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    雙光子顯微鏡檢測活體小鼠腦內(nèi)微循環(huán)技術(shù)的建立*

    2015-06-09 21:10:16劉雙雙黃繼云肖桂鳳林趙肖楠盧應(yīng)梅
    關(guān)鍵詞:活體開窗光子

    劉雙雙, 黃繼云, 肖桂鳳, 尹 偉, 林趙肖楠, 盧應(yīng)梅

    (1. 浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院公共技術(shù)成像平臺, 2. 浙江大學(xué)毒理與生化藥學(xué)研究所, 杭州310058;3. 浙江大學(xué)城市學(xué)院醫(yī)學(xué)院, 杭州 310015)

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    雙光子顯微鏡檢測活體小鼠腦內(nèi)微循環(huán)技術(shù)的建立*

    劉雙雙1, 黃繼云2, 肖桂鳳1, 尹 偉1, 林趙肖楠1, 盧應(yīng)梅3△

    (1. 浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院公共技術(shù)成像平臺, 2. 浙江大學(xué)毒理與生化藥學(xué)研究所, 杭州310058;3. 浙江大學(xué)城市學(xué)院醫(yī)學(xué)院, 杭州 310015)

    目的:利用正置雙光子顯微鏡系統(tǒng)和熒光探針標(biāo)記技術(shù),觀察活體小鼠腦內(nèi)血管的三維立體分布,建立測量單根毛細(xì)血管血流速度的新方法。方法:麻醉小鼠,制作活體小鼠顱骨開窗樣本,尾靜脈注射血漿標(biāo)記物Texas-Red dextran,利用雙光子顯微鏡z序列掃描檢測腦內(nèi)微循環(huán)系統(tǒng)的三維分布;利用線掃描測量毛細(xì)血管的血流速度。結(jié)果:通過雙光子顯微鏡可以探測到腦內(nèi)500 μm處的血管分布和走向,圖像清晰且信噪比高;通過計算單位時間內(nèi)紅細(xì)胞的運(yùn)動距離測得毛細(xì)血管(直徑≤6 μm)的血流速度為(0.59±0.12) mm/s。結(jié)論:利用雙光子顯微鏡觀察腦內(nèi)微循環(huán)系統(tǒng)技術(shù)平臺初步建立,為基礎(chǔ)研究和醫(yī)藥應(yīng)用提供了在體實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    雙光子顯微鏡;大腦皮層;微循環(huán);血流速度

    健全的微循環(huán)功能是保證大腦執(zhí)行正常功能的首要前提,當(dāng)微循環(huán)發(fā)生障礙時,血液流速減慢易形成血栓,導(dǎo)致局部腦組織缺血、缺氧甚至壞死,引起一系列臨床癥狀。醫(yī)學(xué)研究已證明:人體衰老、高血壓、糖尿病及多種心腦血管疾病都與腦微循環(huán)障礙密切相關(guān)。血液動力學(xué)是表征血液循環(huán)系統(tǒng)的流動參數(shù),是反映微循環(huán)功能變化的重要指標(biāo),因此血液動力學(xué)變化的檢測對于研究腦微血管功能,延緩上述重大疾病發(fā)展具有重要意義。

