田一方,郭利輝,梅曉蕓,張新愛,陳冠華
(江蘇大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,江蘇 鎮(zhèn)江 212013)
氨基糖苷類抗生素是一類高效廣譜抗菌藥物,在畜牧和水產(chǎn)業(yè)中主要運(yùn)用于治療由革蘭氏陰性桿菌如大腸桿菌、產(chǎn)氣桿菌、痢疾桿菌、鼠疫桿菌、布魯氏菌等引起的病癥,且常被添加到飼料中,用于促進(jìn)動(dòng)物生長發(fā)育[1-2].然而往往由于其不合理使用,導(dǎo)致在動(dòng)物源性食品中過量殘留,長期食用會(huì)危害人體健康,引起各種不良反應(yīng)[3-5].因此,對食品中該類抗生素殘留的檢測勢在必行,很多國家和組織都規(guī)定了其最大殘留限量(MRL)[6-7].針對動(dòng)物性食品中氨基糖苷類抗生素的多殘留檢測,其方法可能受樣品基質(zhì)的復(fù)雜性和檢測設(shè)備的影響,建立一種可快速、準(zhǔn)確將其從樣品中分離凈化出來甚至達(dá)到富集效果的方法成為重中之重.固相萃取法是一種集提取凈化和富集作用于一體的前處理方法,已被運(yùn)用于氨基糖苷類殘留檢測中[8].然而目前市場上使用的大多數(shù)固相萃取柱都是非特異選擇性的萃取柱,其并不能對某類特定的目標(biāo)分子進(jìn)行高選擇性的凈化與富集.因此,尋找一種能簡便有效凈化和富集樣品中氨基糖苷類的方法是極需解決的問題.
分子印跡技術(shù)是一種分子識(shí)別技術(shù),利用該技術(shù)合成的聚合物中具有與模板分子空間結(jié)構(gòu)相匹配的空穴,并且空穴內(nèi)還具有與其功能基團(tuán)正好互補(bǔ)的作用位點(diǎn),對特定類別的目標(biāo)分子具有很高的選擇性吸附能力,可應(yīng)用于結(jié)構(gòu)類似化合物的分離、仿生傳感、催化等[9].利用這種技術(shù)所制的聚合物被稱為分子印跡聚合物(MIP).由于其高效的識(shí)別性能和獨(dú)特的理化特點(diǎn),分子印跡技術(shù)依然成為一個(gè)受人關(guān)注的研究方向,在食品安全檢測中展現(xiàn)了十分廣泛的應(yīng)用前景[10-12].沉淀聚合是MIP制備方法中的一種,可制備出能直接用作固相萃取柱填料的微球形聚合物,避免了后期研磨粉碎對聚合物中某些結(jié)合位點(diǎn)的破壞.阿米卡星是氨基糖苷類抗生素中的一種,以該抗生素作為模板,可制備對氨基糖苷類抗生素具有特異選擇性的固相萃取填料,為高效凈化和富集氨基糖苷類殘留奠定物質(zhì)基礎(chǔ).
B5500S-MT 超聲清洗機(jī)(上海必能信超聲有限公司);BS 124S 電子分析天平(賽多利斯公司);WW-1601 紫外可見分光光度計(jì)(北京瑞利分析儀器公司);索式抽提器(鎮(zhèn)江華東器化玻有限公司);HH-S8 數(shù)顯恒溫水浴鍋(金壇市醫(yī)療儀器廠);SHA-B 水浴恒溫振蕩器(江蘇金壇市中大儀器廠);H-180 超高速冷凍離心機(jī)(湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司);真空干燥器(河南鄭州中天實(shí)驗(yàn)儀器有限公司);MultiMode8 原子力顯微鏡(美國布魯克公司).
阿米卡星原藥(AMK,質(zhì)量分?jǐn)?shù)98%,西安博昌科技有限公司);甲基丙烯酸(MAA)、乙二醇二甲基丙烯酸酯(EGDMA)、偶氮二異丁腈(AIBN)、四氫呋喃(THF)、甲醇和冰乙酸均為分析純試劑.MAA 和EGDMA 使用前需經(jīng)減壓蒸餾提純,MAA 的餾分溫度為60~63 ℃,EGDMA 餾分溫度為98~100 ℃,AIBN 用甲醇重結(jié)晶后使用.實(shí)驗(yàn)用水為超純水.
