余光勤,宋文婷,袁澤利,胡慶紅,吳 慶,張銘欽,江 波
(遵義醫(yī)學(xué)院藥學(xué)院,貴州 遵義563003)
金屬配合物因其在醫(yī)藥領(lǐng)域有著巨大的潛在藥用價(jià)值而引起藥物化學(xué)研究者的長期關(guān)注[1-2]。如已成功應(yīng)用于臨床的鉑類藥物對DNA結(jié)構(gòu)造成損傷的作用機(jī)制,迄今為止沒有任何有機(jī)藥物可以模仿;此外,由于金屬配合物具有不同的配位數(shù)和幾何構(gòu)型以及不同的熱力學(xué)與動力學(xué)特性,易產(chǎn)生不同的氧化還原態(tài),可利用其實(shí)現(xiàn)化學(xué)治療與光動力治療的雙治療功能[3]。鉑類配合物型抗腫瘤藥物臨床應(yīng)用廣泛,而此類抗腫瘤藥物易產(chǎn)生毒副作用(如神經(jīng)毒性、肝毒性、腎毒性、耳毒性、骨髓毒性等)[3],嚴(yán)重制約了其實(shí)際療效和適用范圍,因此,人們繼而研究具有不同作用機(jī)理的新型金屬配合物用于抗癌藥物篩選。
釕配合物作為非鉑系金屬配合物,已有文獻(xiàn)報(bào)道了其低毒、易吸收及排泄快等特點(diǎn)[4];此外,釕配合物還具有易被腫瘤組織吸收的特性[5]。因而,釕配合物是國際公認(rèn)的最具發(fā)展?jié)摿Φ倪^渡金屬配合物,有望成為繼鉑類配合物后的抗腫瘤活性高、毒性低的金屬配合 物 型 抗 腫 瘤 藥 物[4,6]。釕 配 合 物 [HIm][trans-RuCl4(DMSO)(Im)](NAMI-A)和 [HIm][trans-RuCl4(Im)2](KP1019)成功進(jìn)入抗腫瘤臨床試驗(yàn)[7-8],極大地激發(fā)了研究者們對釕配合物的研究熱情[9-10]。金屬配合物與生物大分子,尤其是與DNA相互作用的方式和機(jī)理,可為抗癌前藥的初步篩選提供有用的信息,也有助于從分子水平了解抗癌藥物的作用機(jī)理,為設(shè)計(jì)、合成低毒、高效的抗癌藥物提供理論和實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ),使藥物的初步篩選更加有效[11]。因此,設(shè)計(jì)、合成金屬配合物分子并研究其與DNA的相互作用具有重要意義。
席夫堿類配合物因具有許多優(yōu)良的生物活性(如抑菌、殺菌、抗腫瘤、抗病毒等),其與生物大分子相互作用的研究多年來備受關(guān)注[12-14]。鑒于此,作者設(shè)計(jì)、合成具有席夫堿配體的Ru(Ⅲ)配合物(合成路線見圖1),并在模擬生理?xiàng)l件(pH=7.40)下,通過熒光光譜法研究其與鯡魚精DNA的相互作用,探討它們之間的結(jié)合方式,以期為后續(xù)有關(guān)研究奠定理論和實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
三羥甲基氨基甲烷(Tris)、吖啶橙(AO)、鯡魚精DNA、間苯二甲胺、2-羥基-1-萘甲醛、三氯化釕,百靈威試劑公司,均未經(jīng)處理直接使用;實(shí)驗(yàn)用水均為二次蒸餾水。
北京譜析TU-1901型雙光束紫外可見分光光度計(jì);美國奧立龍868型pH計(jì);德國Vario ELⅢ型元素分析儀;美國 Varian 1000型紅外光譜儀;德國 MS HP-1100型質(zhì)譜儀;美國 Agilent-400DD2型核磁共振儀;上海儀電雷磁DDS-307型電導(dǎo)率儀。
圖1 席夫堿Ru(Ⅲ)配合物(L-Ru)的合成Fig.1 Synthetic route of Schiff base Ru(Ⅲ)complex(L-Ru)
稱取0.81g(6mmol)間苯二甲胺溶于75mL無水甲醇中,再加入2.36g(14mmol)2-羥基-1-萘甲醛,溶解后加熱回流4h,冷卻,用無水乙醇洗滌2~3次,真空干燥,得黃色固體即配體(H2L),產(chǎn)率63.26%。
在50mL圓底燒瓶中加入0.87g(2mmol)H2L和25mL無水乙醇,溶解后緩慢滴加含0.52g(2 mmol)三氯化釕的乙醇溶液20mL(30min內(nèi)滴完),加熱回流1h,冷卻后置于冰箱中過夜,抽濾,用少量的冰無水乙醇洗滌,真空干燥,得黑色粉末固體即配合物(L-Ru),產(chǎn)率31.33%。
采用1HNMR、13CNMR、FTIR、MS及元素分析對H2L和L-Ru的結(jié)構(gòu)及組成進(jìn)行表征。
1.4.1 溶液配制
DNA溶液用Tris-HCl緩沖液(pH=7.40)配制,置于0~5℃冰箱中,備用。經(jīng)紫外可見分光光度計(jì)測定其A260/A280大于1.8,說明該溶液純度滿足實(shí)驗(yàn)要求,基本不含蛋白質(zhì);根據(jù)其在260nm波長處的吸收系數(shù)6 600L·mol-1·cm-1可確定其濃度為2.409×104mol·L-1。