    檢測微循環(huán)血液動力學(xué)具有多種方法,傳統(tǒng)檢測血流的方法有核磁共振、斷層掃描和光譜學(xué)方法。這些方法能夠測定血液流量、氧化作用,但只能測出整體血流量,不能細(xì)微到單根血管。后來又有光學(xué)檢測方法,由于使用的是場光源,使得圖像的對比度和分辨率較低,無法實(shí)現(xiàn)活體動物在體觀察;共聚焦顯微鏡由于探測針孔的存在,使得成像深度也只有幾十個微米,無法深入到活體腦深部進(jìn)行微血管檢測。因此建立精確檢測腦微血管系統(tǒng)特別是腦微血管血流參數(shù)變化的計數(shù)方法具有重要意義。雙光子顯微鏡成像是近年來出現(xiàn)的新技術(shù),具有高信噪比、高穿透性、低漂白性等特性,更適合檢測組織中深層結(jié)構(gòu)或者活體內(nèi)部結(jié)構(gòu)[1]。如果能有效借助于雙光子顯微鏡技術(shù)開展相關(guān)工作,將為缺血性腦中風(fēng)、老年癡呆、糖尿病等疾病的機(jī)制研究提供實(shí)驗(yàn)依據(jù),也將通過探索休止的、激活的、損傷的、新生的腦微血管的調(diào)控機(jī)制,為開發(fā)保護(hù)腦微循環(huán)的新型藥物、防治心腦血管疾病開辟廣闊的前景。本工作利用雙光子顯微鏡和熒光染料負(fù)載技術(shù)觀察活體小鼠腦內(nèi)微循環(huán)系統(tǒng)的三維分布,測量腦內(nèi)單根毛細(xì)血管的血流速度。

    1 材料和方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    主要試劑:低熔點(diǎn)瓊脂糖(Sigma公司),人工腦脊液(mmol: NaCl 125, KCl 3, glucose 10, NaHCO326, NaH2PO41.1, CaCl22, MgSO41),Texas Red dextran(Invitrogen, D1830),70%消毒酒精,水合氯醛,生理鹽水,雙氧水(上海生工)。

    實(shí)驗(yàn)動物和設(shè)備: 1月齡健康、清潔級Balb/c小鼠,體重18~20 g(購自浙江大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心)。正置雙光子顯微鏡(Olymupus正置顯微鏡, 型號:BX61WI-FV1000,四通道多光子熒光探測器,×25超級消復(fù)色差物鏡,F(xiàn)V1000驅(qū)動軟件),MaiTai飛秒激光器(波長690~1020 nm連續(xù)可調(diào)),腦立體定位儀,蓋玻片,眼科彎鑷,牙科電鉆,腦固定鐵圈和長柄鐵塊。

    1.2 小鼠大腦顱骨開窗手術(shù)

    1.2.1 動物麻醉 選取1月齡的Balb/c小鼠(18~20 g),腹腔注射3%水合氯醛,注射劑量為1.35~1.4 ml/100 g。

    1.2.2 開顱前準(zhǔn)備 將麻醉的小鼠用剃須刀剃去腦表面的毛發(fā),眼科剪刀剪去頭皮,用蘸有雙氧水的棉簽擦拭腦表面以除去表面的筋膜,然后用蘸有人工腦脊液的棉簽擦拭頭骨以保持濕潤。

    1.2.3 顱骨開窗手術(shù) 將麻醉的小鼠用腦立體定位儀進(jìn)行固定,用牙科電鉆小心地打磨待觀察區(qū)域邊緣的頭骨,開窗區(qū)域大約為6×6 mm的圓孔,為了降低出血量,在用電鉆打磨過程中,選擇中等刃徑的鉆頭,待頭骨邊緣呈半透明狀態(tài)后輕輕按壓頭骨,觀察到邊緣軟化即可停止,用眼科彎鑷小心地從邊緣夾取頭骨將其輕輕地掀掉,此過程要求動作輕微,盡量避免出血,以免影響成像,并用人工腦脊液多次清洗窗口,直至沒有血液出現(xiàn)。

    1.2.4 開窗區(qū)的密封和固定 將配好的瓊脂糖涼至室溫,滴到開窗的腦表面,上面蓋蓋玻片(直徑為8×8 mm)以抑制呼吸節(jié)律對成像產(chǎn)生的影響。用制備好的牙膏粉將鐵圈封在蓋玻片的外圍,保證開孔處在鐵圈中央,最后將鐵圈固定在長柄鐵塊上,使成像時老鼠大腦始終固定[2]。

    1.3 熒光染料的標(biāo)記

    制備終濃度為0.5 mg/ml 的Texas-Red溶液,尾靜脈按0.01 ml/g動物體重注射,15 min后經(jīng)血液循環(huán)進(jìn)入全身可進(jìn)行成像。