分別稱取模板分子AMK 和功能單體MAA 0.05mmol和0.2mmol,溶于一定量的THF-水(體積比為7:1),置于室溫下過夜,使得模板分子和功能單體能夠充分結(jié)合.然后,依次加入交聯(lián)劑EDGMA 1mmol、引發(fā)劑AIBN 10mg.混合液超聲5min后,通氮?dú)?min,密封置于60 ℃的水浴恒溫振蕩器中持續(xù)反應(yīng)24h.反應(yīng)結(jié)束后,過濾聚合物,并依次用水、甲醇對其進(jìn)行沖洗.用索氏提取器配以甲醇與乙酸體積比為9:1的溶液對處理過的聚合物進(jìn)行洗脫,去除模板分子.通過調(diào)節(jié)水浴鍋的溫度,使洗脫溶劑45min循環(huán)1次,直到洗脫液無模板分子(紫外分光光度計(jì)測定洗脫液,未見紫外吸收).用甲醇去除殘留的乙酸,洗至中性.最后,取出真空干燥并備用.非印跡聚合物(NIP)的制備過程,除不加模板分子外,其余步驟同MIP的制備.
配制濃度為0.3,0.5,1,2,3,4,5 mmol/L 的AMK THF-水(體積比7:1)溶液,在波長196nm 下,以溶劑為空白,用紫外分光光度計(jì)進(jìn)行檢測,得到線性回歸方程.圖1為AMK 標(biāo)準(zhǔn)曲線,其方程為A=0.427c-0.093,其中c為AMK 濃度.該標(biāo)準(zhǔn)曲線用于條件優(yōu)化以及MIP性能研究.
圖1 AMK 標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Calibration curve of AMK
精確稱取MIP及NIP微球各50mg,置于10mL 比色管中,分別加入5mL AMK 的THF水溶液,在室溫下振蕩一定時(shí)間后以10 000r/min離心10min,取上層清液過0.45μm 濾膜,檢測吸附后AMK 的濃度.根據(jù)吸附前后溶液中AMK 濃度的變化,計(jì)算MIP 和NIP的吸附量Q(μmol/g).
式中c0為AMK 的初始濃度(mmol/L);cx為AMK 的平衡濃度(mmol/L),V 為溶液的體積(mL),m 為所用聚合物的質(zhì)量(g).
在分子印跡過程中,功能單體的一端以氫鍵形式與模板分子結(jié)合,另一端則與交聯(lián)劑形成聚合物網(wǎng)絡(luò),其間形成諸多空穴,并與模板分子相匹配.聚合物中形成的空穴數(shù)量對該聚合物的識(shí)別能力有著很大的影響,而這取決于功能單體和模板分子的比例.因此,首先要優(yōu)化其比例.固定AMK 濃度為0.5mmol/L,逐漸增加MAA 的濃度.超聲10min后靜置過夜,以相對應(yīng)濃度的MAA 作為參比溶液,分別測定其紫外吸收光譜,結(jié)果見表1.由于MAA 和AMK 形成了復(fù)合物致使其最大吸收波長由AMK 的196nm 發(fā)生顯著的紅移.隨著MAA的增加,形成的復(fù)合物的量逐漸變化,并且其吸光度在1:4時(shí)出現(xiàn)峰值.因此,可以初步確定AMK 和MAA 的最佳比例為1:4.
表1 AMK 和MAA比例對吸光度的影響Tab.1 Effect of ratios of amikacin and MAA on absorbance
在實(shí)際合成中分別使AMK 和MAA 物質(zhì)的量以1:1,1:2,1:3,1:4,1:5,1:6的比例進(jìn)行聚合,用合成的MIP分別對5mmol/L的AMK 吸附24h后進(jìn)行吸附量(Q)測定,結(jié)果如圖2所示.最終,確定模板分子與功能單體的最優(yōu)物質(zhì)的量比為1:4.