其余溶液用Tris-HCl緩沖液(pH=7.40)按濃度要求配制,置于0~5℃冰箱中,備用。
紫外測試中以pH=7.40的Tris-HCl緩沖液為空白。
1.4.2 L-Ru與鯡魚精DNA的相互作用及熱力學(xué)參數(shù)測定
考察在298K和308K下L-Ru溶液濃度對DNA的影響。在DNA溶液濃度不變的情況下,分別加入不同體積的L-Ru溶液,將L-Ru-DNA體系分別置于298K和308K的恒溫水浴箱中反應(yīng)20min,以pH=7.40的Tris-HCl緩沖液為空白,測定其熒光光譜,并計(jì)算其熱力學(xué)參數(shù)。
1.4.3 L-Ru對 AO-DNA體系熒光光譜的影響
以與DNA具有嵌插作用的典型化合物吖啶橙(AO)為探針,用pH=7.40的 Tris-HCl緩沖液定容至刻度,搖勻,于298K的恒溫水浴箱中反應(yīng)20min,以pH=7.40的Tris-HCl緩沖液為空白,測定其熒光光譜,考察L-Ru與AO對DNA的競爭性。
1.4.4 NaCl、Na3PO4對 L-Ru-DNA 熒光光譜的影響
向一定濃度的L-Ru-DNA體系中分別加入一定量的NaCl或Na3PO4,于298K的恒溫水浴箱中反應(yīng)20min,以pH=7.40的 Tris-HCl緩沖液為空白,測定其熒光光譜。
H2L:1HNMR(CDCl3),δ:14.776(s,2H,OH),8.92(s,2H,CH=N),6.95~7.91(m,16H,Ar-H),4.83(s,4H,-CH2-);13CNMR(CDCl3),δ:158.78,137.71,136.64,133.26,129.03,127.75,126.89,126.39,123.55,122.77,117.97,57.73;FTIR(KBr),ν,cm-1:3 550,3 130,2 989,1 618,1 586,1 498,786;Anal.Calcd.for C30H26N2O2:C 80.69,H 5.87,N 6.27;Found C 80.63,H 5.95,N 6.18;MS(ESI),m/z:448[M+H]+。
1HNMR中,在δ8.9~9.0之間為席夫堿典型CH=N質(zhì)子化學(xué)位移,說明了席夫堿的生成[15],而在FTIR中的1 618cm-1更進(jìn)一步證實(shí)了這一官能團(tuán)的生成[15]。
L-Ru:FTIR(KBr),ν,cm-1:3 150,1 625,1 595,1 500,785;Anal.Calcd.for C30H22N2O2Cl2Ru·2H2O:C 55.39,H 4.03,N 4.56;Found C 55.53,H 4.25,N 4.29;MS(ESI),m/z:580[M-2H2O-Cl-+H];Λm[(H2O∶DMSO)=1∶5(體積比),1.0×10-5mol·L-1,Ω-1·mol-1·cm2]:8.7。
結(jié)合質(zhì)譜和元素分析結(jié)果,可以說明L-Ru的生成。此外,L-Ru的摩爾電導(dǎo)率很小,說明L-Ru中的Cl-與中心金屬離子以配位形式而非離子形式存在,其為非電解質(zhì)[16]。
2.2.1 L-Ru與鯡魚精DNA的相互作用及熱力學(xué)參數(shù)的測定
1)L-Ru與DNA的熒光光譜
熒光光譜是研究配合物與DNA相互作用的最常見和簡便的方法[17]。如果配合物與DNA作用后出現(xiàn)了熒光增強(qiáng)或減弱現(xiàn)象,說明配合物與DNA發(fā)生了一定的作用。雖不能以此作為配合物與DNA發(fā)生嵌插或其它作用的直接判據(jù),但熒光變化幅度的大小可反映出配合物與DNA之間是否發(fā)生作用及其作用的強(qiáng)弱。圖2為L-Ru與DNA作用前后的熒光光譜圖。
由圖2可以看出,隨著L-Ru的加入,DNA在551 nm處的熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng),說明L-Ru與DNA之間能夠發(fā)生作用。
2)結(jié)合常數(shù)與熱力學(xué)函數(shù)的測定
熱力學(xué)函數(shù)可以考察化學(xué)反應(yīng)在一定條件下能否發(fā)生。因此,通過考察吸光度與DNA濃度的關(guān)系(式1)[18],確定L-Ru能否與鯡魚精DNA發(fā)生相互作用。
圖2 不同濃度L-Ru與DNA的熒光光譜Fig.2 Fluorescence spectra of DNA in the presence of L-Ru at different concentrations
式中:A0和A分別表示DNA加入前后體系的吸光度;K為DNA與L-Ru的結(jié)合常數(shù);c為DNA的濃度,μmol·L-1。