    1.4 雙光子顯微鏡觀察

    利用Olympus正置雙光子顯微鏡裝置進(jìn)行成像,激發(fā)光波長選取860 nm,發(fā)射的熒光通過外置探測器接收,使用雙色鏡(DM560)結(jié)合帶寬濾色片(575~640)探測血漿發(fā)出的熒光。利用z序列掃描觀察腦內(nèi)脈管系統(tǒng)的三維分布,掃描速度為2 μs/pixel,掃描步徑為2 μm,圖像大小為512×512個像素;利用線掃描測量單位時間內(nèi)紅細(xì)胞的運(yùn)動距離,掃描速度為10 μs/pixel,連續(xù)掃描2 000張。

    1.5 圖像記錄和數(shù)據(jù)處理

    2 結(jié)果

    2.1 在體雙光子成像系統(tǒng)的組成

    雙光子顯微鏡系統(tǒng)主要由飛秒激光器、掃描振鏡、物鏡、探測器、數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)組成。成像流程為:鈦-藍(lán)寶石激光器輸出脈沖激光,經(jīng)過反射鏡反射到達(dá)擴(kuò)束鏡,激光束被調(diào)整為強(qiáng)度均勻的平行光束,光束到達(dá)掃描振鏡,透過二色鏡,經(jīng)過物鏡匯聚到樣品上,樣品被激發(fā)后發(fā)出熒光,經(jīng)二色鏡反射到達(dá)探測器,信號被數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)收集(圖1A)。小鼠麻醉后,將其固定在腦立體定位儀上進(jìn)行顱骨開窗手術(shù)(圖1B),顱骨開窗后,用牙膏水泥將腦固定圈固定在開窗區(qū)外的顱骨上,并通過螺絲將其固定到長柄鐵塊上(圖1C),最后將制備好的動物樣本放置在雙光子顯微鏡下進(jìn)行觀察(圖1D)。

    2.2 腦內(nèi)微循環(huán)的三維立體分布

    小鼠顱骨開窗后,尾靜脈注射Texas-Red染料,經(jīng)血液循環(huán)到達(dá)全身血管,15 min后,將小鼠放置在雙光子顯微鏡載物臺上,激發(fā)光調(diào)至860 nm,調(diào)節(jié)焦平面選取血管密集區(qū),利用×25物鏡進(jìn)行雙光子掃描成像。通過雙光子顯微鏡z序列掃描,探測腦內(nèi)較深區(qū)域的血管分布和走向,通過優(yōu)化設(shè)置,成像深度達(dá)到腦內(nèi)500 μm處,能夠清楚的看到腦內(nèi)血管走向及分支(圖2A),其中300 μm以內(nèi)成像信噪比(S/N)較高。利用共聚焦顯微鏡成像僅能探測到腦內(nèi)100 μm處的熒光信號(圖2B)。

    Fig. 1 Schematic diagram of in vivo two photon imaging and imaging apparatus A: Schematic diagram of two-photon laser scanning microscopy imaging; B: Skull exposure is achieved in a stereotactic frame; C: Brain fixation devices: long handle iron and brain retainer ring; D: Example of an anesthetized mouse during two-photon imaging

    Fig. 2 Three-dimensensional reconstruction of cortical vasculatureinvivoA: Three-dimensional reconstruction of cortical vasculature by two-photon microscopy; B: Three-dimensional reconstruction of cortical vasculature by confocal microscopy

    2.3 血流速度的量化方法

    尾靜脈注射Texas-Red后,染料僅能標(biāo)記血漿而不進(jìn)入紅細(xì)胞,利用雙光子顯微鏡進(jìn)行線掃描時,隨著掃描時間的變化,紅細(xì)胞的運(yùn)動軌跡形成暗影。如示意圖所示(圖3A):x軸為紅細(xì)胞運(yùn)動的距離,y軸為掃描時間,黑色的圓圈代表紅細(xì)胞,隨著時間變化紅細(xì)胞的運(yùn)動形成一條黑色斜線,通過計算單位時間內(nèi)紅細(xì)胞的運(yùn)動距離量化血流速度,紅細(xì)胞的運(yùn)動速率表示為Δx/Δt,血流方向?yàn)樾甭实淖呦?圖3B)。

