭 磊(1989—),男,浙江杭州人,碩士研究生,研究方向:生物催化與手性合成;王 普(聯(lián)系人),教授,E-mail:wangpu@zjut.edu.cn

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