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      探析臨床免疫檢驗影響原因及措施

      2015-10-21 18:14:32段曉芳
      延邊醫(yī)學(xué) 2015年27期
      關(guān)鍵詞:措施

      段曉芳

      摘要:目的: 探討臨床免疫檢驗的影響因素及相關(guān)控制措施。方法: 選取我院收治的患者96例作為研究對象,按照免疫檢驗控制方法劃分,對照組46例患者采用常規(guī)免疫檢驗,觀察組50例從標本采集到檢測全程均采用嚴格監(jiān)控措施,對比兩組患者免疫檢驗假陽性檢出率。結(jié)果: 觀察組假陽性檢出率為6.0%,顯著低于對照組28.3%,對比差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0. 05)。結(jié)論 :有諸多因素會影響臨床免疫檢驗結(jié)果,因此一定要控制好檢驗室溫濕度,選擇高質(zhì)量儀器與試劑,提升檢驗人員水平,避免影響檢驗結(jié)果。

      關(guān)鍵詞:免疫檢驗;影響原因;措施

      臨床免疫檢驗范圍較大,包括放射免疫檢驗、免疫原制備、抗血清制備、酶免疫檢驗、化學(xué)發(fā)光免疫檢驗以及抗原抗體反應(yīng)等[1]。臨床醫(yī)師在對疾病種類進行判斷并選擇最佳治療方法時多將檢驗結(jié)果作為主要依據(jù),因此疾病治療療效在很大程度上受到免疫檢驗結(jié)果準確性的影響,故此一定要保證免疫檢驗結(jié)果的準確性。然而,臨床免疫檢驗工作影響因素較多,因此對其檢驗質(zhì)量進行控制的關(guān)鍵在于做好免疫檢驗前的質(zhì)量控制工作。本文為探討臨床免疫檢驗的主要影響因素并采取針對性預(yù)防措施,現(xiàn)選取患者96例作為研究對象,對其臨床資料進行回顧性分析,報告如下。

      1 資料與方法

      1.1 一般資料

      選取我院2013年3月至2014年3月收治的患者96例作為研究對象,對其臨床資料進行回顧性分析。按照免疫檢驗控制方法劃分,對照組46例患者采用常規(guī)的免疫檢驗,觀察組50例從標本采集到檢測全程均采用嚴格監(jiān)控措施。對照組患者中男性27例,女性19例;年齡為36至71歲,平均(53.6±6.2)歲。觀察組患者中男性29例,女性21例;年齡為35至70歲,平均(52.8±5.8)歲。

      1.2 一般方法

      對照組采用常規(guī)免疫檢驗,觀察組從標本采集到檢測全程均采用嚴格監(jiān)控措施,具體如下:

      1.2.1 免疫檢驗前監(jiān)控措施 標本質(zhì)量得以保證是采集標本的前提,與此同時還要將標本采集時間、止血帶使用方式以及采血姿勢等全方位考慮進來。若患者口服過激素類藥物,在采集其血液標本時應(yīng)高度關(guān)注患者體位變化以及采集時間,防止出現(xiàn)生長激素、促卵泡激素以及促黃體激素的激素峰值。同時在保存標本時要按照標本特性進行分類,比如對于熱敏感標本在送檢之前需要冰凍,心鈉素或者血栓素等在檢測之前需要添加抗凝劑。在開始免疫檢驗前需對酶標儀、比濁儀、水浴箱、恒溫箱、分光光度計以及溫度計等行校正與核對,同時還要對反應(yīng)板、吸量管、微量加樣器以及稀釋棒進行定期檢查,最大程度降低實驗誤差,此外對于免疫檢驗儀器應(yīng)防止對制造商予以頻繁更換。

      1.2.2 免疫檢驗中監(jiān)控措施 主要采用EQA(室間質(zhì)量評價),每個季度按照相關(guān)要求對臨檢中心與衛(wèi)生部下發(fā)的標本予以嚴格檢驗。應(yīng)用IQC(室內(nèi)質(zhì)量控制):在檢測艾滋病、乙型肝炎、丙型肝炎以及甲型肝炎等患者時推薦第三代夾心法酶免試劑盒,在選取試劑時應(yīng)注重其保存條件、有效期等。最好固定廠家,避免頻繁更換。醫(yī)院在選擇自行配置的試劑時應(yīng)確保其配置過程的嚴格性,且經(jīng)過鑒定顯示合格后才能夠使用。

      1.2.3 臨床免疫檢驗后監(jiān)控措施 初檢全部樣本,同時檢驗人員還要審查初檢結(jié)果,對可疑樣本或者結(jié)果為陽性樣本需復(fù)檢,且每次都對血清采用室內(nèi)質(zhì)量控制。同時檢驗室還要對標本予以保留,認真記錄,便于后期查詢。