    Fig. 3 Movement locus for red blood cell by two photon microscopy line scanning A: Illustration of red blood cell flow in a capillary; B: Movement locus of red blood cells by two photon microscopy line scanning

    2.4 毛細(xì)血管血流速度的測定

    選取5只健康小鼠(體重20~25 g),在腦內(nèi)(200~250) μm處選取直徑小于6 μm的毛細(xì)血管測量血流速度。每只小鼠選取10根血管進(jìn)行線掃描,掃描速度為10 μs/pix,連續(xù)掃描2 000幅,測得的紅細(xì)胞平均流速為(0.59±0.12)mm/s,血流經(jīng)線掃描后,斜率越大,單位時間內(nèi)紅細(xì)胞的運(yùn)動距離越短,血流速度越慢;單位長度內(nèi)陰影越多,紅細(xì)胞數(shù)目越多(圖4)。

    Fig. 4 Red blood cell velocity in capillary by line scanning

    3 討論

    與傳統(tǒng)的共聚焦顯微鏡成像方法比較,雙光子激發(fā)成像有以下優(yōu)點(diǎn):(1)長波長的光比短波長的光受散射影響較小容易穿透標(biāo)本;(2)雙光子成像不需要共聚焦針孔,這樣就提高了對熒光的吸收率,而收集率的提高使得圖像對比度提高;(3)長波長的近紅外光比短波長的光對細(xì)胞毒性??;(4)使用雙光子顯微鏡觀察標(biāo)本的時候,只有在焦平面上才有光漂白和光毒性,所以雙光子顯微鏡比共聚焦顯微鏡更適合用來觀察厚標(biāo)本和活體組織[3]。通過光學(xué)顯微鏡或者共聚焦顯微鏡進(jìn)行觀察,只能在腦表面或者在腦切片上進(jìn)行,無法深入到活體腦內(nèi)部觀察,科研的發(fā)展需要細(xì)微到單個血管,跟蹤活體小鼠腦內(nèi)部微循環(huán)的變化,雙光子顯微鏡由于其穿透能力強(qiáng)、光毒性小等優(yōu)勢,使得觀察活體小鼠腦內(nèi)循環(huán)系統(tǒng)成為可能。

    實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明利用雙光子顯微鏡觀察活體腦內(nèi)血管分布和走向,能夠得到高分辨率的圖像。為了達(dá)到最好的成像效果,樣本制作過程盡量避免待觀察區(qū)的出血現(xiàn)象,過多的出血影響成像效果,因此,制備高質(zhì)量的活體樣本是完成實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵。通過優(yōu)化手術(shù)過程,調(diào)節(jié)成像參數(shù),利用雙光子專用鏡頭×25水鏡,探測到了活體腦內(nèi)500 μm處的熒光信號。2011年日本科學(xué)家Hiroshi Hama發(fā)現(xiàn)了一種新型的透明劑scale,利用這種透明及處理樣本后,能達(dá)到4 mm的成像深度,使用透明劑的樣本需經(jīng)過固定處理,所以尚未在活體上實(shí)現(xiàn)深度成像[4]。

    結(jié)果還顯示通過熒光標(biāo)記技術(shù),能測出單根血管內(nèi)紅細(xì)胞的運(yùn)動速度。其原理為:尾靜脈注射Texas-Red熒光染料后,染料特異性標(biāo)記血漿,而不進(jìn)入紅細(xì)胞,當(dāng)進(jìn)行線掃描時,血漿部分發(fā)出紅色熒光,紅細(xì)胞則表現(xiàn)為黑色,紅細(xì)胞隨時間變化的運(yùn)動軌跡形成了一條黑色暗影,通過計算紅細(xì)胞的運(yùn)動速度和血管直徑量化血流速度。目前量化血流的方式有三種:血流量(血流量=血流速度x 血管直徑)、紅細(xì)胞線性密度(紅細(xì)胞的線性密度=血流量/血流速度)和紅細(xì)胞運(yùn)動速度[5]。血液攜帶氧氣和營養(yǎng)的能力與血流量成正比,檢測血流量需要測量紅細(xì)胞流動速度和血管直徑,但是血流速度和血管直徑可以各自獨(dú)立發(fā)生改變,所以必須同時測量這兩個參數(shù)。而測定紅細(xì)胞運(yùn)動速度的方法相對簡單易行,其應(yīng)用更加廣泛。

