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      牛病毒性腹瀉病毒抗原捕獲ELISA 方法的建立

      2015-06-11 02:21:26謝芝勛謝志勤劉加波龐耀珊鄧顯文謝麗基羅思思
      動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展 2015年2期
      關(guān)鍵詞:抗原特異性陰性

      范 晴,謝芝勛,謝志勤,劉加波,龐耀珊,鄧顯文,謝麗基,羅思思

      (廣西獸醫(yī)研究所廣西動物疫苗和新技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣西南寧530001)

      牛病毒性腹瀉是由牛病毒性腹瀉病毒(Bovine viral diarrhea virus,BVDV)引起的一種牛的呼吸道及繁殖障礙綜合征[1]。該病可通過血液、鼻黏液、糞便等多種途徑水平傳播[2]。據(jù)調(diào)查該病在我國大部份地區(qū)廣泛存在,病感染率高,牛群中相當(dāng)一部分是BVDV 的攜帶者,雖然它們不表現(xiàn)臨床癥狀,但終身帶毒,持續(xù)排毒;該病還可以病垂直傳播,當(dāng)孕期的母牛感染BVDV,會引起死產(chǎn),胚胎畸形,流產(chǎn),或者分娩出外表正常的但持續(xù)感染的犢牛,當(dāng)這些持續(xù)感染的犢牛再次接觸抗原相似性BVDV 即會轉(zhuǎn)變?yōu)轲つげ?,出現(xiàn)急性脫水性腹瀉,1月~2月內(nèi)死亡,死亡率高達(dá)100%[3]。這些持續(xù)感染BVDV牛的是養(yǎng)牛業(yè)潛在的隱患,一旦發(fā)病會成巨大的經(jīng)濟(jì)損失[4]。

      目前對該病的防控主要依靠疫苗免疫接種,并利用特異性診斷方法檢測出持續(xù)感染牛,淘汰持續(xù)感染牛遂步凈化牛群[5-6]。由于BVDV 可引起免疫抑制,即使感染BVDV 也不會產(chǎn)生相應(yīng)的抗體,因此BVDV 的確診需檢測其抗原,常見的抗原檢測方法有PCR、LAMP和ELISA[7-9]。但PCR 和LAMP有一定的局限性,需不斷更新引物才能適應(yīng)BVDV的變異(目前已知的BVDV 有15個基因)。ELISA方法操作簡單,快速,一次可檢測數(shù)百份樣品,非常適合大規(guī)格疫情的檢測。由于BVDV 僅有一種血清型,更適合于用ELSIA 進(jìn)行檢測。本研究利用NS3單克隆抗體為捕獲抗原,建立BVDV 抗原捕獲ELISA 方法,為今后BVDV 的防控奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      BVDV 毒 株Oregon CV24,NADL 株,BVDV標(biāo)準(zhǔn)陽性血清等均購自中國獸藥監(jiān)察所;牛腎細(xì)胞MDBK 為中國細(xì)胞典藏中心產(chǎn)品;抗BVDV NS3蛋白單克隆抗體,2個廣西分離株GX-4,GX-6136由廣西獸醫(yī)研究所生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)室分離;牛輪狀病毒(Bovine rotavirus,BRV),牛傳染性鼻氣管炎病毒(Infectious bovine rhinotracheitis virus,IBRV),牛分支桿菌(Mycobacterium bovis,MB),豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)由廣西獸醫(yī)研究所生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)室保存;50 份陰性樣品(經(jīng)國標(biāo)[10]檢測后,結(jié)果為陰性的樣品),45份待檢臨床牛糞便棉拭子樣品采集自廣西各地牛場;HRP-羊抗鼠IgG 為索萊寶公司產(chǎn)品;TMB 底物顯色劑為天根公司產(chǎn)品。

      1.2 方法

      1.2.1 病毒增殖 MDBK 細(xì)胞培養(yǎng)至單層,參考文獻(xiàn)繁殖CV24毒株[11]。CV24接毒96h后,細(xì)胞出現(xiàn)典型病變,收獲細(xì)胞復(fù)凍融3 次,10kg 離心10min,收集上清,用差速離心及不連續(xù)蔗糖密度梯度離心純化病毒,按照ReeD-Muench 計算TCID50為10-6.9/0.1 mL,將純化后的病毒無菌分裝后置-70 ℃保存。

      1.2.2 兔多克隆抗體的制備與純化 純化后的CV24細(xì)胞培養(yǎng)液無菌取出后與弗氏完全佐劑按1∶1的均勻混合,分3次免疫1月齡母兔,每次間隔10d,背部肢肌肉分點(diǎn)注射抗原2 mL/只,三免后,間隔1周心臟采血并分離血清,采用辛酸-硫酸銨法純化血清,置于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.3 抗原捕獲ELISA 方法的建立