在制備MIP過程中,溶劑的作用是使反應(yīng)物能夠溶解于其中,便于其發(fā)生聚合反應(yīng),同時(shí)使形成的聚合物中產(chǎn)生多孔結(jié)構(gòu),有助于選擇性空穴的構(gòu)成.因此,溶劑應(yīng)能對功能單體和模板都具有較好的溶解性,同時(shí)還不會(huì)對兩者間的氫鍵相互作用產(chǎn)生顯著影響.包括AMK 在內(nèi)的氨基糖苷類物質(zhì)在分子印跡中常用的溶劑如乙腈、二氯甲烷、氯仿等中的溶解度很小,而在THF 中有較好的溶解度,同時(shí)THF 對MAA 也有較好的溶解度,故THF 被用作溶劑之一.由于氨基糖苷類在水中有極好的溶解度,為充分發(fā)揮溶劑在反應(yīng)中的作用,水也被用作溶劑.但是,水可對功能單體和模板間的氫鍵相互作用產(chǎn)生破壞,影響選擇性空穴的形成,故其用量應(yīng)進(jìn)行優(yōu)化.此外,溶劑功能單體或模板分子的配比決定了它們在溶劑中的濃度,當(dāng)溶劑用量太小時(shí),反應(yīng)會(huì)趨向于本體聚合,反應(yīng)物黏度增大,使得溶劑無法充分進(jìn)入聚合網(wǎng)絡(luò)中從而形成塊狀物;而當(dāng)溶劑用量太大時(shí),會(huì)使MIP強(qiáng)度降低,其孔狀空穴結(jié)構(gòu)不穩(wěn)定,無法形成微球沉淀.因此,溶劑的配比和用量也至關(guān)重要,需對其進(jìn)行優(yōu)化.固定水的體積為1mL,使得水與THF 的體積比分別為1:4,1:5,1:6,1:7,1:8,1:9,向上述溶液中分別加入等量的阿米卡星0.05mmol和MAA 0.2mmol靜置過夜,然后依次加入EGDMA 1mmol和AIBN 10 mg.按1.2 和1.4 的方法制備和測定,其中吸附實(shí)驗(yàn)所用AMK 溶液濃度為5 mmol/L,結(jié)果如圖3所示.當(dāng)溶劑用量為8mL(即水與THF的體積比1:7)時(shí),聚合物微球吸附能力最好.
圖2 功能單體用量對MIP吸附性能的影響(n=3)Fig.2 Effect of amount of the functional monomer on adsorption capacity of MIP(n=3)
圖3 溶劑的用量對MIP吸附性能的影響(n=3)Fig.3 Effect of solvent volume on adsorption capacity of MIP(n=3)
在制備MIP時(shí),為了獲得較高的專一性,需要使功能單體彼此聚合后的聚合物鏈之間具有一定的交聯(lián)度,以形成聚合物網(wǎng)絡(luò).當(dāng)交聯(lián)劑用量太少時(shí),形成的印跡空穴易變形,不能確保互補(bǔ)官能團(tuán)的定位,使得其識(shí)別能力降低.而當(dāng)交聯(lián)劑用量太大時(shí),所形成的聚合物剛性變強(qiáng),不易溶脹,使識(shí)別位點(diǎn)減少,并且高度交聯(lián)會(huì)阻礙分子傳遞,導(dǎo)致吸附量Q 降低.因此,需要對交聯(lián)劑的用量進(jìn)行優(yōu)化.EGDMA 在MIP的合成中經(jīng)常被用作交聯(lián)劑,在AMK 用量為0.05mmol時(shí),使其與EGDMA 物質(zhì)的量比為1:10,1:15,1:20,1:25,1:30,在60℃下聚合24h,測定各聚合物的吸附性能,其結(jié)果如圖4.當(dāng)物質(zhì)的量比為1:10時(shí)制得的MIP量較少,且吸附能力較弱,識(shí)別能力不強(qiáng).隨著交聯(lián)劑用量增大,其MIP吸附量不斷變化,并在物質(zhì)的量比為1:20時(shí)出現(xiàn)最高峰.因此,選取模板分子與交聯(lián)劑EGDMA的最佳物質(zhì)的量比為1:20.
圖4 交聯(lián)劑用量對MIP吸附性能的影響(n=3)Fig.4 Effect of amount of EGDMA on adsorption capacity of MIP(n=3)
MIP的吸附等溫線可以反映模板分子平衡吸附量與溶液濃度變化的關(guān)系,為獲得MIP中結(jié)合位點(diǎn)的類型和數(shù)量等重要信息提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù).按照1.4所述方法測定常溫下MIP對不同濃度AMK 的吸附情況,吸附時(shí)間20h,得到吸附等溫線如圖5 所示.結(jié)果表明,隨著AMK 濃度的增大,MIP的吸附量逐漸增大.當(dāng)AMK 濃度大于4.0mmol/L時(shí),MIP曲線呈趨于平緩的狀態(tài).而在同濃度范圍內(nèi),NIP 的吸附量隨著AMK 濃度的增加而呈非飽和趨勢增加.這表明MIP中確實(shí)形成了對AMK 具有特異選擇性的吸附作用位點(diǎn),NIP中則無此類位點(diǎn).
分子印跡中常用Scatchard[13]方程來評價(jià)MIP的結(jié)合特性,其方程式如下:
其中,Q(μmol/g)為吸附量,Qmax是最大表觀吸附量,c(mmol/L)為模板分子平衡濃度,Kd(mmol/L)為結(jié)合位點(diǎn)的平衡常數(shù).在AMK 濃度范圍內(nèi),以Q/c對Q 作圖得圖6,其呈現(xiàn)分段線性關(guān)系.