    利用雙光子顯微鏡成像活體動物腦內(nèi)結(jié)構(gòu),雖然能夠達(dá)到較深的成像深度,但是由于腦內(nèi)結(jié)構(gòu)復(fù)雜,光散射和折射較強(qiáng),隨著腦內(nèi)深度的增加,成像信號也會越弱,將會形成信號越來越弱的三維結(jié)構(gòu)。為了保持信號強(qiáng)度相對一致,我們通過優(yōu)化設(shè)置,利用雙光子顯微鏡的z-bright功能,隨著焦點(diǎn)深度的增加,逐漸增加雙光子激光強(qiáng)度,光電倍增管電壓值,并將改變的信息進(jìn)行保存,進(jìn)行三維掃描時,不同的深度按照保存的信息進(jìn)行掃描,以保持在較深范圍仍然能夠得到強(qiáng)度相對均一的信號,獲得高信噪比圖像。

    雙光子顯微鏡技術(shù)及其在活體成像記錄上的優(yōu)點(diǎn)為研究復(fù)雜的循環(huán)系統(tǒng)結(jié)構(gòu)和功能提供了一條新的途徑。但是目前也存在一些問題:腦表面大血管血流速度快,線掃描后無法得到單個紅細(xì)胞運(yùn)動的陰影,因此測定大血管血流速度還需進(jìn)一步探索。腦開顱手術(shù)過程中,如何減少損傷和感染,使動物能長期存活,實(shí)現(xiàn)對血流速度和血流方向的長時間連續(xù)監(jiān)測也值得進(jìn)一步探索。

    [1] Svoboda K, Yasuda R. Principles of two-photon excitation microscopy and its applications to neuroscience[J].Neuron, 2006, 50(6): 823-839.

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    In vivo imaging of blood flow using two-photon laser scanning fluorescent microscopy

    LIU Shuang-shuang1, HUANG Ji-yun2, XIAO Gui-feng1, YIN Wei1, LIN Zhao-xiao-nan1, LU Ying-mei3△

    (1. the Imaging Center, Core Facilities of Zhejiang University School of Medicine, 2. Institute of Pharmacology, Toxicology and Biochemical Pharmaceutics of Zhejiang University, Hangzhou 310058; 3. Zhejiang University City College of Medicine, Hangzhou 310015, China)

    Objective: To observe the three-dimensional distribution of vessels, and to establish a new method for measurement of blood flow velocity in mice cerebral cortex using two-photon laser scanning microscopy and fluorescence probe labeling technique. Methods: The mouse was made cranial window surgery and injected Texas-Red through tail vein after anesthetized. The three-dimensional imaging of vessel was obtained through z-stack scanning, and blood flow velocity was quantified through line scanning. Results: We could detect vascular distribution for more than 500 μm depth using two-photon microscopy. The velocity of blood flow was (0.59±0.12) mm/s in capillary. Conclusion: The method for observing the brain blood flow by two-photon microscopy was established, which could achieve quantification of single vascular blood flow velocity and provide experimental evidence for basic research and medical applications.

    two-photon microscopy; cerebral cortex; microcirculation; blood flow velocity

    浙江省科技廳分析測試項(xiàng)目(2012C37060,2014C37068);浙江大學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)研究項(xiàng)目(SYB201306, SYB201407);中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)資金資助(519000*72210151)

    2014-11-06

    2015-03-03

    Q334

    A

    1000-6834(2015)03-245-04

    10.13459/j.cnki.cjap.2015.03.014

    △【通訊作者】Tel: 0571-88206270; E-mail: lufx@zju.edu.cn

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