      1.2.3.1 包被抗體的確定 用pH 9.6的碳酸鹽緩沖液分別包被1.2.2制備好的兔抗BVDV 多抗和BVDV 標(biāo)準(zhǔn)陽性血清,100μL/孔,37 ℃1h轉(zhuǎn)4 ℃過夜,包被的濃度依次是1∶100、1∶200、1∶400、1∶800、1∶1 600、1∶3 200、1∶6 400、1∶12 800,試驗(yàn)重復(fù)3次,比較兩種多抗作為捕獲抗體的效果,其余步驟均按ELISA 標(biāo)準(zhǔn)步驟進(jìn)行操作,并設(shè)立陰性對照。

      1.2.3.2 單抗使用濃度的確定 用10g/L BSA(牛血清白蛋白)作稀釋劑,BVDV NS3單克隆抗體作為捕獲抗體,每列按1∶1 000、1∶2 000、1∶3 000、1∶4 000、1∶5 000稀釋,設(shè)立陰性對照,采用方陣滴定法進(jìn)行測定,重復(fù)試驗(yàn)3次,檢測OD450nm 值,選擇P/N值最大的一組為最佳捕獲抗體濃度[10]。

      1.2.3.3 酶標(biāo)抗體使用濃度的確定 HRP-羊抗鼠IgG 按1∶1 000、1∶2 000、1∶3 000、1∶4 000、1∶5 000 稀釋進(jìn)行ELSIA,重復(fù)試驗(yàn)3 次,檢測OD450nm值,選擇P/N 值最大的一組為最佳捕獲抗體濃度。

      1.2.3.4 陰陽性臨界值的確定 用已建立的抗原捕獲ELISA 檢測50 份陰性臨床樣品,取其OD450nm的平均值ˉx,進(jìn)行樣本OD450nm 平均值和標(biāo)準(zhǔn)差(SD)的計算。根據(jù)統(tǒng)計學(xué)原則,若樣品的OD450nm 值>陰性樣本OD450nm 值的ˉx+3SD 時,可以在99.9%水平上判為陽性,當(dāng)測結(jié)果仍大于臨界值,則判定為陽性。

      1.2.3.5 特異性試驗(yàn) 將對照病毒(BRV、IBRV、HCV)和細(xì)菌(MB)用培養(yǎng)物作待檢樣品,100μL/孔,用上述建立的ELISA 方法檢測測定其OD450nm值,以評價該方法的特異性。

      1.2.3.6 敏 感 性 試 驗(yàn) 將TCID50為10-6.9/0.1mL的CV24的細(xì)胞培養(yǎng)液從1∶10開始系列稀釋,各個稀釋度的病毒液100μL 用進(jìn)行ELISA 測定,確定該方法對病毒的最低檢出量。

      1.2.3.7 臨床樣品的檢測 參照國標(biāo)合成引物,并進(jìn)行RT-PCR 檢測[10]。45份臨床牛糞便棉拭子樣品采集自廣西各地牛場,用DMEM 培養(yǎng)基洗脫棉拭子,5 000r/min離心10min后取上清作為待檢樣品,用建立的抗原捕獲ELISA 和RT-PCR 方法檢測,同時檢測檢測NADL 株,2 個廣西分離株GX-4,GX-6136。

      2 結(jié)果

      2.1 抗原捕獲ELISA 方法的確定

      根據(jù)間接ELISA 方陣試驗(yàn)結(jié)果,最佳的包被抗體為兔抗BVDV 多抗,濃度為1∶1 600,最佳捕獲抗體濃度為1∶2 000。當(dāng)包被抗體量為1∶1 600/孔,捕獲抗體濃度為1∶2 000 時,陽性樣品OD450nm 與陰性對照OD450nm 的比值(P/N)最高,酶標(biāo)抗體最佳工作濃度為1∶4 000(表1,圖1)。

      圖1 酶標(biāo)抗體工作濃度的確定Fig.1 Determination of optimum working concentration of antibody labeled with enzyme

      表1 最佳抗體包被濃度和捕獲抗體濃度的確定Table 1 Determination of optimum working concentration of coating antibody and capture antibody

      操作步驟確定后如下:兔抗BVDV 多抗1∶1 600包被,100μL/孔,37 ℃作用1h 后,4 ℃過夜;PBST 洗板3次;50g/L 脫脂奶封閉60min,PBST洗板3次;加待檢樣品(臨床樣品)100μL/孔,作用60min;PBST 洗板3次;加捕獲抗體(NS3單抗1∶2 000稀釋),100μL/孔,作用1h 后;HRP-羊抗鼠IgG 1∶4 000稀釋作用60min;PBST 洗板3次;顯色;最后2 mol/L 的硫酸終止反應(yīng),置酶標(biāo)儀讀取OD450nm 的值。