圖5 MIP和NIP的吸附等溫線(n=3)Fig.5 Adsorption isotherm of MIP and NIP(n=3)
圖6 MIP吸附性能的Scatchard分析Fig.6 Scatchard anaiysis on adsorption capacity of MIP
分別對兩段線性部分進(jìn)行線性回歸,可得方程
對照方程(2)可知,方程(3)和(4)的截距和斜率分別對應(yīng)Qmax/Kd和-1/Kd,根據(jù)方程(3)可求得MIP對AMK 的高親和力結(jié)合位點(diǎn)的Kd為1.244mmol/L,Qmax為85.99μmol/g;根據(jù)方程(4)可求得MIP低親和力結(jié)合位點(diǎn)的Kd為15.385mmol/L,Qmax為596.48μmol/g.
吸附動(dòng)力學(xué)曲線可以反映一定質(zhì)量的MIP對固定濃度溶液中模板的吸附量隨時(shí)間變化的情況以及不同時(shí)刻對模板吸附速率的情況,可為實(shí)際樣品固相萃取方案的制定提供依據(jù).參照1.4方法測定在不同時(shí)間后MIP對5mmol/L AMK 溶液的吸附量,結(jié)果如圖7所示.MIP的吸附量隨著時(shí)間的增加而逐漸增大,最終趨于平緩.隨著時(shí)間的推移,空穴逐漸被AMK 分子所占據(jù),并且在360min后達(dá)到飽和吸附,而NIP達(dá)到平衡所需的時(shí)間更短,這是因?yàn)槠錈o特異性結(jié)合位點(diǎn).因此,MIP的飽和吸附量要遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于NIP的飽和吸附量.
在分子印跡中,印跡效果也可以用IPB(imprinting-induced promotion of binding)值[14]進(jìn)行評價(jià),其表達(dá)式為
其中,QMIP(μmol/g)為MIP對于模板分子的吸附量,QNIP(μmol/g)為NIP 對于模板分子的吸附量.QMIP和QNIP相差越大,即IPB值越大,表明相比于NIP,MIP的效果越好.AMK 溶液濃度為5mmol/L 時(shí)分別測定MIP和NIP的吸附量,得IPB值為122.18%,說明特異性選擇位點(diǎn)所產(chǎn)生的吸附量超過非選擇性位點(diǎn)的吸附量,表明印跡效果良好.
MIP能否對同類抗生素產(chǎn)生選擇性將決定其能否在該類抗生素多殘留檢測中用于樣品的凈化與富集.按1.4方法分別測定了MIP和NIP對5mmol/L鏈霉素、慶大霉素、卡那霉素、奈替米星以及妥布霉素溶液的吸附量,吸附20h,結(jié)果表明,MIP 和NIP吸附量(μmol/g)分別為61.5和28.3,55.6和26.9,89,2和33.8,82.0和31.3,72.1 和29.8.其中,MIP 對其吸附量分別為模板吸附量的53.9%,48.8%,78.2%,71.9%,63.2%,而NIP對測試的各氨基糖苷類的吸附量差別很小.說明NIP產(chǎn)生的吸附是非選擇性的,而MIP對測試的各氨基糖苷類的吸附量主要來源于其中選擇性吸附位點(diǎn)的作用,進(jìn)而說明該MIP具有用于部分氨基糖苷類抗生素多殘留固相萃取凈化和富集的潛力.
MIP的可重復(fù)使用性將決定其用于實(shí)際樣品測定中的成本.MIP按1.4方法反復(fù)操作,再生次數(shù)為橫坐標(biāo),吸附容量為縱坐標(biāo)作圖,得圖8.圖中顯示,AMK 印跡微球經(jīng)10次重復(fù)使用后,其吸附性能基本無下降,說明該MIP具備重復(fù)使用性能,可用作固相萃取柱填料.
圖7 MIP和NIP的動(dòng)態(tài)吸附曲線(n=3)Fig.7 Dynamic adsorption curve of NIP and MIP(n=3)
圖8 使用次數(shù)對MIP吸附性能的影響(n=3)Fig.8 Effect of reuse times on adsorption of MIP(n=3)
用原子力顯微鏡對AMK 印跡微球的形態(tài)進(jìn)行觀察,見圖9.該圖的寬度等效于顯微鏡視野中5μm 長度,由此可見,合成的印跡微球基本呈球形,粒徑為0.3~0.5μm.
圖9 MIP微球的原子力顯微鏡圖像Fig.9 Image of MIP by atomic force microscope
在優(yōu)化條件下合成的微球形AMK MIP對模板分子展現(xiàn)了良好的特異吸附性能,對與AMK 結(jié)構(gòu)類似的氨基糖苷類也表現(xiàn)出不同程度的特異吸附性能,具有用于氨基糖苷類抗生素多殘留檢測中樣品凈化和預(yù)富集前處理的潛力.
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