      1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

      應(yīng)用軟件SPSS21.0對所有數(shù)據(jù)行統(tǒng)計學(xué)處理,若P<0.05代表差異存在統(tǒng)計學(xué)意義。

      2 結(jié)果

      3 討論

      3.1 臨床免疫檢驗影響因素

      3.1.1 內(nèi)源性感染因素 包括異嗜性抗體、濃度較高的非特異性免疫球蛋白、類風(fēng)濕因子、部分自身抗體。補體以及交叉反應(yīng)物質(zhì)等均屬于免疫檢查的內(nèi)源性干擾因素。一般而言臨床血清標本中均存有程度不一的內(nèi)源性干擾因素,進而會導(dǎo)致結(jié)果產(chǎn)生假陽性現(xiàn)象。在本研究中觀察組假陽性檢出率為6.0%,對照組為28.3%,對比差異明顯(P<0.05)。為避免行ELISA檢驗時受到類風(fēng)濕因子干擾,需對血清標本予以稀釋,最大限度降低非特異性類風(fēng)濕因子濃度,進而將ELISA測定遭受的類風(fēng)濕因子干擾程度降至最低,以提升檢驗結(jié)果的有效性與精準度。此外,還可對酶標抗體進行改變,首先用變性IgG對類風(fēng)濕因子進行封閉,再檢測抗原,亦可添加LgY(特異性雞蛋黃抗體)或者還原劑至標本中[2],降解類風(fēng)濕因子,將干擾充分消除。

      3.1.2 外源性感染因素 在免疫檢驗中外源性影響因素包括溫度、洗液更換、實驗員素質(zhì)、標本質(zhì)量以及試劑平衡時間等。在免疫學(xué)檢驗中多為血液類標本,除血液標本外還有腦脊液、大小便等標本,其標本質(zhì)量會受到采集時間、過程以及方法的影響,比如在采集血漿時患者姿勢一定要正確,同時還要觀察是否需要應(yīng)用添加劑等。此外標本放置時間過長、溶血、凝固不全以及遭受細菌污染等都會影響檢驗結(jié)果,因此要想確保檢驗質(zhì)量就一定要避免標本出現(xiàn)溶血現(xiàn)象。而采血會受到不良習(xí)慣及劣質(zhì)采血器具影響等會導(dǎo)致標本溶血。因為血紅素基團存在于血紅蛋白中,故而其性質(zhì)與過氧化物相似,在ELLSA(酶聯(lián)免疫吸附試驗)中主要將HPR(辣根過氧化物酶)當(dāng)做標記酶,在該實驗中若血清有較高的血紅蛋白濃度,就會在溫育時吸附固定相,而后顯色于HRP底物,對檢驗結(jié)果造成干擾。且在實驗過程中使用電化學(xué)發(fā)生免疫分析法對NSE(神經(jīng)特異性酸純化酶)予以檢測時若發(fā)生溶血現(xiàn)象其影響較為明顯。當(dāng)溶血在1g/L Hb標準時會明顯提升NSE檢測結(jié)果,且血紅蛋白提升水平與NSE檢測結(jié)果的影響為正相關(guān)關(guān)系。一般而言,血紅蛋白提升1g/LNSE檢測結(jié)果會上升25mg/ml左右[3],因此一旦出現(xiàn)溶血現(xiàn)象需重新采血,避免檢驗結(jié)果受到誤差影響。此外,檢驗設(shè)備、試劑與檢驗人員等均會影響檢驗結(jié)果。一定要定期校正與檢查儀器設(shè)備,確保使用時具有高精密度。檢驗人員參與檢驗全程,因此其專業(yè)水平、操作熟練度以及工作態(tài)度等均會對檢驗結(jié)果產(chǎn)生影響。

      3.2 相關(guān)措施

      ①在孵箱中放置酶標板時溫度為25℃或者4℃,其時間顯示差在10min左右,且若實驗室濕度在40%以下則會受到靜電影響,帶電微粒會吸附于塑料器皿上,污染標本。因此應(yīng)控制好實驗室溫濕度,溫度最好在18至25℃,濕度最好在30%至60%范圍中。②采集標本時方法應(yīng)正確,在恰當(dāng)時間采集,再應(yīng)用抗凝劑或者穩(wěn)定劑。若檢驗患者生長激素需陣發(fā)性釋放激素,并告知患者相關(guān)注意事項,在血液采集前14d科學(xué)飲食與規(guī)律作息,前3天應(yīng)避免食用高脂肪食物,前1d避免攝取酒精,前12至16h應(yīng)確保處于空腹狀態(tài)。標本采集時間最好為清晨,患者坐位或者平臥時采集,止血帶時間應(yīng)在1min以內(nèi)。③選取采血器物時應(yīng)注重其質(zhì)量,避免使用劣質(zhì)品。在選用試劑時應(yīng)選擇相同生產(chǎn)廠家同批次產(chǎn)品,在檢驗過程中要按照要求操作試劑,使用后于專用冰箱中放置。若較長時間沒使用則要先測試其特性,及時更換不合格試劑,避免影響檢驗結(jié)果。④檢驗完成后倒出洗液并用蒸餾水清洗,強化檢驗人員素質(zhì),防止不良習(xí)慣。

      綜上所述,有諸多因素會影響臨床免疫檢驗結(jié)果,因此一定要控制好檢驗室溫濕度,選擇高質(zhì)量儀器與試劑,提升檢驗人員水平,避免影響檢驗結(jié)果。

      參考文獻:

      [1]陶小美.臨床免疫檢驗影響因素及對策分析[J].大家健康(下旬版),2014,(2):64-64.

      [2]梁輝.臨床免疫檢驗質(zhì)量的影響因素及控制措施研究[J].中外醫(yī)學(xué)研究,2014,(7):145-145,146.

      [3]胡偉.控制臨床免疫檢驗質(zhì)量的方法及措施分析[J].醫(yī)藥前沿,2014,(20):382-382.

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