本實(shí)驗(yàn)分別對298K和308K時在260nm處測定的相對吸收強(qiáng)度按式(1)進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,以1/(A0-A)對1/c作圖,結(jié)果見圖3。
圖3 在298K(a)和308K(b)下DNA體系在260nm處1/(A0-A)對1/c的雙倒數(shù)曲線Fig.3 Double reciprocal curve of 1/(A0-A)vs 1/c for DNA system at 260nm in 298K(a)and 308K(b)
由 圖 3 得 到 1/KD,298K=3.0925×10-5mol·L-1、1/KD,308K=3.1046×10-5mol·L-1,因此,結(jié)合常數(shù)分別為 KD,298K=3.234×104L·mol-1、KD,308K=3.221×104L·mol-1。
結(jié)合熱力學(xué)公式,有:
根據(jù)式 (2)、式 (3)可 計(jì) 算:298K 時,L-Ru 與DNA反應(yīng)的焓變 ΔrHθm,298K=45.50kJ·mol-1、自由能 ΔrGθm,298K=-25.73kJ·mol-1及熵變 ΔrSθm,298K=0.23J·mol-1·K-1。由此可判定 L-Ru能與 DNA自發(fā)發(fā)生相互作用,且這種作用為熵與焓共同驅(qū)動所致。
2.2.2 AO對L-Ru-DNA體系的熒光光譜的影響
研究表明,AO系共軛稠環(huán)剛性平面分子,是一種堿性染料,能與DNA的雙螺旋堿基對之間發(fā)生專一的嵌插作用[19],因而常常用作核酸的光譜探針。AO本身熒光性很弱,當(dāng)與DNA作用后,由于生色團(tuán)嵌插入堿基對中使其熒光性大大增強(qiáng),在525nm處產(chǎn)生非常強(qiáng)的熒光信號。若某化合物與DNA發(fā)生了類似于AO與DNA的嵌插作用,在溶液體系中就會出現(xiàn)競爭,從而使得AO-DNA體系在525nm處的熒光強(qiáng)度發(fā)生變化,因而AO-DNA體系的熒光強(qiáng)度變化常常被用作判斷某化合物是否與DNA發(fā)生嵌插的作用標(biāo)志之一[19]。此外,傳統(tǒng)的EB探針有致癌性、對環(huán)境污染大,故采用低毒的AO作為探針研究L-Ru與DNA的相互作用。
AO對L-Ru-DNA的熒光光譜的影響如圖4所示。
圖4 AO對L-Ru-DNA體系熒光光譜的影響Fig.4 Effect of AO on fluorescence spectra of L-Ru-DNA
由圖4可以看出,L-Ru-DNA體系在551nm處有最大熒光發(fā)射峰,隨著AO的逐漸加入,在525nm處出現(xiàn)了新的熒光發(fā)射峰,該峰為AO與DNA的典型峰[20-21]。且551nm處的熒光發(fā)射峰沒有隨著 AO的加入而完全消失,表明L-Ru與DNA具有較強(qiáng)的嵌插作用,即使與DNA具有很強(qiáng)的嵌插作用的AO也未能完全將其從DNA的雙螺旋結(jié)構(gòu)中擠出。
2.2.3 NaCl、Na3PO4對L-Ru-DNA熒光光譜的影響
為了進(jìn)一步考察L-Ru與DNA之間是否存在靜電作用,以強(qiáng)電解質(zhì)NaCl和Na3PO4考察離子強(qiáng)度的增加對L-Ru與DNA之間的熒光強(qiáng)度的影響,結(jié)果見圖5。
圖5 NaCl和Na3PO4對L-Ru-DNA體系熒光光譜的影響Fig.5 Effect of NaCl and Na3PO4on fluorescence spectra of L-Ru-DNA
由圖5可以看出,在開始加入NaCl時,體系熒光強(qiáng)度略有變化,繼續(xù)加大離子強(qiáng)度時,熒光強(qiáng)度幾乎未發(fā)生變化;體系中額外加入的磷酸根幾乎沒有引起體系熒光強(qiáng)度變化。說明L-Ru不與DNA的磷酸基團(tuán)等負(fù)電荷基團(tuán)發(fā)生靜電作用,也證實(shí)了L-Ru確實(shí)不與DNA發(fā)生靜電作用[22]。
采用直接合成法合成了一個新的席夫堿Ru(Ⅲ)配合物,并利用1HNMR、13CNMR、FTIR、MS及元素分析等手段對其結(jié)構(gòu)和組成進(jìn)行表征。在模擬生理?xiàng)l件下,以吖啶橙為光譜探針,采用熒光光譜法考察LRu與鯡魚精DNA的作用機(jī)制。結(jié)果表明,L-Ru與DNA之間能夠自發(fā)地發(fā)生作用,這種作用是由熵與焓共同驅(qū)動而發(fā)生的嵌插作用。
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