      2.2 陰陽性臨界值的確定

      取50份陰性牛血清,用所建立的ELISA 進(jìn)行檢測,OD450nm 的平均值為0.327 和標(biāo)準(zhǔn)差為0.089確定其臨界值為0.327+0.89×3=0.594,定義E2-ELISA 檢測樣品OD450nm≥0.319為陽性,OD450nm<0.594為陰性。

      2.3 特異性試驗(yàn)

      建立的ELISA 方法檢測BRV、IBRV、MD、HCV 測定OD450nm 值,均低于0.594,視為陰性,可見該方法特異性好,結(jié)果見表2。

      表2 抗原捕獲ELISA 方法特異性試驗(yàn)結(jié)果Table 2 The specificity test result of Ag-capture ELISA

      2.4 敏感性試驗(yàn)

      將CV24細(xì)胞培養(yǎng)液(10-6.9/0.1mL)從1∶10開始系列稀釋進(jìn)行ELISA 測定。結(jié)果表明,細(xì)胞病毒液最低檢出量為7.9×103TCID50(表3)。

      表3 抗原捕獲ELISA 敏感性試驗(yàn)結(jié)果Table 3 The sensitivity test result of Ag-capture ELISA

      2.5 與RT-PCR方法比較結(jié)果

      用建立的抗原捕獲ELISA 和RT-PCR 方法檢測BVDV NADL 株,2 個 廣 西 分 離 株GX-4,GX-6136,以及本實(shí)驗(yàn)室所保存45份臨床牛糞便棉拭子(其中18份為陽性樣品,27份為陰性樣品),符合率為100%,結(jié)果見表4(陰性樣品結(jié)果省略)。

      表4 RT-PCR與抗原捕獲ELISA 方法的比較Table 4 The comparing result of RT-PCR and Ag-capture ELISA

      3 討論

      BVDV 感染機(jī)體后免疫系統(tǒng)的CD4+T 細(xì)胞主要識別NS3和E2兩種蛋白,并可誘導(dǎo)免疫細(xì)胞產(chǎn)生針這兩種蛋白的抗體[12]。但囊膜蛋白E2在各個毒株中變異較大,存在兩個可變區(qū)(V1、V2)[13-14]。NS3核苷酸序列分析表明,NS3 編碼區(qū)不僅在BVDV 各毒株間都較保守,且在不同基因型(BVDV1和BVDV2)和生物型(細(xì)胞病變型和非細(xì)胞病變型),以及瘟病毒屬中都是是非常保守的[12]。因此,本研究選擇BVDV NS3的單克隆抗體作為捕獲抗體。

      本研究比較了BVDV 標(biāo)準(zhǔn)陽性血清和兔抗BVDV 多抗2種抗體作為包被抗的效果,結(jié)果發(fā)現(xiàn),兔抗BVDV 多抗效果較好,P/N 值高,特異性好。推測BVDV 標(biāo)準(zhǔn)陽性血清中存在抗牛的某些抗體,會BVDV 抗原發(fā)生非特異性結(jié)合;另外本試驗(yàn)是采用蔗糖密度梯度離心純化后的病毒免疫家兔,產(chǎn)生的抗體經(jīng)過純化后,純度較好,因此特異性好。

      據(jù)報道BVDV 在我國廣泛在,安徽、江蘇、廣西各 省BVDV 感 染 率 為 分 別 為34.2%、8.4%、10%[3]。2009年-2012 年,廣西地區(qū)的BVDV 感染率高達(dá)24.8%(間接ELISA 方法檢出)和27.3%(熒 光 定 量RT-PCR 檢 測 出)[9]。通 常 情 況 下,BVDV 是以持續(xù)性感染不發(fā)病的形式存在于牛身體內(nèi)以,且BVDV 可引起免疫耐受,即使感染BVDV也不會產(chǎn)生相應(yīng)的抗體。由前面感染的數(shù)據(jù)可見,BVDV 抗體檢測率低于抗原檢出率。鑒于BVDV發(fā)病機(jī)理及臨床特征的復(fù)雜性,需要對其抗原的檢測才能準(zhǔn)確診斷牛是否感染了BVDV。本研究所建立的BVDV 抗原捕獲ELSIA 方法一次可以檢測數(shù)百個樣品,特異性好,敏感性高,最低可以檢測到7.9×103TCID50,操作方便,所需設(shè)備簡單,數(shù)小時內(nèi)可完成,可合適于大規(guī)模的檢測。對牛場進(jìn)行定期監(jiān)測,獲知全群感染水平,可初步確定BVDV 陽性感染場。在此基礎(chǔ)上,再結(jié)合其他診斷方法,才能逐步開展BVDV 的凈化,今后BVDV 的防制提供技術(shù)保障。

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